田 晓,李艳萍,张义勇,苏志华,胡靖宇
(1.江西农业大学 园林与艺术学院,江西 南昌 330045; 2.河北旅游职业学院 园林艺术系,河北 承德 067000; 3.承德石油高等专科学校 科技发展与校企合作处,河北 承德 067000)
软枣猕猴桃(Actinidiaarguta)属于猕猴桃科(Actinidiaceae)猕猴桃属(Actinidia)多年生落叶木质藤本植物。在我国东北及华北地区天然分布较广,其果实风味独特、营养丰富。维生素C含量高达4.50 mg/g,是中华猕猴桃的4倍,柑橘的5~10倍,苹果、梨的80~100倍,被誉为果中之王、维C之冠[1]。软枣猕猴桃果实中氨基酸和蛋白质含量也较高,是极为理想的绿色、保健食品。软枣猕猴桃实生繁殖周期较长,因此,软枣猕猴桃最常用的繁殖方式为扦插繁殖。近年来,国内外学者从不同角度对软枣猕猴桃的扦插繁育技术开展了大量研究,主要集中在扦插时间、扦插部位、基质和植物生长调节剂等方面[2-4],并且主要侧重对软枣猕猴桃生根方面的研究。本研究,以3年生桓优1号母树1年生嫩枝为试材,采用4种不同植物生长调节剂及其4种质量浓度处理插条,通过测定其生根率、成活率、生根数量、根长、抽梢率、新芽高度和小叶数量等指标,研究不同植物生长调节剂及其质量浓度对软枣猕猴桃扦插生根及抽梢的影响,为相关研究提供参考。
供试扦插材料源自辽宁省桓仁山区野生软枣猕猴桃繁育基地。采集树龄3 a以上、生长茂盛且无病虫害的桓优1号母株1年生枝条作为插条,插条直径0.5~0.8 cm。供试植物生长调节剂6-BA、3-IBA-K、NAA、ABT,购自郑州信联生化科技有限公司。
1.2.1 插床的准备与处理 插床设在河北旅游职业学院园林艺术系日光温室内,基质为河砂,混入熟土、腐殖土等,插床宽1.2 m、长8 m,插床厚度约为0.2 m,拱棚高度为0.5 m,材质为塑料薄膜,扦插前用75%乙醇、NaClO、HgCl2处理消毒。
1.2.2 试验设计 将 6-BA、3-IBA-K、NAA、ABT分别设100、500、1 000、1 500 mg/L 4种质量浓度,共16个处理(表1),以清水作为对照(CK),重复3次,每个重复设置50根插条。
表1 软枣猕猴桃扦插繁殖试验设计方案Tab.1 Experiment design for cuttings propagation ofActinidia arguta
1.2.3 统计指标和方法 将供试插条基部在已配好的16个药剂中浸泡12 h。扦插时采用直播法,株行距为 6 cm×10 cm,扦插深度是插条长的1/3左右,约3 cm,压实插条周围的基质,扦插后用水将插床浇透,使基质与插条充分接触,为避免光直射,拱棚顶部遮阴,前7 d白天每隔3 h喷1次清水,空气相对湿度90%,基质相对湿度75%,如遇下雨天,视叶片湿度情况酌情喷水。扦插后15 d开始喷洒多菌灵消毒,生根后叶面每5 d喷1次0.2%尿素和0.5%磷酸氢二钾营养液。扦插后60 d调查每个处理插条的生根数量,计算生根率;统计成活株数量(插条上新芽萌发即为扦插成活),计算成活率;统计抽梢数量(以顶端长出嫩叶为准),计算抽梢率;每处理抽取10株成活株统计新芽高度、小叶数量以及根长。生根率=生根数量/插条数量×100%;成活率=成活株数量/插条数量×100%;抽梢率=抽梢数量/插条数量×100%。
试验数据在Excel 2007软件中进行整理和分析,差异显著性分析采用SPSS 22.0统计软件。
2.1.1 生根率 如表2所示,软枣猕猴桃扦插生根率整体表现为ABT>3-IBA-K>NAA>6-BA>CK。处理14的生根率最高,达90.0%,处理13次之,生根率为88.7%,处理7的生根率排第三,为87.3%;处理3、4、17(CK)的生根率较低,分别是33.3%、32.0%、28.7%。处理13、14、15的生根率差异不显著(P>0.05),与处理16差异显著(P<0.05),说明高质量浓度的ABT对软枣猕猴桃扦插生根有明显的抑制作用。处理7、8的生根率差异不显著(P>0.05),极显著高于处理5、6、17(P<0.01),说明高质量浓度的3-IBA-K对软枣猕猴桃扦插生根有明显的促进作用,且生根率表现为1 000 mg/L>1 500 mg/L>500 mg/L>100 mg/L。
表2 不同植物生长调节剂及其质量浓度对软枣猕猴桃插条生根的影响Tab.2 Effects of different plant growth regulators and their mass concentrations on rooting of Actinidia arguta cuttings
注:同列不同大、小写字母表示在0.01、0.05水平差异显著,下同。
Note:Different capital,lowercase letters in the same column indicate significant differences at the 0.01,0.05 levels,the same below.
