常丽娟,刘文娟,张富丽,王 东,宋 君
(四川省农业科学院分析测试中心,四川 成都 610066)
【研究意义】自然界中植物生长受到各种生物胁迫和非生物胁迫的影响,非生物胁迫可分为温度胁迫、水分胁迫、盐胁迫、矿物质缺乏等因素,是制约植物生长发育、影响作物产量和质量的关键因子。转基因抗虫棉是我国商业化种植面积最大的转基因农作物,20世纪90年代我国研制了具有自主知识产权的第一代转Bt基因抗虫棉,成功抵御住了棉铃虫的危害,极大提高了转基因抗虫棉的市场占有率,国产转基因抗虫棉在遏制棉铃虫爆发、降低农药使用、节约生产成本等方面取得了世人瞩目的成就,带来了巨大的社会和经济效益。因此,研究非生物胁迫与转基因抗虫棉外源Bt蛋白表达量的关系可以指导转基因抗虫棉的田间种植,避免环境因素对抗性的影响,具有重要的研究意义。【前人研究进展】非生物胁迫可导致水稻[1-2]、小麦[3]、玉米[4]等作物花粉药隔维管束结构异常,导致花粉败育。王晓宇等[5]对小麦幼苗进行4种非生物胁迫处理,发现非生物胁迫抑制小麦的生长,植株干枯矮小,根和叶片不同程度变短,根、茎、叶中可溶性总蛋白含量升高。非生物胁迫对转基因抗虫棉外源蛋白表达量存在影响。张祥等[6]研究发现,高温条件下不同湿度处理4种转基因抗虫棉,盛蕾期抗虫棉Bt蛋白含量与CK无差异,盛花期和盛铃期高温高湿处理抗虫棉Bt蛋白含量不同程度下降。王家宝等[7]研究发现,花铃期田间渍涝或土壤缺水干旱,可显著降低棉株不同器官的Bt蛋白含量。【本研究切入点】本试验盆栽种植黄河流域和长江流域具有代表性的抗虫棉品种中棉45号和鄂抗虫棉1号,同时设置8种非生物胁迫条件,对2种转基因抗虫棉根、茎、叶中Bt蛋白含量进行检测。【拟解决的关键问题】本试验旨在探究非生物胁迫对Bt蛋白表达量的影响,避免不利环境因素降低转基因抗虫棉的抗性,为转基因抗虫棉田间种植提供理论依据。
1.1.1 植物材料与土壤 试验所用的转Bt 基因抗虫棉品种由中国农科院棉花研究所提供;种植转基因抗虫棉的土壤为大田土壤与市场购买营养土按2∶1配制而成的混合土,土壤pH 6.2~6.8,偏酸性,土壤有机质含量3.56 %,全氮 1.2 g·kg-1,速效磷 12.1 mg·kg-1,速效钾197.5 mg·kg-1。
1.1.2 试剂与仪器 试验所用BCA总蛋白定量试剂盒购于天根生化科技(北京)有限公司;Bt蛋白定量检测试剂盒购于美国一龙公司。试验所用的仪器有酶标仪(μQuant)、人工气候箱(RXZ-600B)、低温震荡培养箱(BSD-250)、赛多利斯电子天平(BS124S)。
1.2.1 试验设计 实验室人工气候箱盆栽种植转基因抗虫棉,选择直径28 cm,高26.5 cm的塑料桶,底层放置厚约5 cm鹅卵石,上层装入混匀的试验土壤。人工气候箱温度37 ℃,光照16 h,黑暗8 h,光照强度66 %,湿度60 %。当幼苗生长到4~6叶期,分别进行以下处理:①对照:不经任何处理,充分灌水(CK);②温度胁迫:低温(4 ℃)、高温(37 ℃);③盐胁迫:0.1、0.2、0.5 mol·L-1NaCl;④水分胁迫:轻度干旱(土壤含水量为田间持水量的60~70 %)、中度干旱(土壤含水量为田间持水量的50 %~60 %)、重度干旱(土壤含水量为田间持水量的40 %~50 %)。参照李彦彬等[8]试验所用的方法进行水分梯度设置和控制土壤水分,每个处理设置3次重复,处理48 h后,取转基因抗虫棉的根、茎、叶-80 ℃冰箱冻存。
