结核分枝杆菌感染人群的免疫干预进展

2019-01-05 17:20苏城卢锦标
中国医药生物技术 2019年5期
关键词:免疫治疗母牛结核

苏城,卢锦标

结核分枝杆菌感染人群的免疫干预进展

苏城,卢锦标

102629 北京,中国食品药品检定研究院结核病疫苗室

自结核病的病原体——结核分枝杆菌(,Mtb)被 Robert Koch 发现以来,结核病患者的免疫治疗研究就此拉开了帷幕[1]。Koch 当仁不让地成为开展结核病免疫治疗的第一人。他发现,豚鼠初次皮内攻击 Mtb 4 ~ 6 周后,再次皮内注射 Mtb 活菌或结核菌素(旧结核菌素,OT),会使豚鼠的病理性反应有所减轻,表现为注射部位的病灶很快坏死并脱落,而留下的溃疡通常较易愈合[2]。动物实验上的这种好转迹象给了 Koch 启发。然而,当他用结核菌素对结核患者进行免疫治疗时,却产生了意想不到的后果,部分结核病患者的病变加重,出现发烧和休克等症状,甚至注射后几小时内死亡[3]。这种现象(即 Koch 现象)的原因在于,已感染 Mtb 个体再次接触大量结核抗原后,浅表处病灶组织的坏死并不能起到保护作用,反而导致深层病灶大量结核活菌的暴露,使得 T 细胞介导的特异性细胞因子大量表达释放,引起组织损伤,甚至器官衰竭[3]。

随着第一代抗结核药物链霉素和异烟肼的出现,第一代免疫治疗方式由于高风险而很快被抛弃。抗生素优异的治疗效果挽救了无数结核患者的性命,然而,其治疗弊端也如影随行,长期的肝肾毒性导致患者不耐受,依从性低,既降低了疗效,又增加了耐药结核的风险。时至今日,抗结核药物已开发多达三十余种,这种弊端仍无法避免,且由于新化学药物开发的周期越来越长,“新药-耐药-新药”的研究模式也难以为继,并导致了各种耐药结核的出现。因此,在化学药物治疗方式作为当前结核病主要控制手段的同时,免疫治疗又重新进入研究者的视野,期待能成为结核病患者治疗的新方法。同时,由于结核潜伏感染(LTBI)人群约占总人口的 1/4[4],这部分人群的免疫预防也成为结核病防控的关键。本文针对 Mtb 感染人群(结核病患者和 LTBI)的免疫干预措施进行综述,为国内结核病疫苗研究者提供借鉴。

1 结核病患者的免疫治疗

结核病患者的免疫干预措施一般是在化疗的基础上,增加免疫治疗,以提高结核病的治愈率。抗生素对生长期结核菌的杀灭作用立竿见影。常规的化疗可迅速杀死大量结核菌,但极少部分结核菌转入休眠期后,由于代谢不活跃,化疗效果大打折扣,这也是目前临床上化疗常需要长达半年以上的原因所在。而通过疫苗免疫,激发机体的免疫功能,有望提高机体清除结核菌的能力。目前,先化疗后免疫模式在分枝杆菌菌体灭活疫苗上研究得较为深入,此类疫苗有母牛分枝杆菌疫苗、RUTI、MIP 等。

1.1 母牛分枝杆菌疫苗

最早冠以“母牛分枝杆菌”疫苗研究的是英国伦敦大学学院 John Stanford 教授[5]。20 世纪 90 年代,他主导研发的“母牛分枝杆菌”灭活疫苗在世界范围内多个国家开展了一系列小到中规模的随机、安慰剂对照、部分盲法的临床试验,研究对象包括初治、复治以及耐多药结核病患者,以评价疫苗的免疫治疗效果[5]。这些研究从最初单剂量的不甚理想,到后期转变为多剂量后显示出良好的辅助治疗效果。因此,WHO 在 20 世纪 90 年代初的结核病研究与发展战略规划中,以母牛分枝杆菌()为例,提出了化疗和免疫治疗相结合的思路[6]。需指出,随着分子生物分型工具的发展,John Stanford 教授发现的“母牛分枝杆菌”(NCTC 11659)被证实为另一种分枝杆菌,之前的分析认为和奥布分枝杆菌()同源性更高[7],现新的鉴定结果表明,该菌株应归于一类新的分枝杆菌,并被命名为.[8]。

