陈莉 林国享 陈凯华 孙永楚 万芳竹 朱小东,
鼻咽癌是我国高发的恶性肿瘤之一,放疗是主要的治疗手段[1-2]。而抗辐射是患者复发、转移及治疗失败的主要原因[3]。因此,探讨抗辐射鼻咽癌细胞迁移和侵袭机制有重要意义。血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是常见的促血管内皮细胞生长因子,可诱导血管形成,增加血管通透性,影响肿瘤微环境中免疫细胞的功能[4]。VEGF还能促进癌细胞DNA过度复制,诱导放射抗性基因合成,从而产生放射抵抗[5]。研究发现VEGF在多种恶性肿瘤组织,包括鼻咽癌组织中呈高表达,可能参与肿瘤远处转移,且与不良预后有关[6-10]。本研究通过构建VEGF沉默表达的鼻咽癌放射抗拒细胞株,探讨VEGF对细胞侵袭和迁移能力的影响,以期寻找鼻咽癌放射抗拒靶点,为阐明鼻咽癌转移机制奠定基础。
人鼻咽癌放射抗拒细胞株CNE-2R由广西医科大学附属肿瘤医院实验研究部构建并保存。GV248慢病毒质粒骨架(hU6-MCS-Ubiquitin-EGFP-IRES-puromycin)、293T 细胞、大肠杆菌菌株 DH5α、慢病毒包装辅助质粒pHelper 1.0载体、pHelper 2.0载体和嘌呤霉素均购自上海吉凯基因技术有限公司;GAPDH引物购自上海生工生物工程技术有限公司;VEGF引物由日本Takara公司设计并合成;鼠抗人VEGF-A抗体购自美国NOVUS公司;兔抗人GAPDH抗体购自美国CST公司;山羊抗兔二抗、抗鼠二抗购自上海碧云天技术有限公司。Lipofectamine 2000购自美国Invitrogen公司,凝胶成像分析仪购自美国Bio-Rad公司,荧光定量PCR仪购自德国Analytik Jena公司。
在GenBank中搜索人VEGF核苷酸序列(编号:NM_001171626),设计3个干扰VEGF的靶点序列(LV1、LV2和LV3)和1条无关序列(NC)。根据各靶序列分别设计并合成shRNA的单链DNA Oligo(内含AgeⅠ和EcoRⅠ酶切位点),构建重组慢病毒表达质粒GV248-LV1、GV248-LV2、GV248-LV3 和 GV248-NC,进行双酶切鉴定和测序验证。293T细胞置于37℃、5%CO2条件下培养24 h,融合度达70%~80%时将上述4种重组慢病毒表达质粒、pHelper 1.0载体质粒、pHelper 2.0载体质粒与Lipofectamine 2000转染试剂混合培养48 h,离心后获得重组慢病毒原液VEGF-LV1、VEGF-LV2、VEGF-LV3 和 VEGF-NC,分装并于-80℃下保存。
293T细胞接种于96孔板(4×103/孔)培养24 h后,分别将 10 μL、1 μL 和 0.1 μL的慢病毒原液 VEGF-LV1、VEGF-LV2、VEGF-LV3和VEGF-NC与完全培养基混合成100 μL转染液。选取所需的293T细胞孔,加入病毒转染液培养4 d,用倒置荧光显微镜观察荧光表达情况,计算重组慢病毒滴度,以及当MOI=20时所需的转染病毒体积,进行下一步慢病毒转染。重组慢病毒滴度=荧光细胞数/病毒原液量。MOI=病毒滴度×病毒体积/细胞数目。
CNE-2R细胞接种于含10%胎牛血清+100 U/mL青霉素+100 U/mL链霉素的RPMI-1640完全培养基,用胰酶消化并传代培养。取对数生长期的CNE-2R细胞接种于24孔板(2.5×104/孔);培养 24 h后,分别转染 1.250 μL VEGF-LV1、1.111 μL VEGF-LV2、1.429 μL VEGF-LV3和1.111 μL VEGF-NC;用嘌呤霉素筛选转染后细胞,获得稳定传代的转染细胞系,分别记为CNE-LV1组、CNE-LV2组、CNE-LV3组和CNE-NC组,同时设CNE-2R细胞为空白对照组。在倒置荧光显微镜(×200)下观察各组细胞荧光表达情况并计算转染效率。转染效率=(荧光细胞数/总细胞数)×100%。
收集以上各组细胞,按照Trizol试剂说明书提取细胞总RNA,采用Primer ScriptTMRT试剂盒将RNA逆转录成cDNA。以GAPDH为内参,进行实时荧光定量PCR检测。引物序列:VEGF-F为5'-TCACAGGTACAGGGATGAGGACAC-3',VEGF-R 为 5'-CAAAGCACAGCAATGTCCTGAAG-3';GAPDH-F 为 5'-CAGGAGGCATTGCTGATGAT-3',GAPDH-R 为 5'-GAAGGCTGGGGCTCATTT-3'。PCR 反应条件:预变性95 ℃ 30 s,1个循环;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40 个循环。采用 2-△△Ct法计算VEGF mRNA的相对表达量。实验重复3次。