1.2.2 待测样品的处理 将采集的转Bt基因抗虫棉样品液氮研磨,每个样品研磨后迅速称取0.1 g粉末于离心管中,向离心管中加入1 mL的PBS溶液(由Envirologix试剂盒提供的提取缓冲液粉末溶解后再加5 %的吐温配置而成),低温摇床振荡12 h,取出样品放于低温高速离心机4 ℃、8000 r/min离心20 min,取上清液备用。
1.2.3 可溶性总蛋白含量的检测 按照BCA 蛋白含量检测试剂盒要求稀释标准曲线,并稀释待测样品的可溶性总蛋白浓度至标准曲线范围内,将25 μl BSA标准液和待测样品分别加入到酶标板内相应位置,然后加入BCA 工作液200 μl,充分混匀37 ℃放置30 min后,在562 nm波长下读取光密度值,建立标准曲线并计算样品中可溶性总蛋白的含量。
1.2.4 Bt蛋白含量的检测 Bt 蛋白含量采用Envirologix试剂盒测定,按照试剂盒说明书,将标准蛋白稀释成1.00、0.80、0.64、0.46、0.28、0.10 ng·mL-16个浓度梯度,并稀释待测样品的Bt 蛋白浓度至标准曲线范围内,将标准液和待测样品一起加入酶标板内相应位置,得到相应的光密度值,建立标准曲线并计算样品中单位鲜重Bt 蛋白的含量。
采用 Excel 2007和SPSS 13.0 软件进行数据处理和统计分析。
对温度胁迫条件下转基因抗虫棉根、茎、叶中Bt蛋白含量进行测定(表1),低温及高温胁迫导致Bt蛋白含量下降,高温下降幅度大于低温。根、茎中Bt蛋白含量下降较明显,均与CK差异显著,中棉45号叶中Bt蛋白含量呈下降趋势,与CK相比较无差异,鄂抗虫棉1号下降幅度大,与CK差异达显著水平。
表1 温度胁迫对转基因抗虫棉蛋白表达量的影响
对盐胁迫条件下转基因抗虫棉根、茎、叶各组织的外源Bt蛋白含量进行测定(表2),与CK相比较,在不同浓度的盐胁迫条件下,2个抗虫棉品种的根、茎、叶中Bt蛋白含量先不同程度的下降,在0.1或0.2 mol·L-1盐浓度处下降到最低,最低点Bt蛋白含量与CK差异达显著水平;在0.5 mol·L-1盐浓度胁迫条件下,Bt蛋白含量快速上升,其中鄂抗虫棉1号茎、叶中上升幅度最大,Bt蛋白含量高于CK,并与CK差异达显著水平。
对水分胁迫条件下转基因抗虫棉根、茎、叶中Bt蛋白含量进行测定(表3),不同程度水分胁迫下2个转基因抗虫棉根、茎、叶中,Bt蛋白含量变化趋势同盐胁迫大致相同。与CK相比较,在不同程度水分胁迫条件下,2个抗虫棉品种的根、茎、叶中Bt蛋白含量先不同程度的下降,在轻度干旱或中度干旱胁迫条件下最低,重度干旱胁迫条件下,Bt蛋白含量快速上升,其中鄂抗虫棉1号的根、茎中上升幅度最大,Bt蛋白含量高于CK,并与CK差异达显著水平。
表3 干旱胁迫对转基因抗虫棉蛋白表达量的影响