受 WHO 政策影响,国内 20 世纪 90 年代初开始了母牛分枝杆菌疫苗的研究[9]。1996 – 1998 年,母牛分枝杆菌疫苗先后完成了初、复治和难治菌阳活动性肺结核共 568 例的临床疗效对照观察[10]。从公布的初治肺结核疗效报告看,该临床研究中,共纳入 342 例初治菌阳肺结核患者,随机分为疫苗组和对照组(各 171 例)。疫苗组采用抗结核药物(2HRZE/2HR)联合疫苗治疗 6 个月;对照组仅采用抗结核药物治疗(2HRZE/4HR)。结果显示,母牛分枝杆菌疫苗不良反应少且较轻微,免疫治疗后可加快结核菌阴转、病灶吸收及空洞缩小关闭速度;1 年后随访,疫苗组的细菌学复发率(3.0%)显著低于对照组(5.6%),复发率低。2001 年,国内自主研发的注射用母牛分枝杆菌疫苗(商品名:微卡)获得生产文号,由安徽智飞龙科马生物制药有限公司生产,正式应用于临床结核病化疗的辅助治疗。目前的 Meta 分析表明,微卡联合抗生素治疗安全性好,有利于初治、复治和耐药结核病患者的痰菌转阴,增强化疗效果,提高临床治愈率,但其远期疗效有待进一步研究[11-12]。

1.2 RUTI

RUTI 疫苗是 Mtb H37Rv 在低氧分压、低 pH 以及低营养条件下培养,收获后经破碎和 Triton X-114脱毒,包埋于脂质体中制备而成[13]。在生长压力条件下,Mtb 表达更多的潜伏性抗原,因此 RUTI 疫苗可诱导针对生长期和非生长期 Mtb 多种抗原的特异性免疫应答。在不同动物模型上,RUTI 疫苗诱导的细胞应答呈现出 Th1/Th2/Th3 混合型,同时也可激发多达 13 种结核抗原的 IgG1、IgG2a 和 IgG3 抗体表达,与抗生素化疗联合使用,展现出良好的免疫效果[13]。RUTI 疫苗的临床试验研究主要包括化疗后的辅助治疗。已完成的临床研究显示高剂量 RUTI 的不良反应偏高,且多针次免疫并不能促进疫苗的免疫应答效果[14-15]。目前 RUTI 疫苗正在开展用于 MDR-TB 辅助治疗的临床 IIa 试验(NCT02711735),耐多药结核病患者采用标准化疗方案治疗 12 周或 16 周后,免疫 1 针次 RUTI 疫苗,评价其安全性和免疫原性,并以痰菌载量为指标评价疫苗的免疫效果。该研究预计 2020 年完成。

1.3 MIP

MIP 疫苗为非结核分枝杆菌的灭活产物,早期在印度用于麻风病患者的辅助治疗[16]。2000 年初,一项非随机的临床试验提示 MIP 疫苗联合化疗可提高结核病患者的治愈率[17]。之后印度完成了 MIP 疫苗免疫治疗结核性心包炎的临床 III 期试验,结果显示 MIP 疫苗没有明显疗效[18]。另一项 MIP 疫苗用于复治结核病免疫治疗的随机、双盲、安慰剂对照的多中心临床 III 期试验中,受试者在化疗强化期开始注射 MIP 疫苗,共 6 针次[19]。结果显示,与单纯化疗(安慰剂组)比较,MIP 疫苗没有不良反应,且 MIP 疫苗组的痰培养阴转率均显著高于安慰剂组,表明 MIP 疫苗可能有清除结核杆菌的作用。

2 结核潜伏感染人群的免疫预防

按新的数学建模结果估计[4],全球约 1/4 人口,即17 亿,为 LTBI。一般情况下,绝大多数 LTBI 可终身保持健康,但其中 5% ~ 10% 作为易感人群,最终会发展成活动性结核病,成为新的感染源。另外,对于如 HIV 感染,接受免疫抑制剂治疗等因素造成的免疫功能低下者,LTBI 转变成活动性 TB 的概率也会大幅度提高。中国作为目前全球结核病负担第二高的国家[20],对 LTBI 人群提前干预,降低其发病率是控制中国结核病的关键。相对抗生素治疗,疫苗的免疫预防是最具成本效益的卫生干预措施,也是应对耐药结核病传播的最佳手段。现唯一可用的结核疫苗是卡介苗(BCG),预防儿童脑膜炎和播散性结核病的效果显著,但对成人保护效果不充分,也对 LTBI 无效[21]。因此,针对 LTBI 的预防用疫苗一直是国内外结核新疫苗研究的热点。目前已有多个结核新疫苗在临床试验中用于 LTBI 人群的安全性和免疫原性评价。