采用RIPA蛋白裂解液提取各组细胞总蛋白,根据BCA法进行蛋白定量检测,取各组蛋白质20 μg,加入适量上样缓冲液,混匀,凝胶电泳,湿转法转至PVDF膜,5%脱脂牛奶室温封闭1 h。加入稀释的一抗[VEGF(1∶1 000)和 GAPDH(1∶1 000)],4 ℃下摇床孵育过夜,洗膜后加入稀释的二抗(1∶1 000),室温孵育1 h后洗膜。采用ECL化学发光法曝光,凝胶成像系统拍照分析并检测各条带灰度值。实验重复3次。
收集处于对数生长期的各组细胞,经胰酶消化重悬后,按4×105/孔接种于6孔板中。待细胞融合度约为80%时,用200μL移液器枪头在孔板上作划痕标记,用完全培养基连续培养48 h。显微镜观察0 h、48 h细胞划痕愈合情况。实验重复3次。
用不含血清的培养基将各组细胞重悬成3×105/mL的细胞悬液,并分别接种于含Matrigel基质胶和不含Matrigel基质胶的24孔板Transwell小室上室中,200μL/孔。下室中加入600μL完全培养基,并于37℃、5%CO2条件下培养48 h。用棉签擦去上室中的细胞,PBS清洗,4%多聚甲醛固定40 min,姬姆萨染液染色45 min,再用 PBS清洗,晾干,在倒置显微镜(×200)下观察并拍照,计数5个视野的细胞数。实验重复3次。
采用SPSS 17.0软件进行数据分析。计量数据以均数±标准差(±s)表示,两组间比较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析,若组间差异有统计学意义,进一步的两两比较采用LSD-t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
重组慢病毒表达质粒双酶切鉴定结果显示,环状质粒被切断后呈线性条带改变,说明双酶切位点正确,见图1。经测序进一步鉴定,GV248-LV1组、GV248-LV2组和GV248-LV3组相应的干扰shRNA序列成功连接到载体中,表明重组质粒构建成功,见图2。
图1 GV248-VEGF质粒的酶切电泳图Fig.1 Enzymatic digestion electrophoresis of GV248-VEGF plasmid
图2 GV248-VEGF插入序列的测序峰Fig.2 Sequencing peak of insertion sequence of GV248-VEGF
倒置荧光显微镜观察结果显示,转染慢病毒的4组细胞荧光强度随着病毒原液体积的增加而增强,见图3。当病毒原液量为 0.1 μL时,VEGF-LV1组、VEGF-LV2组、VEGF-LV3组和VEGF-NC组的荧光细胞数分别为 8×104个、9×104个、7×104个和 9×104个;慢病毒的滴度分别为 8×108TU/mL、9×108TU/mL、7×108TU/mL、9×108TU/mL;当 MOI=20 时,慢病毒转染实验所需病毒原液体积分别为1.250 μL、1.111 μL、1.429 μL、1.111 μL。
图3 不同体积重组慢病毒对293T细胞的转染效果(×200)Fig.3 Transfection effect of different volumes of recombinant lentivirus on 293T cells(×200)
倒置荧光显微镜观察结果显示,4种慢病毒分别转染CNE-2R细胞后均带有绿色荧光,转染效率>90%(图4),说明转染成功。RT-qPCR检测(图 5A)和 Western blot检测(图5B)结果显示,空白对照组、CNE-NC组、CNE-LV1组、CNE-LV2组和CNE-LV3组的VEGF mRNA和蛋白表达量差异均有统计学意义(F=4.129,P<0.001;F=571.194,P=0.031),其中 CNE-LV3组VEGF的mRNA和蛋白表达量均低于其余4组(P<0.05)。以上结果表明,CNE-LV3组细胞沉默VEGF效果最佳,以其进行后续实验。
划痕实验结果显示,空白对照组、CNE-NC组、CNE-LV3组的细胞迁移率分别为(50.17±1.76)%、(50.63±1.52)%、(37.97±1.56)%,组间差异有统计学意义(F=59.292,P<0.001);与空白对照组和 CNE-NC组相比,CNE-LV3组细胞迁移率均下降(t=8.989,P=0.001;t=10.070,P=0.001),但空白对照组与 CNE-NC组差异无统计学意义(t=0.348,P=0.746),见图 6A。
