成冬,郭磊,姜天龙,周仁义,刘文博,罗鹏,梅润宏,杨旭浩
(中国医科大学附属第一医院骨科,沈阳 110001)
线粒体自噬是一种选择性自噬,通过自噬体—溶酶体系统去除损伤和功能障碍的线粒体,确保细胞内线粒体功能稳定和细胞存活。软骨细胞是关节软骨的唯一细胞类型,线粒体功能影响软骨细胞存活,因此线粒体自噬与骨性关节炎 (osteoarthritis,OA) 的发病紧密相关[1]。最近发现17 β-雌二醇不仅与氧化应激、炎症反应和细胞凋亡有关,还与自噬相关。已有研究[2]证明,在Raw 264.7细胞中17 β-雌二醇可以通过激活PI3K/Akt信号转导通路降低氧化应激和炎症反应。17 β-雌二醇可以通过ER-ERK-mTOR途径促进成骨细胞自噬,保护成骨细胞免受无血清诱导的细胞凋亡[3]。G蛋白耦联雌激素受体30 (G-protein coupled estrogen receptor-30,GPR30) 是一种7次跨膜G蛋白耦联雌激素受体,能介导快速的细胞反应。细胞自噬中,新合成的微管相关蛋白1轻链3 (microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3) 经剪切修饰变成胞浆蛋白LC3-Ⅰ,之后转变为LC3-Ⅱ,定位于前自噬泡和自噬泡膜表面,参与自噬体的伸展扩张。TOM20是线粒体外膜复合体转位亚基,参与线粒体前体蛋白转运,被认为是线粒体自噬的潜在标志物[4]。热休克蛋白60 (heat shock protein 60,Hsp60) 主要定位于线粒体内,可通过催化过氧化氢还原成水,保护线粒体免于活性氧 (reactive oxygen species,ROS) 诱导的损伤。新的证据表明,雌激素可通过GPR30对脊髓损伤进行保护;可通过改变PI3K/Akt-mTOR信号通路调节细胞自噬,从而降低脊髓损伤后的损伤程度[5]。本研究拟探讨17 β-雌二醇是否通过抑制线粒体自噬保护ATDC5软骨细胞,以及17 β-雌二醇是否通过GPR30/PI3K/Akt途径调节线粒体自噬。
17 β-雌二醇购自美国Sigma-Aldrich公司。含有L-谷氨酰胺和HEPES以及胎牛血清的DMEM/F12购自美国Logan公司。选择性GPR30拮抗剂 (G15) 购自美国Tocris Bioscience公司。P38抑制剂、JNK抑制剂、PI3K抑制剂、抗-GPR30 (sc-48525-R,多克隆,WB 1∶200,IF 1∶50) 、抗Lamp2 (sc-8100,多克隆,IF 1∶50) 、抗TOM20 (sc-11415,多克隆,WB 1∶200,IF 1∶50) 、抗-LC3 (sc-376404,单克隆,WB 1∶100) 和抗Hsp60 (sc-1052,多克隆,WB 1∶200) 均购自美国Santa Cruz Biotechnology公 司。Anti-Total/phosphor-Akt购自美国Abcam公司。具有alexa fluor 555标记的驴抗兔IgG (P0179) 的免疫荧光染色试剂盒购自中国江苏Beyotime Biotechnology公司。IFKine®绿色结合驴抗山羊IgG (A24231) 购自美国Abbkine公司。
1.2.1 细胞培养:购买小鼠软骨原代细胞系ATDC5(中国南京Kebai公司) 。用含有5%胎牛血清的DMEM/F12培养基培养ATDC5细胞。将细胞在37 ℃含有5%CO2的湿化培养箱中培养。每2 d更换1次培养基。在无血清培养基中培养24 h后,将细胞用不同浓度的17 β-雌二醇( 0 mol/L,10-9mol/L,10-8mol/L和10-7mol/L,含或不含15 μ mol/L的G15或20 μ mol/L的LY294002) 处理24 h。
1.2.2 免疫荧光染色( immunofluorescence staining,IF) 分析:将ATDC5软骨细胞在24孔板中培养孵化后,用4%多聚甲醛固定并加入0.1 mol/L磷酸盐( pH7.3) 缓冲30 min。标本固定后,用PBS洗涤10 min。用0.1%TritonX-100处理细胞30 min以透化细胞膜,再用PBS洗涤10 min。用含有5%牛血清白蛋白的TBST封闭30 min,加入特异性一抗Lamp2抗体( 1∶50),TOM20抗体( 1∶50) 或GPR30抗体( 1∶50),4 ℃过夜。用PBS洗涤细胞10 min,并加入二抗IgG( A24231,1∶1 000) 和IgG( P0179,1∶1 000) 反应30 min。DAPI染色5 min后,PBS洗涤15 min。通过Olympus FV1000共焦激光扫描显微镜观察,峰值发射波长在518 nm( 绿色) 和565 nm( 红色) 。
