宋海军 杨族悌 刘军 刘国磊
[摘要] 目的 探討丙泊酚对糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞损伤的影响及其机制。
方法 将体外培养的大鼠脑皮质星形胶质细胞分为对照组、模型组、模型+丙泊酚组、模型+丙泊酚+空载体组和模型+丙泊酚+高迁移率族蛋白1(HMGB1)组,后4组构建糖氧剥夺再灌注细胞损伤模型,后3组给予浓度为10 μmol/L的丙泊酚处理,后两组分别在转染pcDNA3.1空载体质粒和pcDNA3.1-HMGB1过表达载体质粒后建模。采用噻唑蓝(MTT)法检测细胞存活率,比色法检测乳酸脱氢酶(LDH)漏出率,流式细胞仪检测细胞凋亡率,ELISA法检测细胞上清液中HMGB1、白细胞介素-1β(IL-1β)、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)含量,Western blot检测HMGB1、B细胞淋巴瘤/白血病-2(Bcl-2)、Bcl-2相关X蛋白(Bax)和活化的含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶-3(Cleaved caspase-3)等蛋白表达。
结果 与对照组相比,模型组细胞存活率和Bcl-2蛋白表达水平显著降低,而LDH漏出率、凋亡率和HMGB1、Bax、Cleaved caspase-3蛋白的表达水平以及细胞上清液中HMGB1、IL-1β、TNF-α含量均显著升高(F=171.199~391.008,q=24.398~49.269,P<0.05)。给予丙泊酚处理后糖氧剥夺再灌注引起的上述变化均显著减弱(q=11.711~35.032,P<0.05)。成功上调HMGB1表达后,丙泊酚对糖氧剥夺再灌注损伤的保护作用得以逆转。
结论 丙泊酚可能通过下调HMGB1表达抑制细胞凋亡和炎症反应对糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞发挥保护作用。
[关键词] 再灌注损伤;星形细胞;二异丙酚;细胞凋亡;炎症;HMGB1蛋白质
[中图分类号] R619.9;R971.2
[文献标志码] A
[文章编号] 2096-5532(2021)06-0903-05
doi:10.11712/jms.2096-5532.2021.57.197
[开放科学(资源服务)标识码(OSID)]
[网络出版] https://kns.cnki.net/kcms/detail/37.1517.R.20211230.1016.002.html;2021-12-30 14:30:46
EFFECT OF PROPOFOL ON ASTROCYTE INJURY INDUCED BY GLUCOSE-OXYGEN DEPRIVATION AND REPERFUSION AND ITS MECHANISM
SONG Haijun, YANG Zuti, LIU Jun, LIU Guolei
(Department of Anesthesiology, Nanyang Nanshi Hospital, Nanyang473000, China)
[ABSTRACT]Objective To investigate the effect of propofol on astrocyte injury induced by glucose-oxygen deprivation and reperfusion and its mechanism.
Methods Rat cerebral cortical astrocytes cultured in vitro were divided into control group, model group, model+propofol group, model+propofol+empty vector group, and model+propofol+high-mobility group box 1 (HMGB1) group. The latter four groups were used to establish a model of cell injury caused by glucose-oxygen deprivation and reperfusion; the latter three groups were treated with propofol at a concentration of 10 μmol/L; the latter two groups were used for modeling after being transfected with pcDNA3.1 empty vector plasmid and pcDNA3.1-HMGB1 overexpression vector plasmid, respectively. MTT assay was used to measure cell viability; colorimetry was used to measure lactate dehydrogenase (LDH) leakage rate; flow cytometry was used to measure cell apoptosis rate; ELISA was used to measure the content of HMGB1, interleukin-1β (IL-1β), and tumor necrosis factor-α (TNF-α) in cell supernatant, and Western blot was used to measure the protein expression of HMGB1, B-cell lymphoma/leukemia-2 (Bcl-2), Bcl-2-associated X protein (Bax), and activated Cleaved caspase-3.
Results Compared with the control group, the model group had significant reductions in cell viability and the protein expression level of Bcl-2 and significant increases in LDH leakage rate, cell apoptosis rate, the protein expression levels of HMGB1, Bax, and Cleaved caspase-3, and the content of HMGB1, IL-1β, and TNF-α in supernatant (F=171.199-391.008,q=24.398-49.269, all P<0.05). The above changes induced by glucose-oxygen deprivation and reperfusion were significantly alleviated after propofol treatment (q=11.711-35.032, all P<0.05). After the expression of HMGB1 was upregulated successfully, the protective effect of propofol against the injury induced by glucose-oxygen deprivation and reperfusion was reversed.