非生物胁迫对转基因抗虫棉Bt蛋白表达量的影响已有较多报道,其中温度、盐、干旱胁迫是田间较常见的非生物胁迫因素。已有研究表明,37 ℃高温胁迫可导致Bt蛋白表达量下降,但温度胁迫对棉花生长后期的影响大于生长前期[9-10]。王永慧等[11]研究发现,温度和湿度双重胁迫可显著降低抗虫棉Bt蛋白含量,低温低湿度胁迫12 h后叶片Bt蛋白含量发生显著下降,而高温低湿度处理胁迫24 h后下降幅度较大。本试验研究发现,抗虫棉苗期温度胁迫48 h后,根、茎、叶中Bt蛋白含量发生显著下降,高温胁迫对Bt蛋白含量的影响大于低温胁迫。
土壤盐浓度直接影响抗虫棉Bt蛋白含量,张桂玲等[12]研究发现,10 d短期盐胁迫可导致抗虫棉根、茎、叶中的Bt蛋白含量、可溶性蛋白含量均降低,而从播种到四片真叶的长期盐胁迫可导致抗虫棉根、茎、叶中的Bt蛋白含量、可溶性蛋白含量均增加。代建龙等[13]研究发现,盐胁迫显著降低抗虫棉叶片中Bt蛋白含量,但盐胁迫条件下施氮肥可提高Bt蛋白含量。本试验研究发现,与CK相比较,0.1或0.2 mol·L-1NaCl的盐胁迫导致抗虫棉根、茎、叶中Bt蛋白含量不同程度降低,0.5 mol·L-1NaCl盐浓度胁迫处理后,Bt蛋白含量上升,在鄂抗虫棉1号的茎、叶中,Bt蛋白含量上升幅度较大,其测量值高于CK,与CK差异达显著水平。
水分过高或过低都不利于抗虫棉Bt蛋白的表达,周冬生等[14]对抗虫棉蕾期植株进行涝渍和干旱处理,旱涝处理1周后,取抗虫棉叶片和幼蕾进行生物测定,发现涝渍造成转Bt基因棉抗虫性的显著下降,而土壤干旱的影响则相对较小。王俊等[15]在抗虫棉盛蕾期和盛铃期进行5个梯度的水分胁迫处理,发现在抗虫棉蕾和铃壳中Bt蛋白含量随土壤含水量的下降而显著降低。本试验研究发现,与CK相比较,随干旱胁迫程度加重,抗虫棉根、茎、叶中Bt蛋白含量呈现先下降后上升的趋势,重度干旱胁迫条件下,鄂抗虫棉1号的根、茎中,Bt蛋白含量上升幅度较大,与CK差异达显著水平。
盐胁迫和水分胁迫都会导致植物细胞失水,2种非生物胁迫的分子机制都是通过外界信号诱导相关转录因子,调控下游抗性基因的表达以提高植物的抗逆性[16]。盐胁迫和水分胁都可以下调Bt蛋白的表达量,其分子机制还有待于进一步研究。本试验研究发现盐胁迫和干旱胁迫条件下,抗虫棉Bt蛋白表达量呈现先下降后上升的趋势,与前人的研究结果不一致,造成差异的试验结果可能有以下两个因素:①本试验设置的盐胁迫浓度和干旱程度范围大于之前的研究,胁迫时间也不相同。②在测量Bt蛋白含量时,称取相同质量的样品,由于0.5 mol·L-1盐浓度和重度干旱胁迫条件下,抗虫棉细胞严重失水,叶片萎蔫,称取样品量相对较大,因此造成0.5 mol·L-1盐浓度和重度干旱胁迫条件下Bt蛋白表达量上升的现象。
非生物胁迫对转基因抗虫棉Bt蛋白表达存在影响,温度、盐、干旱都会导致转基因抗虫棉Bt蛋白表达量下降,田间种植转基因抗虫棉要评估环境因子对抗虫棉抗性的影响,密切关注田间抗虫棉抗性的动态变化,在抗虫棉抗性下降田间虫害爆发初期及时排除环境因子的影响,降低害虫对棉花生产的危害。