2.1 重组 AEC/BC02 疫苗

重组结核疫苗 AEC/BC02 由重组 Mtb 蛋白 Ag85b、ESAT6-CFP10 与复合佐剂系统 BC02 构成,是目前国内首个进入临床研究的结核新疫苗。在临床前的动物保护力研究中,通过建立豚鼠潜伏感染模型,评价疫苗的免疫干预效果。多次评价结果显示,与未采用免疫干预的对照组比较,AEC/BC02 疫苗免疫可有效减轻 Mtb 感染豚鼠的肝脾肺脏器病变程度,并降低脾肺脏的活菌载量[22-24]。2018 年4 月,AEC/BC02 疫苗正式开启潜伏感染人群免疫预防的临床 I 期试验(NCT03026972),拟招募 135 例受试者,包括具有 PPD、IGRA 和 EC 不同免疫标识的四类人群,以评价该疫苗的安全性和免疫原性。该研究预计 2019 年完成。

2.2 母牛分枝杆菌疫苗

母牛分枝杆菌疫苗(微卡)除了作为结核病患者的免疫治疗,也用于 LTBI 的免疫预防。2012 年 12月,经国家食品药品监督管理总局批准,微卡作为预防用生物制品获得临床批件,并于 2013 年 10 月正式开展 III 期临床试验(NCT01979900)。该研究为严格意义的双盲、随机、安慰剂对照试验,共纳入 15 ~ 65 岁 LTBI 受试者 10000 名,用于评估微卡免疫预防的有效性和安全性[20]。目前全部研究已于 2018 年完成,但尚未发布详细的临床结果。

2.3 重组 M72/AS01 疫苗

葛兰素史克(GSK)公司筛选出两种免疫原性强的结核抗原 Mtb39 和 Mtb32[25],重组表达出融合蛋白 M72(Mtb32C-Mtb39-Mtb32N),与 AS01 佐剂系统构成 M72/AS01 结核疫苗。AS01 佐剂是由单磷酰脂 A(MPLA)和皂素 QS-21 构成的脂质体,能形成抗原库,使抗原缓慢释放,并对 Th1 细胞的刺激作用明显强于 Th2 细胞,其中,MPLA 通过 TLR4 激活 Th1 和 Th17 T 细胞,QS-21 则有助于激活 CD8+CTL 细胞,两者联合使用可发挥协同效应,使抗原刺激的特异性免疫反应达到最大效力[26]。临床前研究中,M72/AS01 疫苗在不同动物模型上均表现出良好的保护效果,可降低肺和脾的细菌载量,延缓或防止体重下降和死亡,以及缓解肺部损伤[27-28]。

迄今,GSK 公司已在多个国家完成了 M72/AS01 疫苗的一系列临床试验,显示出 M72/AS01 疫苗在不同目标人群良好的安全性和免疫原性[29-32]。最近发布的 M72/AS01E疫苗在肯尼亚、南非和赞比亚进行的随机、双盲、安慰剂对照的临床 IIb 试验结果令人关注[32]。该研究旨在评价疫苗对 LTBI 成人的安全性和免疫预防效果,入组 3573 例 18 ~ 50 岁 HIV 阴性的 LTBI 成人,其中 1786 例接种 M72/AS01E疫苗,1787 例接种安慰剂,共肌内 2 剂,间隔 1 个月。2.5 年随访时间内,疫苗组 1623 例纳入观察,发病 10 例,安慰剂组 1660 例纳入观察,发病 22 例。最终获得的疫苗保护率为 54%(95%CI,2.9% ~ 78.2%),且无明显的安全问题。该结果是目前结核新疫苗研究多年来的一个重大突破,首次证实免疫干预可降低 Mtb 感染人群发展成活动性结核的风险。同时,考虑 75% 受试者有 BCG 接种史,意即在 BCG 接种后,通过接种其他疫苗,可获得更高的保护效果。不过,尽管该疫苗 54% 的免疫预防效果满足 WHO 对成人用结核新疫苗保护力的要求[33],但其持久的保护效果如何还需进一步延长随访时间。