1.2.3 Western blotting:用PBS洗涤ATDC5软骨细胞,通过加入蛋白酶抑制剂苯甲基磺酰氟( 中国Beyotime公司) 和磷酸酶抑制剂( 中国KeyGen公司) 的放射性免疫沉淀测定缓冲液( 中国Beyotime公司) 获得总蛋白质;用BCA蛋白质测定试剂盒( 中国Beyotime公司)测定其浓度。采用SDS-PAGE分离样品,转移蛋白至PVDF,70 V处理1.5 h。为了阻断非特异性结合,室温下将PVDF膜在脱水脱脂牛乳中处理120 min,用含Tween 20的TBS洗涤3次,持续30 min。加入一抗,在4℃下孵育过夜。TBST洗涤30 min,与辣根过氧化物酶缀合的抗物二抗体室温下孵育2 h。TBST洗膜3次共30 min,采用BeyoECL plus试剂盒使蛋白质显像。
1.2.4 细胞活力和增殖检测:将ATDC5软骨细胞接种于96孔板( 2×103/孔),培养24 h。将细胞转移至不含血清的DMEM/F12培养基中( 含有1 7β-雌二醇10-7mol/L),37 ℃孵育24 h后,加入10 μ L MTT试剂( 5 mg/mL),37 ℃孵育4 h。除去培养基,用100 μ L二甲基亚砜溶去甲臜晶体。所有实验均重复3次。参考570 nm波长,使用酶标仪( 光谱最大加384微板读数器,德国Ismaning公司) 测量光密度。
Western blotting分析 (图1A、1B) 和IF染色 (图1C) 结果显示,GPR30在ATDC5中有表达。用不同浓度的17 β-雌二醇 (0,10-9,10-8和10-7mol/L,含或不含15 μ mol/L的G15) 处理ATDC5软骨细胞24 h,结果显示17 β-雌二醇以剂量依赖性方式提高GPR30的表达水平,浓度为10-7mol/L时GPR30表达水平最高 (P <0.05) (图1A、1B) 。此外,Western blotting结果还显示GPR30表达水平以时间依赖性方式递增 (图1A) 。IF染色显示,17 β-雌二醇提高了GPR30在细胞膜和细胞质中的表达 (P < 0.05) (图1C) 。
图1 17 β-雌二醇增强ATDC5软骨细胞内GPR30的表达Fig.1 17 β-estradiol can stimulate the activation of GPR30 expression in ATDC5 chondrocytes
为了解17 β-雌二醇对线粒体自噬蛋白质活性的影响,本研究检测了LC3、TOM20和Hsp60的表达。与对照组相比,用17 β-雌二醇处理的细胞LC3-Ⅱ的表达水平显著降低;而17 β-雌二醇和G15或PI3K抑制剂对细胞内LC3-Ⅱ的表达没有影响 (图2) 。与对照组相比,用17 β-雌二醇处理的细胞内TO M20和Hsp60的表达水平更高;而G15或PI3K抑制剂对TOM20和Hsp60的表达没有影响 (图3) 。
图2 17 β-雌二醇通过ATDC5细胞中GPR30/PI3K/Akt通路调控LC3、TOM20和Hsp60的表达Fig.2 17 β-estradiol regulates the expression of LC3,TOM20,and Hsp60 in mitophagy through the GPR30/PI3K/Akt pathway in ATDC5 cells
图3 17 β-雌二醇通过ATDC5细胞中GPR30/PI3K/Akt通路调节线粒体自噬。Fig.3 17 β-estradiol regulates mitophagy through the GPR30/PI3K/Akt pathway in ATDC5 cells
Western blotting结果显示,用17 β-雌二醇处理的细胞Akt磷酸化水平升高,总Akt表达水平保持不变。当用G15 (15 μ mol/L) 或PI3K抑制剂 (20 μ mol/L) 处理细胞时结果相反 (图2),表明ATDC5细胞中17 β-雌二醇 (10-7mol/L) 可以通过GPR30激活PI3K/Akt途径。此外,mTOR磷酸化 (p-mTOR) 的抑制程度可作为自噬途径活化的指标。结果显示,17 β-雌二醇 (10-7mol/L) 可提高ATDC5细胞内p-mTOR的水平,而在用G15或mTORi (10-7mol/L) 处理的细胞中则结果相反(图3),表明ATDC5细胞中17 β-雌二醇可通过GPR30激活p-mTOR,抑制线粒体自噬。
此外,17 β-雌二醇对ATDC5细胞的作用可以被GPR30抑制剂、PI3K抑制剂或mTORi消除 (图2、3),表明17 β-雌二醇通过GPR30/PI3K/Akt途径抑制线粒体自噬。
