核因子⁃κB信号通路与丙肝病毒感染相关性的研究进展

2019-02-26 01:04樊圆圆综述明审校
医学研究生学报 2019年3期
关键词:宿主活化调节

樊圆圆综述,岳 明审校

0 引 言

丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)感染所引起的丙型肝炎呈全球分布,估计有1.8亿人感染HCV,其中仅15%~45%可发生自发性病毒清除,其余感染者若未经治疗则可能进展为肝纤维化、肝硬化,甚至肝细胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)[1-2]。像其他的许多病毒一样,HCV利用自身有限的基因组进化出复杂的策略,侵入宿主细胞后劫持细胞并快速繁殖,同时调控宿主相关细胞信号通路和转录因子的产生。核因子-κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)在各种类型的细胞内广泛表达,在细胞应激时,与某些基因上启动子区特定的核苷酸序列结合而启动基因转录,作为调节因子发挥重要作用[3]。由于NF-κB通路,在宿主细胞增殖、存活、早期病毒应答及产生细胞因子、促进炎症反应等多方面具有重要作用,因而成为HCV的劫持目标[4]。在HCV感染时,病毒蛋白可参与NF-κB的调节,并影响下游基因的转录,从而影响HCV的清除与疾病转归;反之,NF-κB通路基因的遗传变异,也可影响相关蛋白的表达、调控,从而可能与宿主对HCV的易感性、转归有关。本文综述了NF-κB蛋白家族、NF-κB信号通路,及HCV感染中,病毒与宿主NF-κB信号通路相互作用及其对感染的影响。

1 NF-κB蛋白家族

NF-κB蛋白家族包括 5种蛋白,即 NF-κB1(p50)、NF-κB2(p52)、RelA(p65)、RelB、c-Rel。所有蛋白都有一个高度保守的Rel同源区使得它们可相互结合,并能与NF-κB抑制蛋白(inhibitors of NF-κB,IκB)或DNA结合。不同的是:RelA,RelB和c-Rel的C-末端含有转录激活结构域,而NF-κB1和NF-κB2的 C-末端为锚蛋白重复序列(ankyrin re⁃peat,ANK),因此RelA、RelB和c-Rel间形成的聚合体可激活目的基因转录,而NF-κB1和NF-κB2间形成的聚合体则抑制转录[5]。有研究显示,NF-κB1、RelA及c-Rel在固有免疫中起重要作用,而NF-κB2及RelB则参与外周淋巴组织及B细胞的增殖分化[6]。

在未受刺激的细胞内,NF-κB与强抑制剂IκB结合形成三聚体,进而隐藏其与DNA结合的位点而处于非活化状态。受到细胞内外信号刺激后,IκB激酶(inhibitors of NF-κB kinase,IKK)首先被激活,导致IκB磷酸化并在26S蛋白酶小体的作用下发生裂解,进而释放被“囚禁”的NF-κB[5]。

IκB蛋白家族包括经典的IκB蛋白(IκBα、IκBβ和 IkBε)和核IκBs(IκBζ,Bcl-3及 IκBNS)。在IκB蛋白家族中IκBα,IκBβ为最常见的形式,均含有ANK与和C端脯-谷-丝-苏序列,并分别与Rel蛋白结合或参与降解[7]。IKK则是NF-κB信号通路中的激酶,主要包括IKKα、IKKβ 及 IKKγ/NF-κB关键调节因子[8]。

2 NF-κB信号通路

细胞内外信号可通过激活IKK→降解IκB→释放NF-κB等一系列联级反应活化NF-κB,使其进入核内与目的基因结合启动转录。但因初始信号的不同,后续联级反应也存在差异,主要可分为两类信号通路。