Conclusion Propofol can protect astrocytes against the injury induced by glucose-oxygen deprivation and reperfusion by downregulating the expression of HMGB1 to inhibit cell apoptosis and inflammatory response.
[KEY WORDS]reperfusion injury; astrocytes; Propofol; apoptosis; inflammation; HMGB1 protein
星形胶质细胞是广泛分布于哺乳动物脑内的一类非神经元细胞,在脑缺血病理过程中发挥着保护和损伤神经元的双重作用[1-3]。高迁移率族蛋白1(HMGB1)是细胞核内一种高度保守的非组蛋白,可作为促炎因子和预警蛋白在先天性免疫应答、炎症反应及细胞凋亡等过程中发挥着重要作用[4-6]。研究证实,HMGB1在脑缺血后大量升高,且可通过促进炎症递质的释放和调控星形胶质细胞凋亡在脑缺血病理过程中发挥着重要作用[7]。丙泊酚是一种临床手术过程中常见的静脉麻醉药,被证实可通过抑制细胞凋亡和炎症递质的释放在脑损伤过程中发挥保护作用[8-9]。近年研究显示,丙泊酚可通过抑制小胶质细胞HMGB1的表达调控脑损伤免疫炎症系统[10],但HMGB1在丙泊酚保护脑缺血诱导的星形胶质细胞损伤中的作用并不清楚。脑皮质星形胶质细胞糖氧剥夺再灌注模型是研究体内脑缺血常用的细胞模型[11],本研究从细胞凋亡和炎症反应角度出发,首次探讨HMGB1在丙泊酚保护糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞损伤中的作用,以期为阐明丙泊酚保护脑损伤的分子机制提供新依据。
1 材料与方法
1.1 实验材料
SPF级新生Wistar大鼠(体质量12~15 g)购于山东省实验动物中心。胎牛血清、DMEM高糖培养液和DMEM无糖培养液购于美国Gibco公司。丙泊酚购于美国Sigma公司。兔抗B细胞淋巴瘤/白血病-2(Bcl-2)抗体、Bcl-2相关X蛋白(Bax)抗体和β-肌动蛋白(β-actin)抗体均购于美国CST公司,兔抗活化的含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶-3(Cleaved caspase-3)抗体和HMGB1抗体购于美国Abcam公司。噻唑蓝(MTT)试剂和乳酸脱氢酶(LDH)试剂盒购于南京建成生物工程研究所,BCA蛋白检测试剂盒购于美国Pierce公司。细胞凋亡检测试剂盒、ECL试剂盒及肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、白细胞介素-1β(IL-1β)和HMGB1的ELISA试剂盒购于上海碧云天公司。pcDNA3.1-HMGB1过表达载体质粒购于BioVector质粒载体菌种细胞基因保藏中心。
1.2 实验方法
1.2.1 实验分组与处理 将新生大鼠处死分离出大脑皮质后,剥离脑膜和血管等结构,将获得的星形胶质细胞参照文献方法[12]检测纯化培养后以每孔3×105个细胞种植于96孔细胞板上。实验分为5组,分别为对照组(A组)、模型组(B组)、模型+丙泊酚组(C组)、模型+丙泊酚+空载体组(D组)和模型+丙泊酚+HMGB1组(E组)。其中后4组行糖氧剥夺再灌注处理:弃原培养液后,加入无糖DMEM培养液,放入低氧(含体积分数0.02的O 2)培养箱中于37 ℃下培养6 h(即糖氧剥夺处理);后3组给药处理:加入含10 μmol/L丙泊酚的无糖DMEM培养液。糖氧剥夺处理6 h后,从低氧培养箱中取出并弃无糖培养液,加入含10 μmol/L丙泊酚的含糖培養液并培养24 h,置于含体积分数0.05 CO 2的37 ℃恒温培养箱内培养24 h(即再灌注处理)。模型+丙泊酚+空载体组:在糖氧剥夺处理前,参照脂质体2000说明书步骤加入pcDNA3.1空载体质粒转染48 h。模型+丙泊酚+HMGB1组:在糖氧剥夺处理前,参照脂质体2000说明书步骤加入pcDNA3.1-HMGB1过表达载体质粒转染48 h。转染pcDNA3.1空载体质粒作为转染pcDNA3.1-HMGB1过表达载体质粒的阴性对照,以排除转染质粒对实验结果的干扰。