为了确定雌二醇是否通过GPR30/JNK或GPR30/P38途径保护ATDC5软骨细胞,用添加或不添加JNK抑制剂 (10 μ mol/L) 、P38抑制剂 (10 μ mol/L)或G15 (15 μ mol/L) 或混合2种抑制剂的17 β-雌二醇(10-7mol/L) 处理无血清培养的ATDC5细胞24 h。结果表明,用17 β-雌二醇处理的ATDC5细胞中,P38和JNK没有磷酸化改变;用G15、P38抑制剂或JNK抑制剂处理细胞,也未观察到相反的结果 (图3) 。MTT结果显示,17 β-雌二醇处理的ATDC5软骨细胞的增殖和活力显著高于对照组 (P < 0.05),且ATDC5软骨细胞的增殖和活力可被G15和PI3K抑制剂减弱 (图4) 。提示17 β-雌二醇可通过GPR30/PI3K/Akt途径促进无血清培养的ATDC5软骨细胞的增殖和活力。
图4 17 β-雌二醇通过GPR30 PI3K/Akt通路调节ATDC5软骨细胞增殖与活力Fig.4 17 β-estradiol can protect ATDC5 chondrocytes via the GPR30/PI3K/Akt pathway
研究发现,用雌二醇处理的ATDC5细胞中含有较少的自噬体,经雌二醇处理的ATDC细胞中TOM20阳性颗粒与Lamp2[6]减少,表明线粒体自噬在ATDC5细胞中可被17 β-雌二醇抑制。然而,雌激素保护软骨细胞免受损害的分子机制目前尚未明确。本研究结果显示,用17 β-雌二醇处理的ATDC5细胞增殖和活力显著高于对照组,证实了17 β-雌二醇对软骨细胞的保护作用。
氧化应激可导致线粒体损伤,如果损伤超过线粒体内膜的膜电位,则功能失调的线粒体将通过自噬途径被去除,也称线粒体自噬。细胞虽可通过线粒体自噬途径去除氧化应激损伤的线粒体,保护细胞免于凋亡,但过量的线粒体自噬将导致大量重要细胞成分减少,从而导致细胞死亡[7]。已有研究表明,自噬可能是通过消除生长促进分子和细胞器,如蛋白质p62,降低细胞的生长速率。当p62耗竭或去除时,mTOR不能被激活,导致细胞生长受限[8]。针对过量的自噬,线粒体能够采用其他机制,如融合/裂变周期以及线粒体解折叠蛋白反应的胞内质控机制,来修复或去除受损的线粒体,以确保线粒体维持其正常功能[9]。细胞还可通过增加线粒体伴侣蛋白 (Hsp60,Hsp70) 和蛋白酶表达激活线粒体解折叠蛋白反应途径,以保护线粒体免于功能障碍。血清饥饿培养的HeLa细胞可诱导线粒体自噬,随着LC3-Ⅱ表达的增加可降低TOM20的表达[10]。本研究也发现,LC3-Ⅱ的表达水平下降,而Hsp60和TOM20的表达水平上升。因此,17 β-雌二醇可能通过抑制线粒体自噬来保护ATDC5软骨细胞,并有助于修复线粒体损伤。
本研究结果发现,17 β-雌二醇可通过GPR30和PI3K/Akt-mTOR信号通路抑制ATDC5细胞线粒体自噬,表明PI3K/Akt-mTOR信号通路可作为治疗OA的新途径。已有研究[11-12]表明,17 β-雌二醇可通过结合心肌细胞和癌细胞内的GPR30受体执行其生理功能。本研究发现,GPR30在ATDC5软骨细胞中也有表达,17 β-雌二醇 (0,10-9,10-8和10-7mol/L) 以剂量依赖性方式增加GPR30的表达水平,提示17 β-雌二醇可能通过作用于GPR30发挥其生理调节功能。Western blotting结果显示,17 β-雌二醇对ATDC5软骨细胞GPR30表达水平的诱导具有时间依赖性,此诱导作用可被GPR30拮抗剂阻断,导致LC3-Ⅱ高表达,TOM20和Hsp60低表达。提示17 β-雌二醇可能是通过GPR30抑制线粒体自噬。
本研究结果显示,用17 β-雌二醇培养ATDC5软骨细胞24 h后,细胞内Akt磷酸化水平增加,总Akt表达水平保持不变。据文献报道,mTOR受PI3K正调控,是自噬的负调控因子。与对照组相比,用17 β-雌二醇处理的ATDC5细胞中p-mTOR的表达水平显著升高。17 β-雌二醇对ATDC5细胞的作用可被GPR30抑制剂、PI3K抑制剂或mTORi消除,表明17 β-雌二醇通过GPR30/PI3K/Akt途径抑制线粒体自噬。已有研究[13]发现,17 β-雌二醇通过PI3K/Akt信号通路抑制肿瘤坏死因子-α诱导人髓核细胞凋亡。17 β-雌二醇还可以通过PI3K/Akt/caspase-3途径降低大鼠髓核细胞的凋亡发生率[3-5]。此外,PI3K/Akt信号转导与线粒体氧化应激负相关,而PI3K/Akt信号转导的激活能减少ROS的产生[14-15]。本研究中,为了验证17 β-雌二醇是否也可以通过JNK和P38调节线粒体自噬,用P38抑制剂和JNK抑制剂预处理细胞30 min,结果发现处理前后细胞内p-P38和P-JNK的水平无统计学差异。表明17 β-雌二醇不能通过JNK或P38信号传导途径调控线粒体自噬。