2.1 经典信号通路细胞受到各种刺激均可激活经典信号通路,从而调节免疫应答。最初,众多促炎细胞因子,如白细胞介素-1(interleukin-1,IL-1)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor,TNF-α)、病原体相关分子模式与肿瘤坏死因子受体或Toll样受体/IL-1受体超家族等结合[6]。这种配体-受体结合可激活IKKβ,磷酸化的IKKβ使IκBα的第32及36位丝氨酸磷酸化(p-Ser32,36),并被26S蛋白酶小体水解从而释放 p50:RelA二聚体[9]。这种依赖IKKβ的经典信号通路在先天性免疫中发挥重要作用。研究表明,RelA及IKKβ的缺失均会显著增加小鼠的发生感染的可能性,且小鼠胚胎的死亡率增高[10]。

2.2 非经典信号通路非经典通路是IKKα依赖性的,无需IKKβ参与。最初B细胞活化因子、CD40和淋巴毒素β受体激活IKKα,随后活化的IKKα在蛋白酶的协同下使p100发生磷酸化,继而泛素化降解为p52,p52与RelB结合形成p52:RelB二聚体进而进入核内启动目的基因转录[11]。非经典通路参与适应性免疫应答及淋巴组织的生长,IKKα缺陷小鼠胚胎虽然骨骼发育不受影响,但肢体生长严重受损[12]。

3 HCV对NF-κB信号通路的调控

HCV为黄病毒科单股正链RNA病毒,其基因组具有高度变异性。目前根据Simmonds系统法可将HCV分为1-7型[13]。HCV基因组可编码10种蛋白,包括4种结构蛋白(core、E1、E2及 p7)及6种非结构蛋白(NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A 及NS5B)[14]。不同的蛋白在HCV感染过程中发挥各自的作用,其中的核心蛋白(core),NS5A及NS3A可调节NF-κB的活化,从而对疾病进程产生影响。

3.1 HCV core对NF-κB信号通路的调控HCV core是一种多功能蛋白,可参与HCV核衣壳的组成,也可调控宿主细胞内的多种分子的表达从而影响疾病转归。有研究发现,在Hela及Huh7细胞中,core可通过延长p50或p65在核内的滞留时间,从而活化NF-κB并增强其与DNA的结合活性[15];core可诱导IκB的降解,促进p56的磷酸化进而活化NF-κB[16]。还有研究发现,core可通过活化NF-κB抑制细胞凋亡及改善肝细胞自噬[17]。另一项研究证实,外源性core的存在通过活化NF-κB上调转化生长因子-β的表达,从而促进肝细胞的增殖[18]。

有趣的是,core对NF-κB的调节具有细胞和基因型特异性。在Hela细胞及HepG2细胞中,core可活化NF-κB;而在HEK239细胞中,过表达的core并不影响NF-κB的活化。更值得注意的是,在巨噬细胞系RAW 264.7细胞中,core可则抑制NF-κB的活化[19]。此外,HCV 1b型的core可促进 NF-κB的活化,而HCV la型及2a型的core却抑制NF-κB的活化[20]。这些特异性可能是由于不同微环境下NF-κB通路各种蛋白的表达存在差异。

3.2 HCV非结构蛋白对NF-κB信号通路的调控有研究认为,NS5A是重要的转录调节剂,可参与某些宿主基因的转录。Girard等[21]应用寡核苷酸微阵列技术检测稳定表达HCV 1b NS5A的Huh7细胞中基因表达水平发现有43个基因表达,且其中有39个基因的启动子含有一个或多个NF-κB DNA结合位点,随后荧光素酶报告分析也证实了NF-κB的活化,提示NS5A可能通过调节NF-κB进而调控转录并影响HCV感染进程。进一步研究显示,NS5A可逆转蛋白酶体抑制剂MG132对NF-κB活化的抑制,并促进IκBα的磷酸化,即NS5A通过活化NF-κB来抑制MG132介导的细胞凋亡[22],从而促进肝纤维化及HCC的发生。

