沈 宇,赵宏博,赵 宏,王宇亮,王朝兴
(1. 佳木斯大学药学院,黑龙江 佳木斯 154007;2. 佳木斯大学康复医学院,黑龙江 佳木斯 154007)
刺五加(Acanthopanax senticosus (Rupr. Maxim.) Harms)也称五加参,常以根和茎入药,但近年来研究发现其叶和果也是非常好的活性部位,具有较好的治疗和保健功效,开发前景广阔。刺五加中主要活性成分有刺五加多糖、刺五加苷、维生素、微量元素及氨基酸等,具有增强机体免疫力、抗菌、抗疲劳、抗氧化、抗病毒和抗衰老等功效[1~3]。超滤法是一种在分子水平上、无污染、高效节能的新型分离工艺。超滤是一种以压力为驱动力的膜分离技术,使用孔径不同的超滤膜对混合液体进行物理分离的过程,对比其他的滤膜,超滤膜过滤的精密度更高,膜孔更小[4]。适用于各类物质的分离、浓缩、纯化和精制,是目前应用最为广泛的膜分离技术。活性氧自由基是自由基在人体内与活性较强的含氧物质结合的产物,过多时会使核酸突变,是生物体衰老和患病的根源[5]。因而,抗氧化剂的研究和开发是现在科学研究的重点项目之一,尤其是开发来自天然产物的抗氧化剂。本实验采用刺五加的果实为原材料,采用水提取醇沉淀法提取刺五加果多糖。采用超滤法对刺五加果多糖进行分离,再分别对所得的各级多糖进行抗氧化活性的筛选,旨在找到抗氧化活性较好的组分,为刺五加果多糖抗氧化作用机制的进一步研究提供一定的基础。
1.1.1 药品与试剂
刺五加果(安国市光明饮片加工厂); 1,1-二-2-苦肼基(DPPH,南京奥多福尼生物科技有限公司);邻苯三酚(北京索莱宝科技有限公司);葡萄糖标准品(美国Sigma公司);牛血清白蛋白(美国Sigma公司);苯酚(天津凯通化学试剂厂)。
1.1.2 仪器
KDM可调控温电热套(山东鄄城华鲁电热仪器有限公司);RE-52A型旋转蒸发仪(上海亚荣生化仪器厂);DZF-6050型真空干燥箱(上海恒平科学仪器有限公司);DL-5-B低速大容量离心机(上海安亭科学仪器厂); FW80型高速万能试样粉碎机(河北省黄骅市新兴电器厂);膜分离机(曲阜市宏鑫机械厂);中空纤维膜(湖州科滤膜技术有限公司)。
1.2.1 刺五加果多糖的提取[6]
称取1.5 kg刺五加果实,粉碎,加入蒸馏水(料液比1:30)浸泡过夜,设定提取温度95℃,提取时间115min,趁热过滤,浓缩,滤渣再以20倍蒸馏水浸泡过夜,按相同提取条件进行二次提取,趁热过滤,浓缩,合并滤液,冷却至室温,加入95%乙醇,醇浓度调至75%以上,低温静置24 h,在3000 r/min转速下离心15 min,取沉淀,蒸馏水复溶后,旋至无醇味,冷冻干燥,即得刺五加果粗多糖。
1.2.2 刺五加果多糖含量的测定
1.2.2.1 标准曲线的绘制
精密称取105℃干燥至恒重的无水葡萄糖标准品10mg,用蒸馏水定容至100mL容量瓶中,既得浓度为0.1mg/mL的葡萄糖标准品溶液。精密量取葡萄糖标准品溶液0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL和1.0mL,分别加入具塞试管中加蒸馏水至2mL,再分别加入5%的苯酚溶液1mL,充分摇匀,迅速加入浓硫酸5mL,摇匀后放置10min,置40℃水浴锅中保温15 min,取出后迅速冷却至室温,以蒸馏水用相同方法处理后为空白,使用紫外可见分光光度计在490nm波长处测定吸光度,以葡萄糖的浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。
1.2.2.2 多糖含量的测定
精密称取刺五加果粗多糖样品20mg,蒸馏水定容至100mL容量瓶中,摇匀,得到0.2mg/mL的样品溶液。取2 mL待测样品溶液加入具塞试管中,按照1.2.2.1所述方法进行操作,根据葡萄糖标准曲线计算刺五加果多糖的含量。
1.2.3 三氯乙酸法脱蛋白
