固相支撑液液萃取-液相色谱-串联质谱法测定尿液中10种单羟基多环芳烃

2019-07-01 10:17商婷赵灵娟李佩曾祥英于志强
分析化学 2019年6期
关键词:串联质谱液相色谱尿液

商婷 赵灵娟 李佩 曾祥英 于志强

摘 要 通过检测人体尿液中多种羟基多环芳烃(OH-PAHs)的浓度可全面评估多环芳烃(PAHs)在人体的负荷水平。本研究建立并优化了一种基于固相支撑液液萃取(SLE)的前处理技术,在此基础上,利用液相色谱-串联质谱法(LC-MS/MS)测定人体尿液中的10种OH-PAHs。尿样采用硅藻土SLE柱进行富集净化,二氯甲烷-正己烷(3∶7, V/V)混合溶液作为目标化合物的洗脱液。前处理优化结果表明,与传统方法相比,本方法具有较好的回收率,同时可有效降低生物基质的干扰。本方法在3个加标浓度水平(10、50和100 μg/L)下的回收率为88.5%~120.9%,重复性精密度范围为1.6%~8.1%。检出限与定量限分别在0.06~0.3 μg/L和0.2~1.0 μg/L之间。本方法成功用于广东省小学生尿液中OH-PAHs的测定, 结果表明,2-OHN是最主要的检出化合物,最高浓度达到4.83 μg/L。

关键词 单羟基多环芳烃; 尿液; 固相支撑液液萃取; 液相色谱-串联质谱

1 引 言

多环芳烃(Polycyclic aromatic hydrocarbons,PAHs)是指分子中具有两个或两个以上苯环的一类碳氢化合物,其主要来源是煤、石油、木材等不完全燃烧或热裂解产物[1]。PAHs可通过呼吸道、皮肤和消化道等多种暴露途径进入人体,经体内代谢形成羟基多环芳烃(OH-PAHs),并以葡萄糖醛酸、硫磺酸结合物的形式主要通过尿液排泄[2]。由于它们具有潜在的“三致”(致癌、致畸、致突变)效应以及在全球分布的广泛性[3],PAH对人体健康的潜在危害成为世界各国广泛关注的环境污染问题,人体内暴露水平的评估是开展PAHs健康风险评价的重要基础科学数据。

已有研究显示,尿中PAHs代谢物的测定通常与PAHs暴露密切相关[4]。由2~4个苯环组成的分子量较小的OH-PAHs,主要通过尿液排泄,而分子量较高的OH-PAHs(苯环数量>4)主要通过粪便排泄[5,6]。由于PAHs的暴露途径复杂多变,各种暴露途径对人体内暴露的贡献难以准确评估,因此,人体尿液中OH-PAH的测定成为评价PAH内暴露水平的重要生物标志物。目前,固相萃取(SPE)[6~11]与液液萃取(LLE)[12~17]是应用最广泛的样品前处理方法。SPE具有重现性稳定以及装置价格合理、易于获取等特点,但样品前处理使用相应的萃取柱时需活化、平衡和清洗等步骤,耗时耗力。LLE常用溶剂有戊烷、二氯甲烷和正己烷等,选择性高,分离效果较好,但操作复杂,溶剂使用量大,且易产生乳化现象导致重复性较差,且上述前处理技术存在目标化合物回收率不稳定、生物基质干扰严重等技术难点,无法满足流行病学大样本量研究的需求,因此,开发快速、高效的前处理技术成为OH-PAHs内暴露研究的重要内容。