1.2.2 MTT法检测细胞存活率 收集处理结束后的各组细胞,按照每孔105个细胞密度种植于96孔细胞板上,置于含体积分数0.05 CO 2的37 ℃恒温培养箱内培养48 h,加入浓度为5 g/L的MTT溶液20 μL孵育4 h。再以200 μL二甲基亚砜孵育20 min使蓝紫色结晶完全溶解。使用酶标仪检测各组细胞在490 nm波长处的吸光度(A)值。细胞存活率=(实验组A值-空白组A值)/(对照组A值-空白组A组)×100%。实验重复3次。
1.2.3 流式细胞仪检测细胞凋亡率 收集处理结束后的各组细胞,参照细胞凋亡检测试剂盒说明书步骤,上流式细胞仪检测各组细胞凋亡率。实验重复3次。
1.2.4 ELISA法检测细胞上清液中HMGB1、IL-6和TNF-α含量 收集处理结束后的各组细胞上清液,参照ELISA试剂盒说明书步骤检测细胞上清液中HMGB1、IL-6和TNF-α含量。实验重复3次。
1.2.5 比色法检测细胞LDH漏出率 收集各组细胞培养液,根据LDH试剂盒说明书步骤分别检测培养液和细胞内的LDH活性。LDH漏出率=培养液中LDH活性/(细胞内LDH活性+培养液中LDH活性)×100%。实验重复3次。
1.2.6 Western blot检测细胞中HMGB1、Bcl-2、Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表达 在冰上向收集到的各组细胞中加入RIPA细胞裂解液提取细胞总蛋白,以BCA定量法检测蛋白的浓度。在SDS-RIPA凝胶电泳分离后,电转至PVDF膜上。将膜置于含50 g/L脱脂奶粉的TBST液中处理1 h后,加入使用TBST稀释的HMGB1抗体(1∶1 000)、Bax抗体(1∶500)、Bcl-2抗体(1∶500)、Cleaved caspase-3抗体(1∶1 000)、β-actin抗体(1∶1 000)于4 ℃下结合反应24 h,再以TBST稀释的二抗(1∶2 000,辣根过氧化酶标记)室温孵育1.5 h。蛋白条带在Quantity One软件中进行半定量分析,以β-actin为内参照。 实验重复3次。
1.3 统计学分析
采用SPSS 22.0软件进行统计学分析。计量资料数据以±s形式表示,多组间均数比较使用单因素方差分析,组间多重比较采用SNK-q检验;两组间均数比较采用独立样本t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 各组细胞中的HMGB1蛋白表达和上清液中HMGB1、IL-1β及TNF-α含量比较
与对照组相比,模型组细胞内HMGB1蛋白表达水平和细胞上清液中HMGB1、IL-1β、TNF-α含量均显著升高(F=171.199~391.008,q=28.058~49.269,P均<0.01);与模型组相比,模型+丙泊酚组细胞内HMGB1蛋白的表达水平以及HMGB1、IL-1β和TNF-α的含量均显著降低(q=22.531~35.032,P<0.01);与模型+丙泊酚组比较,模型+丙泊酚+HMGB1组细胞内HMGB1蛋白的表达水平以及HMGB1、IL-1β和TNF-α的含量均显著升高(q=14.811~23.987,P均<0.01),而模型+丙泊酚+空载体组中则没有见显著改变(P>0.05)。见图1和表1。
2.2 各组细胞存活率和LDH漏出率的比较
与对照组相比,模型组细胞存活率显著降低,而LDH漏出率显著升高(F=167.790、349.324,q=33.505、47.940,P均<0.01);与模型组相比,模型+丙泊酚组细胞存活率显著升高,而LDH漏出率显著降低(q=21.751、24.714,P均<0.01);与模型+丙泊酚组相比较,模型+丙泊酚+空载体组细胞存活率和LDH漏出率均未见显著改变(P>0.05),但模型+丙泊酚+HMGB1组细胞存活率显著降低,而LDH漏出率显著升高(q=13.038、17.792,P<0.01)。见表2。
2.3 各组细胞凋亡率的比较
对照组、模型组、模型+丙泊酚组、模型+丙泊酚+空载体组和模型+丙泊酚+HMGB1组的细胞凋亡率分别为(2.16±1.02)%、(32.25±2.36)%、(13.58±1.12)%、(12.16±1.05)%和(23.85±1.37)%,多组间比较差异有显著性(F=184.887,P<0.05)。与对照组比较,模型组细胞凋亡率显著升高(q=35.390,P<0.05);与模型组比较,模型+丙泊酚组细胞凋亡率显著降低(q=21.958,P<0.05);与模型+丙泊酚组相比较,模型+丙泊酚+HMGB1组凋亡率显著升高(q=12.079,P<0.05),而模型+丙泊酚+空载体组凋亡率未见显著改变(P>0.05)。见图2。