称取刺五加果粗多糖,蒸馏水超声溶解1h,冷却至室温,不断搅拌的同时加入体积比为1:1的5%三氯乙酸(TCA)溶液(W/V),置4℃下冷藏24h,3000r/min离心15min,取上清液。加入饱和NaHCO3溶液调节pH至中性,浓缩后加入95%乙醇,并调节醇浓度在75%以上,常温下静置24h,3000r/min离心15min,取沉淀,真空干燥,即得刺五加果多糖。
1.2.4 蛋白质含量的测定
1.2.4.1 考马斯亮蓝染色液的配制
精密称取考马斯亮蓝G250标准品50mg,加入25mL 的95%乙醇,再加入50mL 的85%磷酸完全溶解,加蒸馏水定容至500mL容量瓶中既得浓度为0.01%的考马斯亮蓝染色液。
1.2.4.2 蛋白质标准曲线的制备
精密称取牛血清蛋白标准品10mg,蒸馏水溶解后定容至100mL容量瓶中,既得浓度为0.1mg/mL牛血清蛋白标准品溶液。精密量取标准品溶液0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL、1.0mL,分别置于试管中,加蒸馏水至1.0mL,再加0.01%考马斯亮蓝染色液5mL,摇匀,静置3min。用蒸馏水以相同方法处理后为空白,使用紫外可见分光光度计在595nm波长处测定吸光度,横坐标为牛血清蛋白的浓度,纵坐标为吸光度,绘制标准曲线。
1.2.4.3 蛋白质含量的测定
精密称取刺五加果多糖样品20mg,用蒸馏水定容至100mL容量瓶中,制得浓度为0.2mg/mL刺五加果多糖样品溶液。取刺五加果多糖样品溶液1mL,按照1.2.4.2所述方法进行操作,用紫外可见分光光度计在595nm波长处测定吸光度,利用蛋白质标准曲线计算样品的蛋白质含量。
1.2.5 超滤法分离刺五加果多糖
纯化后的刺五加果多糖溶于1000mL蒸馏水中,超声加热溶解1h,倒入超滤分离机的料箱中,超滤分离装置见图1。安装中空纤维膜组件(150kDa、100 kDa、50 kDa、10 kDa),打开膜分离机电源开关,调节流量计使其保持恒速,调节控压阀使压力表指针在0.1MPa左右,未通过中空纤维膜的截留液流回料箱中,滤过液流向滤液罐,滤液用Molish反应来鉴别是否还含有多糖,直至Molish反应无现象时,即滤过液中不再含有多糖为止。料箱中加入蒸馏水关闭滤液口,进行反清洗,将黏附于中空纤维膜上的多糖样品清洗下来,与截留液合并。浓缩后的截留液中加入95%乙醇,调节醇浓度至75%以上,得醇沉液,常温静置24h,3000r/min离心15min,取沉淀,冷冻干燥,即得不同分子量分布的刺五加果多糖。
图1 超滤分离装置图1.料箱;2.流量计;3.压力泵;4.中空纤维膜;5.控压阀;6.压力表;7.滤液罐
1.2.6 刺五加果多糖的抗氧化活性筛选
1.2.6.1 DPPH清除能力的测定[7]
分别配置5个浓度梯度的各部分刺五加果多糖溶液各2.0mL,分别加入0.2mmol/mL的DPPH溶液各2mL于玻璃试管中,摇匀,避光静置0.5h后,用酶标仪于517nm处测定其OD值。以维生素C为阳性对照品,相同条件下,每一样品平行测3次,取其平均值。
多糖对DPPH的清除率公式为:
A0是样品溶液与DPPH溶剂混合液的OD值;A1是样品溶液与DPPH溶液混合液的OD值;A2是未加样品的溶液与DPPH溶液混合液的OD值。
1.2.6.2 超氧自由基O2-清除能力的测定
采用邻苯三酚法测定各部分刺五加果多糖对超氧自由基O2-的清除能力。将配置好的0.005mol/L的邻苯三酚溶液和pH为8.2的Tris-HCL缓冲溶液在25℃的恒温水浴锅中保温10min,取不同浓度的待测样品溶液各2mL,分别依次加入预热的Tris-HCL缓冲溶液3mL和邻苯三酚溶液 0.5mL,摇匀后,在25℃的恒温水浴锅中反应4min,加入一定量的HCl终止反应,用酶标仪于320nm处测定其OD值。以维生素C为阳性对照品,相同条件下,每一样品平行测3次,取其平均值。多糖对超氧自由基O2-的清除率公式为:
A0是空白对照组的OD值;A1是加入多糖样品溶液OD值。
