猪饲料、猪尿、猪肉中β 受体激动剂常见检测方法

2020-11-02 08:28林文秀
今日畜牧兽医 2020年9期
关键词:离心管甲酸激动剂

宋 瑞,杨 洁,苏 霞,赵 博,林文秀

(1.石家庄市畜产品质量监测中心 050000;2.石家庄市农业行政综合执法支队 050000)

β 受体激动剂是最常见的一类瘦肉精。 初始被用于治疗哮喘患者,后期因副作用大而被弃用。80 年代有学者发现其能促进蛋白质合成提高猪瘦肉比率,应用广泛,但是随着人们对食品安全认识的提高, 发现β 受体激动剂很容易在猪内脏器官里蓄积残留。人们过量食用此类肉品,会出现中毒症状。因此,对β 受体激动剂进行严把关,深检测尤为重要。

1 猪饲料中β 受体激动剂检测方法

2008 年黄士新、沈富林、曹莹等专家对饲料中β 受体激动剂的检测提出了液相色谱串联质谱法。 该方法的原理是将饲料磨碎后, 使用提取液位盐酸甲醇混合溶液, 使用乙酸铅沉淀蛋白,通过固相萃取小柱净化,净化后收集的液体旋转蒸发蒸干,使用0.2%甲酸水溶液溶解,供液相色谱串联质谱仪进行检测,外标法定量。具体实验方法是于50mL 离心管中称取2g 饲料试样,加入19mL 盐酸甲醇提取液和1mL 饱和醋酸铅溶液, 涡旋混合均匀,充分振荡20min,然后于7000r/min 离心10min,上清液转移至另一离心管中。选用混合型阳离子交换柱,依次用3mL 甲醇和3mL 水活化, 取转移出的上清液5mL 过柱, 而后依次使用2mL 水、2mL 甲醇淋洗,带全部淋洗液流出,抽干2min,用5%氨水甲醇溶液5mL 洗脱,收集洗脱液并使用旋转蒸发仪旋蒸至干,用1mL 0.2%甲酸水溶液溶解,0.22μm 有机滤膜过滤后上机测定。 该方法在0.05 mg/kg 至1mg/kg 浓度范围内的添加回收率为80%土20%。

2 猪尿中β 受体激动剂检测方法

饲喂β 受体激动剂的猪只,在屠宰前,通常采用检测猪尿中β 受体激动剂的方式,来观测猪只体内是否含β 受体激动剂。针对猪尿中β 受体激动剂的检测王树槐、孙雷、刘琪、汪霞4 位专家研究出了非常科学的检测方法, 液相色谱串联质谱法检测猪尿中β 受体激动剂。 该方法的主要原理是通过两种酶酶解猪尿试样中的β 受体激动剂残留物,使其发生反应形成络合物,离心,取上清液,通过调节pH 值沉淀蛋白,增加β 受体激动剂的溶解性,使用异丙醇乙酸乙酯混合溶液进行彻底提取, 使用固相萃取柱进行净化,浓缩后过滤膜用高效液相色谱串联质谱法测定,同位素内标法定量。具体实验方法为:混合均匀试样,在50mL 离心管内移取5mL 尿样, 加入0.5mL 2mol/L 的乙酸铵缓冲液(于100mL 容量瓶中称取15.4g 乙酸铵,加水溶解至刻度,转移至广口瓶中,用乙酸调pH 至5.2),再加入40μL 盐酸葡萄糖醛苷酶/芳基硫酸酯酶,两种酶缺一不可,涡旋混匀,于37℃下避光水浴振荡16h。 酶解后,配制内标物浓度为100ng/mL,而后在待测样品中添加100μL,涡旋混匀,使用高速离心机10000r/min 高速离心10min,另置50mL 离心管,转移上层清液至其中,配制5mol/L的NaOH 溶液,后调节pH 至9.8,加入10mL 异丙醇乙酸乙酯混合溶液(比例为异丙醇:乙酸乙酯=6:4),再加入2g 固体氯化钠饱和水相,涡旋混匀,振摇10min, 使用高速离心机10000r/min 离心10min, 将上清液倒入50mL 旋蒸瓶内, 使用10mL 异丙醇乙酸乙酯混合溶液(比例为异丙醇:乙酸乙酯=6∶4)重复提取一次,使用高速离心机10000r/min 离心10min,上清液倒入上述50mL 旋蒸瓶内,50℃下旋转蒸干,用5mL2mol/L 的乙酸铵溶液(pH=5.2)溶解。 使用MCX 柱为固相萃取柱,依次用3mL 甲醇、3mL 水活化,而后将上述溶解液全部过柱,依次用3mL 水、3mL2%的甲酸水溶液、3mL 甲醇淋洗,待淋洗液全部过柱后,空气抽干,用5mL5%的氨水甲醇溶液洗脱; 洗脱液在50℃下吹干。 吹干后的残余物用1mL 甲醇0.1%甲酸/水(甲醇:0.1%甲酸/水=5 ∶95)溶解,过滤膜后供高效液相色谱-串联质谱法测定。 该方法的检测限为0.3ng/mL、定量限为0.5ng/mL。 在0.5ng/mL 至2ng/mL 添加浓度的回收率为60%至120%。 该方法的批内相对标准偏差<20%,批间相对标准偏差<20%。