SLE柱采用了特殊工艺处理过的硅藻土,拥有最大的比表面积和最低的表面活性,能提供一个理想的液液分配的支撑表面,可代替大部分传统的LLE方法[18]。在传统LLE方法基础上,SLE方法利用分析物在两相中不同的溶解度和分配比,采用经过高度改良的具有高比表面积的多孔硅藻土作为吸附剂,结合其吸水性强、化学惰性等特点,快速附样品基质中的水分,使目标物与水分分离,具有不易产生乳化现象、基质效应降低和需要样品量少等优点[19]。样品前处理时,使用相应的萃取柱,仅需上样和洗脱两步,即可从水相中萃取目标化合物。当加入水性生物样品时,样品在填料的表面扩散并被吸收,从而形成萃取界面,相当于LLE的界面,当与水不相溶的有机溶剂加入后,目标分析物被有机溶剂溶解并收集下来。相较于LLE、SPE等传统尿液前处理方法,SLE可有效提高样品的提取能力和效率,已广泛应用于人体尿液和血液样品的前处理[20~28],如Meunier等[28]用甲基叔丁基醚提取血浆样品的醛固酮,方法方便简单。Liu等[23]利用正己烷萃取人体血液和尿液中的多环麝香,无需调节pH值和盐度,样品制备时间显著缩短(~15 min)。上述研究结果表明,利用SLE方法可以对生物体液中的污染物进行高通量分析。

本研究选择人尿液中的1-羟基萘(1-OHN)、2-羟基萘(2-OHN)、2-羟基芴(2-OHF)、3-羟基芴(3-OHF)、1-羟基菲(1-OHPhe)、2-羟基菲(2-OHPhe)、3-羟基菲(3-OHPhe)、4-羟基菲(4-OHPhe)、9-羟基菲(9-OHPhe)和1-羟基芘(1-OHP)共10种OH-PAHs为目标物,通过SLE洗脱溶剂的筛选和优化,确定前处理富集净化方法,然后使用LC-MS/MS 技术对其进行定性和定量分析,为尿液中常见的PAHs代谢产物检测提供了科学依据。

2 实验部分

2.1 仪器与试剂

1100型液相色谱仪(LC,美国Agilent公司)-API4000三重四极杆质谱仪(MS/MS,美国AB SCIEX公司); HeraeusTM LabofugeTM200台式离心机(美国Thermo Fisher公司); 氮吹仪(美国Pierce公司); 12孔固相萃取装置(美国Supeclo公司); Milli-Q Unique-R10超纯水系统(美国Millipore公司); 0.2 μm聚四氟乙烯膜滤头(上海安谱科学仪器有限公司); 5-mL SLE固相支撑液液萃取小柱(瑞典Biotage公司)。

正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯、甲基叔丁基醚、正戊烷、甲苯和甲醇等有機溶剂均为色谱级(99.9%,德国Merck公司); 醋酸钠和冰醋酸 (99.97%,美国Tedia公司); HCl(质量分数为37%,德国 Sigma-Aldrich 公司); β-葡萄糖苷酸-芳基硫酸酯酶(美国Sigma公司,含122400单位/mL β-葡糖苷酸酯酶和3610 单位/mL芳基硫酸酯酶); 实验用水为超纯水(18.2 MΩ·cm)。

10种OH-PAHs标样(1-OHN、2-OHN、2-OHF、3-OHF、1-OHPhe、2-OHPhe、3-OHPhe、4-OHPhe、9-OHPhe和1-OHP)均购于美国Supelco公司; 同位素标记的标样(D8-1-OHN和D9-1-OHP)来自美国剑桥同位素实验室。

2.2 尿液样品采集

尿液样本的采集对象为广州市某小学四年级学生,所有志愿者均自愿参加,并在家长的引导下签署同意书,本研究随机选取了20例尿液样本进行检测,对方法应用进行验证。尿液样本采集后保存于预先处理过的聚乙烯塑料瓶中,于80℃放置备用。

随机采取实验室志愿者(22~28岁)尿液10例,每例取10 mL进行混合,形成的混合尿液基质用于方法优化。

2.3 样品前处理

样品置于室温下解冻后,3000 r/min离心10 min,取上清液,准确量取2 mL,加入10 ng回收率指示物(D8-1-OHN和D9-1-OHP),加1 mol/L HCl溶液与醋酸-醋酸钠缓冲溶液调节样品至pH 5.0,加β-葡萄糖苷酸-芳基硫酸酯酶20 μL,充分混匀,置于恒温振荡器中于37 ℃下避光酶解16 h。将酶解后的样品加入固相支撑液液萃取小柱中,施加2~10 s的真空或正压,等待5 min,使样品分散并充分吸附于填料表面。以5 mL二氯甲烷-正己烷(3∶7, V/V)混合溶液作为洗脱溶剂,连续洗脱3次,合并收集到的洗脱液进行氮吹,以甲醇定容至400 μL。用0.2 μm的尼龙膜过滤后,于20℃保存, 备用。