Transwell小室迁移实验结果显示,空白对照组、CNE-NC组、CNE-LV3组的穿膜细胞数分别为(95.3±3.8)个、(94.3±4.0)个、(41.3±1.5)个,组间比较差异有统计学意义(F=261.347,P<0.001);与空白对照组和CNE-NC组相比,CNE-LV3组穿膜细胞数明显减少(t=22.910,P<0.001;t=21.305,P<0.001);而空白对照组与CNE-NC组比较,差异无统计学意义(t=0.419,P=0.697),见图 6B。
图4 重组慢病毒转染CNE-2R细胞的效果(×200)Fig.4 Transfection effect of recombinant lentivirus on CNE-2R cells(×200)
图5 转染后CNE-2R细胞VEGF mRNA及蛋白的表达情况Fig.5 Expression of VEGF mRNA and protein in CNE-2R cells after transfection
图6 沉默VEGF对CNE-2R细胞迁移能力的影响Fig.6 Effect of silencing the expression of VEGF on the migration ability of CNE-2R cells
Transwell小室侵袭实验结果显示,空白对照组、CNE-NC组、CNE-LV3组的细胞穿膜数分别为(105.3±1.5)个、(93.3±2.5)个、(46.3±2.1)个,组间差异有统计学意义(F=774.886,P<0.001)。CNE-LV3组细胞穿膜数分别与空白对照组和CNE-NC组比较,差异有统计学意义(t=38.711,P<0.001;t=30.237,P<0.001);而空白对照组与CNE-NC组比较,差异无统计学意义(t=1.877,P=0.134)。见图 7。
图7 沉默VEGF对CNE-2R细胞侵袭能力的影响(×200)Fig.7 Effect of silencing the expression of VEGF on the invasion ability of CNE-2R cells(×200)
正常的血管形成受血管生成因子和抗血管生成因子共同调控,当促血管生成因子过度活跃时,可导致血管持续性生长,使肿瘤血管异常形成[11]。VEGF广泛存在于人体各器官,其表达受多种因素调控。在肿瘤发生发展中,肿瘤细胞能分泌较高水平的VEGF,从而引发肿瘤血管内皮细胞有丝分裂,促进血管形成;同时VEGF还可促进单核细胞、成纤维细胞浸润,从而形成肿瘤基质并促进肿瘤细胞进入新生血管内,进而增强肿瘤细胞转移能力[12]。研究发现,VEGF对鼻咽癌预后产生不良影响[13-15]。
本课题组前期研究证实构建的鼻咽癌放射抗拒细胞株CNE-2R较CNE-2细胞具有更高的侵袭迁移能力[16]。RNA干扰技术可特异性沉默特定基因的表达,且具有级联放大效应和可遗传性,目前已广泛应用于探索基因功能、恶性肿瘤治疗等。沉默基因表达的RNA干扰载体包括慢病毒、腺病毒、质粒和siRNA化学合成等,其中慢病毒载体可转染多种类型细胞,具有转染效率高、可插入的基因片段多、表达稳定等优点[17]。本研究制备3种靶向干扰VEGF基因的慢病毒载体,转染人鼻咽癌放射抗拒细胞株CNE-2R。鉴于本课题组前期实验发现MOI=20时慢病毒转染效果最佳[18],因此选取MOI=20时转染所需的病毒体积转染CNE-2R细胞,结果均成功构建了沉默VEGF的CNE-2R细胞,其中CNE-LV3组VEGF沉默效果最佳,用于后续实验。VEGF沉默CNE-LV3细胞的成功构建,为进一步探讨VEGF对鼻咽癌转移的影响奠定了实验基础。
HE等[19]研究发现,沉默NETO2可降低鼻咽癌CNE-1、HONE-1细胞的侵袭和迁移能力。也有研究表明上调VEGF表达可促进胰腺癌细胞、卵巢癌细胞和肝癌细胞的侵袭和迁移能力[20-22],而抑制VEGF表达则可减弱黑色素瘤细胞、乳腺癌细胞、肝癌细胞的转移能力[23-25]。本研究划痕实验和Transwell小室实验结果显示,CNE-LV3组细胞较空白对照组和CNE-NC组细胞覆盖划痕区域的速度慢,细胞迁移率显著降低;细胞迁移和侵袭的穿膜细胞数亦明显减少,表明沉默VEGF能抑制鼻咽癌CNE-2R细胞的迁移和侵袭能力。VEGF可能是抑制放射抗拒性鼻咽癌转移的有效靶点。但目前VEGF导致鼻咽癌转移的具体作用机制尚未明确,后期将在分子和动物水平进一步探索VEGF对鼻咽癌侵袭迁移能力的影响。
本研究成功构建了沉默VEGF表达的鼻咽癌放射抗拒CNE-2R细胞株,且沉默VEGF能有效抑制细胞迁移和侵袭能力,VEGF可能是抑制放射抗拒性鼻咽癌转移的有效靶点,以VEGF为靶点的治疗方法有望为鼻咽癌治疗提供新的思路。