2.4 各组细胞凋亡相关蛋白Bcl-2、Bax和Cleaved caspase-3的比较
与对照组相比,模型组细胞Bcl-2蛋白表达水平降低,而Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表达水平显著升高(F=81.619~165.223, q=24.398~33.331,P均<0.05);与模型组相比,模型+丙泊酚组Bcl-2蛋白表达升高,而Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表達水平显著降低(q=11.711~18.974,P均<0.05);与模型+丙泊酚组相比,模型+丙泊酚+HMGB1组细胞Bcl-2蛋白表达水平显著降低,而Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表达水平显著升高(q=5.885~13.703,P均<0.01);但是,模型+丙泊酚+空载体组与模型+丙泊酚组相比较,细胞Bcl-2、Bax和Cleaved caspase-3蛋白的表达水平差异无显著性(P>0.05)。见图3和表3。
3 讨论
HMGB1通常位于细胞核内,可被主动或被动释放到胞外,而胞外的HMGB1可通过与许多因子或受体作用,影响核转录因子-κB的活性,进而在免疫调节、炎症反应、细胞增殖和细胞凋亡等过程中发挥着调节作用[13]。HMGB1可加重缺血损伤,而靶向抑制HMGB1被认为是临床预防脑缺血损伤的重要策略[14-15]。本研究在构建的糖氧剥夺再灌注损伤星形胶质细胞模型中显示,HMGB1表达升高;同时,促炎因子IL-1β和TNF-α表达升高,星形胶质细胞存活率降低,凋亡率升高,促凋亡蛋白Bax和凋亡执行蛋白Cleaved caspase-3表达升高,而抑凋亡蛋白Bcl-2表达降低。李满等[12]研究指出,糖氧剥夺/复氧后释放的HMGB1可通过调控Bcl-2和Bax的表达促进星形胶质细胞损伤和凋亡。本研究结果与其类似,提示HMGB1在糖氧剥夺再灌注损伤的星形胶质细胞炎症反应和细胞凋亡过程中发挥着重要作用。
丙泊酚在抗炎和保护脑组织损伤方面发挥着重要作用[16-17]。刘波等[18]研究显示,低剂量的丙泊酚可通过抑制炎症反应改善脑缺血再灌注损伤。顾新宇等[19]研究证实,丙泊酚可激活ERK信号通路提高原代海马星形胶质细胞的细胞活力,在丙泊酚镇静过程中维持脑稳态。陆瑜等[20]发现,丙泊酚可通过抑制miR-181a并增强抑凋亡蛋白Bcl-2的表达对乏糖培养星形胶质细胞发挥保护作用。本研究结果也表明,丙泊酚对糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞的活性降低、炎症反应加重和细胞凋亡能力增强等现象均有明显改善作用。同时,丙泊酚还可引起HMGB1表达降低。而WANG等[21]研究表明,丙泊酚可通过抑制脂多糖诱导的HMGB1表达和释放在脓毒症病人中起保护作用。张明晓等[10]研究证实,丙泊酚可通过激活p38 MAPK信号通路抑制TNF-α诱导小胶质细胞HMGB1表达,影响脑损伤晚期炎症反应。提示HMGB1在丙泊酚保护糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞损伤过程中发挥着重要作用。为了证实这一推测,本研究通过上调HMGB1蛋白的表达显示,丙泊酚对糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞损伤的保护作用明显逆转。说明丙泊酚可能通过下调HMGB1发挥保护糖氧剥夺再灌注诱导的星形胶质细胞损伤。
综上所述,丙泊酚可以通过抑制星形胶质细胞的凋亡和炎症反应改善糖氧剥夺再灌注损伤,而HMGB1表达下调是该保护过程的重要机制。该结果進一步丰富了丙泊酚保护脑缺血损伤的分子机制,但丙泊酚是如何从通路分子水平抑制HMGB1表达还有待进一步深入研究。
[参考文献]
[1]田龙,黄月,丁娜. 葛根素对大鼠星形胶质细胞增殖、凋亡和β-catenin、cyclinD1、Bax蛋白表达的影响[J].郑州大学学报(医学版),2019,54(3):402-406.
