朱翔,肖云斌,易晓莲
(杭州师范大学附属医院 儿科,浙江 杭州 310015)
哮喘是一种慢性炎症性肺病,其特征是气道对过敏原的过度反应,气道水肿和黏液分泌增加。目前中国约有两千万哮喘患者,其病死率位居世界前列[1]。支气管哮喘是一种免疫介导的疾病,其特征为气道高反应性和嗜酸性粒细胞性气道炎症,具体表现为慢性气道炎症、气道黏液高分泌和气道重塑[2]。其中T 辅助2 型细胞(T helper cell 2, Th2)在气道中大量存在,其分泌的Th2 因子如白细胞介素-4(IL-4)和白细胞介素-5(IL-5)在哮喘的病理生理学中起关键作用[3]。
槲皮素是一种植物衍生的黄酮类化合物(化学命名为3,3',4',5,7-五羟基黄酮),以其抗氧化和抗炎特性而广为人知。大多数植物来源的次级代谢产物能够直接影响炎症介质关键的促炎分子表达[4]。黄酮类化合物是植物界常见的次生代谢产物。槲皮素存在于多种食物中,比如茶、洋葱、苹果和红葡萄酒,具有抗氧化、抗炎、抗癌等多方面药理作用,以及止咳、平喘和抗过敏等临床作用[5-6]。有文献报道,槲皮素对于哮喘有一定的疗效,而且槲皮素能够通过下调microRNA-155(miR-155)发挥抗炎作用[7]。本研究通过腹腔注射卵蛋白(Ovalbumin, OVA)致敏复制小鼠哮喘模型,研究槲皮素对IL-4 和IL-5 表达水平的影响,并探讨其保护作用机制是否与下调miR-155 有关,以明确槲皮素治疗哮喘的机制。
36 只10 周龄的BALB/c 雌性小鼠随机分成6 组,即对照组(CON 组)、哮喘模型组(OVA 组)、槲皮素低剂量组(LOW 组)、槲皮素中剂量组(MID 组)、槲皮素高剂量组(HIGH 组)和地塞米松阳性对照组(POS 组),每组6 只。除CON 组外,分别在第1、7 和14 天分3 次对其他组小鼠进行致敏,每次每只小鼠腹腔注射200 μl OVA 混合液(含100 μg 卵清蛋白和4 mg 氢氧化铝),CON 组腹腔注射等量的生理盐水。除CON组外,在第21天对其他5组小鼠进行持续4 d的3%OVA 混合液雾化激发,CON 组则用等量生理盐水雾化吸入。LOW 组、MID 组和HIGH 组小鼠在第18 天时分别用50、100 和200 mg/kg 槲皮素(美国Sigma 公司)溶液灌胃,POS 组用10 mg/kg 地塞米松(重庆市西南药业股份有限公司)溶液灌胃,CON 组和OVA 组则用生理盐水灌胃,连续1 周,1 次/d。
通过观察小鼠行为对哮喘的严重程度进行评估。表现正常为0 分;震颤或点头为1 分;呛咳为2 分;腹肌痉挛为3 分;跌倒为4 分[8]。
第28 天将小鼠处死,打开胸腔并结扎右肺门,分2 次每次用4 ml 生理盐水灌洗左支气管,反复抽吸灌洗液,总回抽支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid, BALF)约7 ml。收集灌洗液后于冷冻离心机(上海卢湘仪离心机仪器有限公司)中以5 000 r/min离心6 min,吸取上清液置入-80℃冰箱保存。
取BALF 标本,按照ELISA 试剂盒(武汉博士德生物科技公司)说明书步骤操作,样品用酶标仪(美国Thermo Fisher Scientific 公司)检测其吸光度并计算样品浓度。
按照TaqMan microRNA Reverse Transcription Kit(美国Thermo Fisher Scientific 公司)的使用说明,在避光条件下分别配制miR 和U6 的反应体系。称取适量肺组织,加入适量Trizol(美国Thermo Fisher Scientific 公司),冰上匀浆,提取总RNA。逆转录体系为5 μl RNA 模板、1 μl miR 逆转录探针、1 μl U6逆转录探针和8 μl DEPC 水,混匀离心后于PCR 仪反应,反应条件: 96℃变性20 min, 42℃退火30 min,85℃延伸5 min,经逆转录制成cDNA。使用实时PCR仪(美国Applied Biosystems 公司)进行qRT-PCR 反应,反应条件为95℃预变性10 min,95℃变性10 s,60℃延伸45 s,重复40 个循环。以U6 作为内参基因,采用2-ΔΔCt法计算各组小鼠肺组织miR-155 的表达水平。
数据分析采用SPSS 21.0 统计软件,计量资料以均数±标准差(±s)表示,比较用One-way ANOVA结合SNK-q检验,P<0.05 为差异有统计学意义。
各组哮喘症状评分比较,差异有统计学意义(P<0.05)。与CON 组比较,OVA 组小鼠的哮喘评分上升,小鼠出现呛咳、腹肌抽搐和运动功能失调,这表明OVA 诱导支气管哮喘小鼠模型复制成功。而用槲皮素对哮喘小鼠给药后,随着槲皮素浓度的增加,小鼠哮喘评分降低,哮喘症状减轻。见表1。