处理11、12的生根率差异不显著(P>0.05),与处理9、10、17差异极显著(P<0.01),说明不同质量浓度的NAA和3-IBA-K对软枣猕猴桃扦插生根影响的规律类似,NAA的生根率略低于3-IBA-K。采用6-BA的4个处理与生根率较高的处理14、13、7差异极显著,且处理3、4与处理17差异不显著,说明6-BA对软枣猕猴桃扦插生根作用不明显。
2.1.2 生根数量 如表2所示,各质量浓度的3-IBA-K、NAA、ABT以及低质量浓度6-BA(处理1、2)处理的插条生根数量比CK提高了0.48~2.30 倍,差异极显著(P<0.01),说明植物生长调节剂对软枣猕猴桃扦插生根数量有极显著促进效果。处理13、14的生根数量与处理16差异显著(P>0.05),说明低质量浓度的ABT对软枣猕猴桃生根数量有促进作用。4种质量浓度3-IBA-K、NAA的平均生根数量分别为6.75、7.95条,前者比后者少1.20条,但前者的平均生根率比后者高5.3个百分点。
2.1.3 根长 如表2所示,4种不同质量浓度的植物生长调节剂处理的插条根长为1.8~5.2 cm,其中处理13根长均值最大。处理1—6和处理17的根长差异不显著,说明6-BA和低质量浓度的3-IBA-K对软枣猕猴桃插条根长的影响不明显。
2.2.1 成活率和抽梢率 如表3所示,软枣猕猴桃扦插成活率整体表现为ABT>3-IBA-K>NAA>6-BA>CK,成活率与生根率趋势相同,试验成活株数占试验生根株数的98.39%,说明软枣猕猴桃扦插生根的插条绝大部分都能成活。处理8抽梢率最高,处理7次之,处理11排第三,处理12排第四,以上4种处理差异不显著,与其他13种处理差异极显著(P<0.01),说明高质量浓度的3-IBA-K和NAA对软枣猕猴桃抽梢具有促进作用。
2.2.2 新芽高度和小叶数量 如表3所示,新芽高度和小叶数量均表现为3-IBA-K处理最高,其中,处理7的新芽高度最高,为2.23 cm,处理8次之,处理8小叶数量最多,为3.18片,处理7次之,二者差异不显著,且与处理5和处理6差异极显著(P<0.01),经NAA处理的插条(处理9—12)也具有类似的规律,说明高质量浓度3-IBA-K和NAA对新芽高度和小叶数量具有促进作用。
表3 不同植物生长调节剂及其质量浓度对软枣猕猴桃插条成活的影响Tab.3 Effects of different plant growth regulators and their mass concentrations on the survival of Actinidia arguta cuttings
王颖等[4]研究认为,生根剂浓度和生根剂种类是对软枣猕猴桃扦插生根影响最大的因素。本研究采用不同质量浓度的4种植物生长调节剂处理软枣猕猴桃插条,其生根率、成活率、生根数量和根长均表现为ABT效果最佳,6-BA效果最差,生根率以3-IBA-K表现稍好于NAA,在生根数量和根长方面以NAA优于3-IBA-K。而在抽梢率、新芽高度和小叶数量方面表现为3-IBA-K效果最佳,6-BA效果最差,且经高质量浓度3-IBA-K和NAA处理的软枣猕猴桃抽梢率、新芽高度和小叶数量高于其他处理。
黄素梅[5]研究表明,ABT是一种广泛、普遍、高效的植物生根促进剂,能显著提高扦插苗成活率。本研究中以500 mg/L ABT处理的软枣猕猴桃插条生根率和成活率最高,100 mg/L ABT处理的软枣猕猴桃插条扦插生根数量和根长效果较好,但质量浓度过高(1 000、1 500 mg/L),扦插效果不理想,说明质量浓度过高的ABT对软枣猕猴桃插条生根有一定抑制作用。逄凯惠[6]研究表明,经250 mg/L IBA处理的猕猴桃硬枝插条综合效果最好,这可能与不同植物生长调节剂蘸根时间不同和软枣猕猴桃品种不同有关,本研究中软枣猕猴桃试材是产自辽宁省桓仁山区的桓优1号[7]。王颖等[4]研究表明,采用1 000.0 mg/L NAA+1 000.0 mg/L IBA混合处理后的长白山野生软枣猕猴桃生根效果最好。由此可见,不同品种软枣猕猴桃扦插繁殖的植物生长调节剂的种类选择、最适质量浓度、最佳配比以及蘸根时间需要区别对待,在参考前人研究的基础上验证筛选[8]。