[2]唐硕,徐华敏,谢俊霞. 枸橼酸铁铵和脂多糖对星形胶质细胞LCN2表达的影响及机制[J]. 青岛大学学报(医学版), 2021,57(5):633-636.
[3]陈华波,黄艳丽,翟立红,等. 靶向星形胶质细胞治疗缺血性脑卒中的研究进展[J].生命科学, 2019,31(7):671-677.
[4]COLEMAN L G, MAILE R, JONES S W, et al. HMGB1/IL-1β complexes in plasma microvesicles modulate immune responses to burn injury[J].PLoS One, 2018,13(3):e0195335. doi:10.1371/journal.pone.0195335
[5]ZHANG C, YU W Z, HUANG C B, et al. Chrysin protects human osteoarthritis chondrocytes by inhibiting inflammatory mediator expression via HMGB1 suppression[J].Molecular Medicine Reports, 2019,19(2):1222-1229.
[6]GUO Y, LI H, ZHANG J, et al. Effects of HMGB1 siRNA on the apoptosis of retinal vascular endothelial cells in high glucose environment[J].Recent Advances in Ophthalmology, 2018,38(5):416-420.
[7]宋君来,李满,孙麟,等. 抑制高迁移率族蛋白1减轻大鼠脊髓星形胶质细胞氧糖剥夺/复氧后的损伤[J].中国组织工程研究, 2018,22(28):4537-4543.
[8]MA J, XIAO W J, WANG J R, et al. Propofol inhibits NLRP3 inflammasome and attenuates blast-induced traumatic brain injury in rats[J].Inflammation, 2016,39(6):2094-2103.
[9]GONG H Y, ZHENG F, ZHANG C, et al. Propofol protects hippocampal neurons from apoptosis in ischemic brain injury by increasing GLT-1 expression and inhibiting the activation of NMDAR via the JNK/Akt signaling pathway[J].International Journal of Molecular Medicine, 2016,38(3):943-950.
[10]张明晓,黄陆平,金深辉,等. 丙泊酚对TNF-α诱导的小胶质细胞HMGB1表达的调控作用[J].温州医科大学学报, 2018,48(9):625-629.
[11]SUN J B, LI Y, CAI Y F, et al. Scutellarin protects oxygen/glucose-deprived astrocytes and reduces focal cerebral ischemic injury[J].Neural Regeneration Research, 2018,13(8):1396-1407.
[12]李满,李圆,孙麟,等. 高迁移率族蛋白B1通过调节Bcl-2和Bax蛋白表达促进氧糖剥夺/复氧星形胶质细胞的凋亡[J].北京大学学报(医学版), 2018,50(5):785-791.
[13]姜阳,刘清蒙. HMGB-1与炎症研究进展[J].遵义医学院学报, 2016,39(2):211-216.
[14]YANG Q W, XIANG J, ZHOU Y, et al. Targeting HMGB1/TLR4 signaling as a novel approach to treatment of cerebral ischemia[J].Frontiers in Bioscience (Scholar Edition), 2010,2:1081-1091.
[15]SINGH V, ROTH S, VELTKAMP R, et al. HMGB1 as a key mediator of immune mechanisms in ischemic stroke[J].Antioxidants & Redox Signaling, 2016,24(12):635-651.
[16]WANG X, YANG X, HAN F, er al. Propofol improves brain injury induced by chronic cerebral hypoperfusion in rats[J].Food Sci Nutr, 2021,9(6):2801-2809.
[17]HUANG Z, HUANG B, WEI Q, er al. The protective effects of benzbromarone against propofol-induced inflammation and injury in human brain microvascular endothelial cells (HBMVECs)[J].Neurotox Res, 2021,39(5):1449-1458.
[18]劉波,张利佳,郭宇峰,等. 不同剂量丙泊酚对兔肺缺血再灌注损伤的保护作用[J].川北医学院学报, 2020,35(2):207-210,223.
[19]顾新宇,朱浩,杨立群,等. 丙泊酚通过细胞外信号调节激酶信号通路上调海马星形胶质细胞脑源性神经营养因子表达和分泌[J].国际麻醉学与复苏杂志, 2019,40(7):612-617.
[20]陆瑜,菅敏钰,熊蔚,等. 丙泊酚对乏糖培养星形胶质细胞miR-181a及Bcl-2蛋白表达的影响[J].中华医学杂志, 2014,94(38):3020-3023.
[21]WANG T, WEI X Y, LIU B, et al. Effects of propofol on lipopolysaccharide-induced expression and release of HMGB1 in macrophages[J].Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 2015,48(4):286-291.
(本文编辑 于国艺)