2.4 仪器分析

采用Eclipse-C18柱(250 mm×4.6 mm, 5 μm, 美国Agilent公司)为色谱分析柱, 进样量为10 μL, 以水(A)和甲醇(B)为流动相, 流速为0.6 mL/min, 梯度洗脱程序: 0~5 min, 60% B; 5~14 min, 60%~78% B; 14~21 min, 78%~85% B; 21~30 min, 85%~100% B; 30~35 min, 100% B; 35~39 min, 100%~60% B; 39~45 min, 60% B。质谱检测采用电喷雾离子源(ESI), 负离子模式, 电压4500 V, 离子源温度450℃, 雾化气压力50 psi, 辅助气压力60 psi, 窗帘气压力30 psi; 采用多反应监测模式(MRM)。各目标化合物保留时间和定性定量离子对见表1。

3 结果与讨论

3.1 洗脱溶剂的优化

用于SLE柱的洗脱溶剂需与水不混溶,同时对OH-PAH具有良好的溶解性,因此溶剂的选择主要取决于目标物的溶解度和极性等特性。对于非极性化合物,非极性溶剂(如庚烷、戊烷、己烷)较为理想,而弱极性化合物,需选择有一定极性的有机溶剂,如甲基叔丁基醚、二氯甲烷或乙酸乙酯。目标OH-PAHs的pKa值在8.0~9.2之间,具有弱极性。基于此,选取正己烷(Hex)、甲苯(MB)、戊烷(Pen)、二氯甲烷(DCM)、乙酸乙酯(EtAC)、甲基叔丁基醚(MTBE)作为洗脱溶剂进行优化,通过10种OH-PAHs的回收率进行评价。

不同溶剂体系对10种OH-PAHs回收率的影响如图1所示,每种溶剂对OH-PAHs都有一定洗脱效率,其中DCM对各目标化合物的回收率均较理想。但由于DCM極性强,洗脱能力随之增强,因此洗脱下来的化合物相对较多,在LC-MS/MS进样时发现具有较多的非目标化合物被检测到,因此本研究中进一步考虑采用Hex-DCM混合体系,并对Hex-DCM不同配比时的混合溶剂的洗脱能力进行考察。结果表明,当洗脱溶剂Hex-DCM的配比为7∶3(V/V)时,所有目标物的回收率均理想,且色谱峰的干扰较小; 当DCM配比增加时,回收率无明显提高而干扰峰增加。最终选择DCM-Hex(3∶7, V/V)混合溶剂作为洗脱溶剂。

对洗脱溶剂的使用量进行了优化。洗脱溶剂使用量对回收率的影响见图2, 采用1 × 5 mL混合溶剂洗脱目标化合物,除1-OHP外,其余化合物回收率均高于90%, 使用3×5 mL混合溶剂时10种OH-PAHs的回收率均高于95.0%。因此洗脱次数最终设定为3次,优化的洗脱液的体积为15 mL。

3.2 方法评价

尿液基质为10例志愿者尿液的等体积混合液。采用标准加入法考察本方法的回收率,由于混合尿液基质中广泛存在OH-PAHs,因此同时进行加标基质和空白基质的前处理,每个加标浓度进行6次重复实验。从回收率、重复性及基质效应等3方面对建立的方法进行评价,并与目前广泛使用的固相萃取方法进行对比。

评价方法中分别进行低浓度(10 μg/L)、中浓度(50 μg/L)和高浓度(100 μg/L)的加标实验,同时依据文献[11]中的报道,通过手动SPE装置、全自动SPE装置流程进行尿液前处理,以便进行比对。不同方法中目标化合物的回收率见表2。结果表明,SLE前处理方法中,各目标化合物在10、50与100 μg/L加标浓度下的回收率在88.5%~120.9%之间,相对标准偏差<6.7%; 手动SPE的回收率在804%~940%之间,自动SPE的回收率在76.8%~107.3%之间。 与手动SPE、自动SPE相比,本方法加标回收率更高,稳定性也较好。