3 猪肉中β 受体激动剂检测方法

对于动物源性食品中β 受体激动剂检测方法。 王树槐、孙雷、朱永林、张骊、汪霞5 位专家提出了科学合理的液相色谱串联质谱法检测动物源性食品中β 受体激动剂。 该方法的原理是先酶解猪肉试料中的β 受体激动剂残留物,使用高氯酸调pH 后沉淀蛋白,经高速离心,移取上清液,调节pH 值,分别使用乙酸乙酯和叔丁基甲醇提取,使用固相萃取柱净化,经液相色谱-串联质谱法测定。 具体试验方法是:准确称取2g 猪肉样品于50mL离心管内,加入8.0mL 0.2moL/L 乙酸铵溶液(称取15.4g 乙酸铵,将其溶解于1000mL 水中,用适量乙酸调pH 至5.2),再加入盐酸葡萄糖醛昔酶/芳基硫酸酯酶40μL,涡旋混匀,于37℃下避光水浴振荡16h。 酶解完成后,拿出离心管放置至室温,涡旋混匀,使用高速离心机10000r/min 高速离心10min, 另备50mL 离心管,将上清液倾到于此,而后加入5mL 0.1moL/L 高氯酸溶液,涡旋混匀,用高氯酸调pH 至1.0,使用高速离心机10000r/min 离心10min 后, 移取上清液转移至另备50mL 离心管内。 用10moL/LNaOH 溶液调pH 至9.5,加入乙酸乙酯15mL,涡旋混匀,振荡10min,5000r/min 离心5min, 取出上层有机相至另一50mL 离心管内。 再在下层水相中加入叔丁基甲醍10mL,涡旋混匀,并振荡10min,10000r/min 离心5min, 合并有机相,50℃下氮气吹干,用2%甲酸溶液5mL 溶解,备用。 使用MCX 固相萃取柱为净化柱依次用3mL 甲醇、3mL 水、3mL2%甲酸溶液活化, 取上述备用液全部过柱,再依次用3mL2%甲酸溶液、3mL 甲醇淋洗,待淋洗液全部流出,空气抽干,使用2.5mL 3%氨水甲醇溶液洗脱,将洗脱液在50℃下用氮气吹干。 残余物用甲醇0.1%甲酸溶液(甲醇0.1%甲酸溶液=10 +:90,V/V)1mL 溶解,涡旋混匀,15000r/min 高速离心10min,取上清液适量,供液相色谱-串联质谱仪测定。 该方法检测限为0.25μg/kg, 定量限为0.5μg/kg。 本方法在0.5μg/kg 至2μg/kg 添加浓度范围内,用空白添加标准校正,其回收率范围为70%至120%。 本方法批内相对标准偏差≤20%,批间相对标准偏差≤20%。

4 液相色谱串联质谱仪仪器操作条件

以上猪饲料、猪尿、猪肉中β 受体激动剂检测方法,由于样品不同,前处理操作各不相同,但是均为液相色谱串联质谱法,使用的仪器设备相同,因此仪器的使用条件相同。 以下为我单位使用液相色谱串联质谱仪仪器条件:仪器型号为AB Sciex 5500;流动相为A 相:0.1%甲酸水,B 相:0.1%甲酸乙腈;色谱柱为Agilent Eclipse C18 柱,规格:100mm×2.1mm,粒径3.5μm;柱温为30℃;流速为0.3mL/min;进样量为10μL。

表1 流动相梯度设置

电喷雾离子源(ESI)正离子扫描;检测方式为多反应监测(MRM);脱溶剂气为高纯氮气(气流量:1000L/h);锥孔气为高纯氮气(气流量:150L/hr);碰撞气为氩气。

以上为β 受体激动剂在饲料、猪尿、猪肉中的检测方法及液相色谱串联质谱仪仪器设定条件,检测饲料、猪尿、猪肉β 受体激动剂是一项艰巨的工作任务, 我们检测工作者只有科学合理进行检测工作,方能够确保老百姓饮食安全。

表2 9 种β-受体激动剂的定性、定量离子对及锥孔电压、碰撞能量

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