从1.5kg的刺五加果中提取得到的粗多糖为163.24g,刺五加果多糖的提取率为10.88%。
采用苯酚硫酸法测定各部分刺五加果多糖的含量,葡萄糖线性回归方程为y=13.52x+0.0104,R2=0.9991。刺五加果粗多糖中多糖的含量为46.75%,经脱蛋白处理,超滤分离后各部分多糖含量分别为分子量>100kDa组分多糖含量为67.28%;分子量100~50kDa组分多糖含量为61.32%;分子量50~10kDa组分多糖含量为88.15%;分子量<10kDa组分多糖含量为53.27%,见图2。从多糖的含量结果分析,刺五加果多糖中50~10kDa组分中的多糖含量最高,其次为>100kDa组分,含量最小的组分为低于10kDa的组分,但经纯化分离后的多糖各组分的含量均大于刺五加果粗多糖。
图2 各组分多糖含量测定
标准牛血清白蛋白溶液的浓度对其在595nm波长处的吸光度作回归方程为Y =6.97x+ 0.0962,R2=0.9996。蛋白质标准曲线见图3。刺五加果粗多糖中的蛋白质含量为0.1267mg/mL,采用三氯乙酸法除蛋白后,蛋白质含量降为0.0566 mg/mL,蛋白质的脱除率为55.33%。
图3 牛血清白蛋白标准曲线
刺五加果多糖的超滤法分离结果见表1,各组分比例见图4。超滤法分离得到刺五加果多糖分子量>100kDa的组分为15.34g ,占多糖总量的19.0%;分子量在100~50kDa之间的组分为27.47g ,占多糖总量的34.0%,分子量在10~50kDa之间的组分为34.67g,占多糖总量的42.9%;分子量<10kDa的组分为3.25g,占多糖总量的4.1%。分离结果表明刺五加果多糖中相对分子质量在100~50kDa的组分含量最多,<10kDa的组分含量最少,不同分子量范围的多糖组分在含量上呈现不均一的分布。
表1 刺五加果多糖超滤法分离结果
图4 刺五加果多糖各组分比例
2.5.1 DPPH·清除能力的测定
刺五加果多糖各组分对DPPH自由基的清除率见图5,不同分子量的刺五加果多糖组分对DPPH自由基均有不同程度的清除作用,并随其质量浓度的增大而增大,4个组分的质量浓度在0.6~1.0mg/mL时清除率增长缓慢,处于相对稳定的状态。清除率结果表明刺五加果多糖50~10kDa组分对DPPH自由基的清除率效果最好,清除率可达到56.89%,其次为100~50kDa组分,但与Vc阳性组比较对DPPH自由基清除能力相对较弱。
2.5.2 超氧自由基O2-清除能力的测定果
刺五加果多糖各组分对超氧自由基O2-的清除率见图6,不同分子量的刺五加果多糖组分对超氧自由基O2-均有不同程度的清除作用,并随其质量浓度的提高而具有一定的上升趋势,在0.5~1.5mg/mL的质量浓度范围内,清除率急剧增大,而在0.6~1.0mg/mL时清除率增长缓慢,处于相对稳定的状态。刺五加果多糖50~10kDa组分对超氧自由基O2-的清除率最好,清除率可达到40.69%,其次为100~50kDa组分,但与Vc阳性组比较对超氧自由基O2-清除能力相对较弱。
本研究采用优化的提取工艺提取刺五加果多糖,多糖提取率达到了10.88%,经三氟乙酸法脱除蛋白后,采用超滤技术对刺五加果多糖进行了分离和纯化,得到分子量为>100kDa组分、100~50kDa组分、50~10kDa组分和<10kDa组分,其中50~10kDa组分所占比例最高为42.9%,100~50kDa组分次之,并且各组分经分离后,多糖含量与粗多糖相比较都得到了一定的提高。因此,超滤技术是一种有效的分离和纯化多糖的手段,并且具有无污染、快速、准确的将多糖进行分子量分级的优点,从而提高了实验效率。为了比较分离后各个组分生物活性的高低,对分离后的4个组分进行了抗氧化活性的筛选,通过对DPPH和超氧自由基O2-清除能力的测定发现,各组分的抗氧活性略有不同,筛选出活性较好的组分为50~10kDa组分,其清除率分别为56.89%和40.69%,具有较好的抗氧化活性,具有进一步开发的价值。