通过混合尿液基质加标与溶剂标样同时检测,基质效应计算公式如下:

其中, ME为基质效应; Area1为混合基质加标后目标物检测的响应峰面积; Area0为混合基质中目标物检测的响应峰面积; Area2为溶剂标样中目标物检测的响应峰面积。ME<0,表示有基质抑制效应; ME>0,表示有基质促进效应; ME=0,表示无基质效应。结果表明(表3),SLE各化合物的基质效应在4.1%之间,均呈现基质抑制效应,但除了2+3-OHF与1+9-OHPhe外,基质效应均较小。与手动SPE的44.2%~21.6%和自动SPE的74.9% ~39.1%相比,基质效应明显降低。引起LC-MS/MS中基质效应的内源性成分(如盐、蛋白质、肽类和磷脂等)在这些溶剂中不可溶。因此,分析物被洗脱下来,而基质仍保留在硅藻土吸附剂的水相中,被有效地从最终萃取物中去除。

表4列出了所有分析物的回归方程、重复性、检测限和定量限。各化合物都呈现了良好的线性,相关系数(R2)均高于0.993。检出限与定量限分别在0.06~0.3 μg/L和0.2~1.0 μg/L之间,各化合物的日内(n=6)偏差与日间(n=6)偏差在1.6%~8.1%之间。OH-PAHS标准物的总离子流图见图3。

目前,用于OH-PAHs的检测方法主要有HPLC、GC-MS和LC-MS/MS。方法的回收率和灵敏度除仪器自身的检测能力外,前处理过程也在很大程度上影响分析方法的回收率及灵敏度。Jongeneelen等[29]采用SPE对尿样中1-OHP进行富集,回收率仅为 78%±2%,尿样基质干扰大。Campo等[12]用正己烷进行LLE萃取,在此基础上通过甲硅烷基化试剂进行衍生化,GC-MS方法检测的LOD在0.1~1.4 μg/L之间。Jacob等[14]采用戊烷-乙酸乙酯(9∶1, V/V)混合溶剂萃取出尿液样品中的OH-PAHs,随之将代谢物转化为五氟苄基醚衍生物后, 利用LC-MS/MS进行检测, 方法灵敏度高,LOD可低至0.01~0.50 μg/L。但这些方法需要进行分析物的衍生化,操作繁琐耗时,衍生化反应的稳定性要求较高。Fan等[13]建立了一种利用戊烷和甲苯的混合溶剂萃取OH-PAHs的方法,减少了基质干扰并显著提高了方法灵敏度,LOD范围为1.72~17.47 ng/L,但需要加入AgNO3溶液以降低PAH硫化物的干扰,操作相对较为复杂,不适用于流行病学大队列的研究需求。本方法与文献报道的其它方法相比,不需要进行衍生化,操作简单快速,且检出限较低。

3.3 方法的实际应用

应用本方法对广东省某小学志愿者的20例尿样进行了检测。由表5可见,所有目标物均有检出,2-OHN是最主要的检出化合物,最高浓度达到4.83 μg/L。目标物的平均浓度分别为2-OHN 1.16 μg/L、1-OHN 0.62 μg/L、2+3-OHF 0.21 μg/L、2-OHPhe 0.08 μg/L、3-OHPhe 0.11 μg/L、1+9-OHPhe 0.10 μg/L、4-OHPhe 0.02 μg/L和1-OHP 0.15 μg/L。上述结果表明,本方法可用于人体尿液中OH-PAHs的检测。

4 结 论

建立了SLE富集、净化人体尿液中多种 OH-PAHs, 结合LC-MS/MS进行检测的方法。 建立的前处理技术无需对SLE柱进行预活化,只需将2 mL尿液样品酶解后载入柱中,用3×5 mL二氯甲烷和正己烷(3∶7,V/V)的混合溶剂进行洗脱,方法简单、快速。与目前广泛使用的SPE等前处理技术相比,SLE方法具有回收率高且稳定、生物基质干扰较小等显著优势,可满足人体尿液中10种OH-PAHs的分析需求。

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