各组IL-4 和IL-5 水平比较,差异有统计学意义(P<0.05)。OVA 组小鼠BALF的上清液中IL-4和IL-5水平高于CON 组,而在槲皮素不同浓度组,IL-4和IL-5 水平均低于OVA 组(P<0.05),且槲皮素浓度越高,IL-4 和IL-5 水平越低。见表2。
各组miR-155 相对表达量比较,差异有统计学意义(P<0.05)。与CON 组比较,OVA 组中miR-155上调(P<0.05)。而在槲皮素不同浓度组,miR-155的相对表达量均低于OVA 组(P<0.05),且槲皮素浓度越高,miR-155 的相对表达量越低。见表3。
表1 各组小鼠哮喘症状评分 (±s)
表1 各组小鼠哮喘症状评分 (±s)
注: ①与CON 组比较,P <0.05;②与OVA 组比较,P <0.05;③与LOW 组比较,P <0.05;④与MID 组比较,P <0.05。
组别 n 哮喘症状评分CON 组 6 0.00±0.00 OVA 组 6 3.38±1.06①LOW+MID+HIGH 组 18 1.75±0.99②LOW 组 6 2.25±0.46②MID 组 6 1.88±1.13②③HIGH 组 6 1.13±0.99②③④POS 组 6 0.88±0.64②F 值 16.700 P 值 0.000
表2 各组小鼠BALF 的上清液炎症因子水平 (±s)
表2 各组小鼠BALF 的上清液炎症因子水平 (±s)
注: ①与CON 组比较,P <0.05;②与OVA 组比较,P <0.05;③与LOW 组比较,P <0.05;④与MID 组比较,P <0.05。
组别 n IL-4 IL-5 CON 组 6 21.97±4.34 25.77±4.65 OVA 组 6 172.28±21.65① 213.70±14.54①LOW+MID+HIGH 组 18 79.47±26.06② 87.74±29.86②LOW 组 6 117.89±12.15② 130.19±18.57②MID 组 6 77.07±3.52②③ 81.73±8.40②③HIGH 组 6 43.36±6.27②③④ 50.53±9.21②③④POS 组 6 27.53±2.42② 38.57±11.16②F 值 88.242 109.336 P 值 0.000 0.000
表3 各组小鼠肺组织miR-155 相对表达量 (±s)
表3 各组小鼠肺组织miR-155 相对表达量 (±s)
注: ①与CON 组比较,P <0.05;②与OVA 组比较,P <0.05;③与LOW 组比较,P <0.05;④与MID 组比较,P <0.05
组别 n miR-155 CON 组 6 100.00±13.61 OVA 组 6 357.37±11.26①LOW+MID+HIGH 组 18 213.51±56.15②LOW 组 6 289.13±21.31②MID 组 6 206.55±32.09②③HIGH 组 6 143.41±16.46②③④POS 组 6 122.87±15.31②F 值 75.141 P 值 0.000
过敏性哮喘是一种复杂的炎症性疾病,其特征是气道高反应性,嗜酸性粒细胞炎症和杯状细胞黏液分泌过多,伴有肺内细胞产生的IL-4 和IL-5 等炎症介质,从而导致气道炎症反应的发生[9]。IL-4 与其他炎症因子整合信号传导,通过刺激嗜酸性粒细胞特异性黏附途径并调节肺嗜酸性粒细胞增多。IL-5 不仅可以活化嗜酸性粒细胞,并参与嗜酸性粒细胞前体终末分化和增殖。此外,嗜酸性粒细胞从骨髓迁移到血液这一过程也依赖于IL-5[4]。miR-155 是一种重要的miRNAs,其可调节自身免疫和炎症反应。有研究显示,miR-155 在过敏性哮喘中上调,表明其在过敏性哮喘中发挥重要作用。miR-155 缺失抑制Th2 启动能力,从而缓解小鼠过敏性气道炎症[10]。
黄酮类化合物槲皮素具有抗炎和抗过敏的特性。在豚鼠哮喘模型中,槲皮素可预防过敏原与血小板活化因子所诱导的支气管阻塞和支气管高反应性[11]。前期研究表明,槲皮素对哮喘小鼠具有一定的保护作用,但其在哮喘发病机制方面的研究甚少。
本研究通过复制OVA 诱发的小鼠哮喘模型,一方面证明槲皮素对气道炎症有抑制作用,对哮喘反应具有缓解作用;另一方面明确槲皮素保护支气管哮喘小鼠的作用与下调IL-4、IL-5 和miR-155 有关。这些发现为槲皮素在哮喘小鼠模型中的作用提供了新的见解,并且拓宽目前对槲皮素免疫药理学功能的认识和理解,为槲皮素防治支气管哮喘提供参考证据。