研究证实,慢性丙肝患者血清及肝内炎症因子水平明显升高,包括 TNF-α[23]。TNF-α 可诱导 NF-κB的活化,而NS3对TNFα-NF-κB通路的调节却存在争议。在表达NS3的HepG2及Huh7细胞中,Has⁃san等[24]发现NS3并不影响IKKα的表达,而是增强其活性并促进IκBα的蛋白水解,从而活化NF-κB。而在另一项研究中,Chen等[25]在感染HCV的Huh-7.5.1细胞中发现NF-κB的核转位明显减少,同时表达NS3细胞中NF-κB的活化显著减少。NS3对TNFα-NF-κB通路的调节不同,可能是由于细胞模型不同,NS3与NF-κB通路中的不同组分间发生的作用不同,从而对其活化的调节产生不同的影响。

4 NF-κB信号通路对HCV感染的影响

近年来研究发现,肝内的活化巨噬细胞可分泌TNF-α、TNF-α可活化NF-κB,进而激活肌球蛋白轻链激酶从而破坏肝细胞膜的紧密连接,促进HCV进入肝细胞内,为HCV的复制及感染创造条件[26]。同时另一研究也发现,IKKα的表达被抑制剂阻断后,可抑制HCV感染及脂质的合成[27]。这些研究表明,NF-κB可调节病毒的脂质合成及进入细胞的过程,从而影响肝细胞的脂肪变性及感染进程。

不同基因型的HCV对NF-κB的调节存在差异,反之,宿主NF-κB通路的变异,可影响蛋白表达、转录调控等,也必然影响HCV感染进程及疾病转归。本课题组最近研究了NF-κB的单核苷酸多态性与HCV感染易感性及自发清除的相关性。结果表明:携带RelA基因rs11820062 A等位基因者,HCV感染的易感性显著增高(显性模型及相加模型中均有PBonferroni<0.003)。分层分析结果表明,在年龄<50岁、女性及有偿献血人群中,携带rs11820062 A等位基因与HCV易感性增高显著相关。该研究首次提示,在中国汉族高风险人群中,NF-κB通路基因中的Re⁃lA基因rs11820062 A等位基因与HCV易感性增高显著相关[28]。2014年,有研究表明NF-κBIε(NF-κB inhibitor ε)rs2233437-A 与宿主HCV自限清除有统计学相关性[29]。还有研究发现,NF-κB1基因启动子区的rs28362491(ATTG插入/ATTG缺失)中的ATTG缺失型等位基因可与中国人群的肝癌风险升高有关[30];摩洛哥巴斯德研究所发现,该缺失基因型还与慢性丙肝发展为慢性肝病的进展有关,且Ins等位基因与病毒载量显著相关,进一步研究显示,这可能是由于Ins等位基因可增加p50的产生并增强其与DNA结合的能力[31]。此外,体外实验表明,rs28362491的ATTG缺失型等位基因可导致核蛋白结合减弱,即启动子活性降低[32]。

5 展 望

HCV感染中,病毒蛋白可与宿主细胞NF-κB通路发生复杂的相互作用。这种相互作用在特定条件下可能存在差异:如在不同细胞系、不同HCV基因型、不同宿主的NF-κB通路基因型时有所不同,从而对通路激活、细胞增殖或凋亡、细胞因子的产生及疾病进展产生影响。近年来,在全球多项大型临床试验中,新的直接抗病毒药物(direct-acting an⁃tiviral agents,DAAs)将丙型肝炎的治愈率显著提高到95%以上,已成为传统的聚乙二醇干扰素+利巴韦林治疗方案的更优选择[33]。然而,随着DAAs药物的应用,仍有新问题有待解决:HBV/HCV合并感染者使用DAA药物可致HBV再激活[34];有文献报道,在部分获得持续性病毒应答的肝硬化患者中,DAAs的应用并不能降低HCC的发生率[35];DAAs治疗还可导致耐药的发生,目前已确认的耐药相关突变(resistance associated variants,RAVs)位点包括NS3/4A靶点相关、NS5A靶点相关和NS5B靶点相关的几十个RAVs[36]。其中,对于抗病毒治疗中NF-κB通路各蛋白的变化及其对于疗效是否有影响,及NF-κB及其他关键信号通路等的基因多态性与HCV感染进程及治疗可能有一定相关性,有待进一步研究,望能对HCV高易感人群的筛查及防治提供新的策略。

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