3 小结和展望

在疫苗安全性受到大众广泛关注的今天,Mtb 感染人群的免疫干预需要特别注意其安全性,尤其是发生“Koch 现象”的风险。如早期 Koch 用旧结核菌素治疗结核病患者一样,动物模型上也可观察到类似现象。已感染 Mtb 的小鼠注射结核抗原后,相比未注射组,大量炎症因子表达,造成免疫损伤[34-35]。这可能是由于处于活动性结核病进程的机体的免疫应答异常活跃,再接触到结核抗原,类似于旧结核菌素,引发了超敏反应。对结核疫苗,尤其是分枝杆菌菌体类疫苗,其抗原成分复杂,导致“Koch 现象”的风险也可能较高。从上述结核疫苗的临床研究看,研究者常采用化疗和免疫相结合的综合干预措施。通过化疗杀灭大部分生长期结核菌,机体亢奋的免疫应答得到抑制,再免疫疫苗,激发的是温和的免疫应答反应,从而降低免疫损伤的风险。在疫苗安全性得到保证的前提下,疫苗的免疫干预效果是临床研究的另一个评价重点。由于对结核病感染和免疫相关机制的理解并不透彻,目前尚未发现与疫苗保护作用相关的生物学指标,免疫干预效果的评估仍依赖于流行病学调查。如果能发现合适的免疫标志物反映临床评价终点,以缩短试验周期并降低成本,将有利于更多的结核候选疫苗进入临床评价阶段,从而增加临床试验的成功几率。期望随着技术的发展,最终实现对 Mtb 感染人群可实施有效的免疫干预措施,无疑将提高现有的结核病防控效果。

[1] Kaufmann SH, Winau F. From bacteriology to immunology: the dualism of specificity. Nat Immunol, 2005,6(11):1063-1066.

[2] Bothamley GH, Grange JM. The Koch phenomenon and delayed hypersensitivity: 1891-1991. Tubercle, 1991, 72(1):7-11.

[3] Rook GA, Stanford JL. The Koch phenomenon and the immunopathology of tuberculosis. Curr Top Microbiol Immunol, 1996, 215:239-262.

[4] Houben RM, Dodd PJ. The global burden of latent tuberculosis infection: a re-estimation using mathematical modelling. PLoS Med, 2016, 13(10):e1002152.

[5] Stanford J, Stanford C, Grange J. Immunotherapy with Mycobacterium vaccae in the treatment of tuberculosis. Front Biosci, 2004, 9:1701-1719.

[6] World Health Organization. Tuberculosis research and development: report of a WHO Working Group Meeting, Geneva, 9-11 September 1991. 1991 [2019-05-10]. https://apps.who.int/iris/handle/10665/62516? locale=fr&mode=full.

[7] Lahey T, Laddy D, Hill K, et al. Immunogenicity and protective efficacy of the DAR-901 booster vaccine in a murine model of tuberculosis. PLoS One, 2016, 11(12):e0168521.

[8] Nouioui I, Brunet LR, Simpson D, et al. Description of a novel species of fast growing mycobacterium: Mycobacterium kyogaense sp. nov., a scotochromogenic strain received as Mycobacterium vaccae. Int J Syst Evol Microbiol, 2018, 68(12):3726-3734.

[9] Zhuang YH, Li GL, Wang GZ. Progress in Mycobacterium vaccae for immunotherapy and prevention of tuberculosis. Microbiol China, 1995, 22(2):108-109. (in Chinese)

庄玉辉, 李国利, 王国治. 母牛分枝杆菌制剂在结核病免疫治疗与预防应用的研究进展. 微生物学通报, 1995, 22(2):108-109.

[10] National Cooperation Group on Clinical Study of Mycobacterium Vaccae Vaccine. The immunotherapeutic effect of Mycobacterium vaccae vaccine on initially treated pulmonary tuberculosis. ChinJ Tuberc Respir Dis, 2001, 24(1):43-47. (in Chinese)

全国微卡菌苗临床研究协作组. 母牛分支杆菌菌苗在初治肺结核治疗中的作用. 中华结核和呼吸杂志, 2001, 24(1):43-47.

[11] Weng H, Huang JY, Meng XY, et al. Adjunctive therapy of Mycobacterium vaccae vaccine in the treatment of multidrug-resistant tuberculosis: a systematic review and meta-analysis. Biomed Rep, 2016, 4(5):595-600.

[12] Huang CY, Hsieh WY. Efficacy of Mycobacterium vaccae immunotherapy for patients with tuberculosis: A systematic review and meta-analysis. Hum Vaccin Immunother, 2017, 13(9):1960-1971.

[13] Cardona PJ. RUTI: a new chance to shorten the treatment of latent tuberculosis infection. Tuberculosis (Edinb), 2006, 86(3-4):273-289.

[14] Vilaplana C, Montane E, Pinto S, et al. Double-blind, randomized, placebo-controlled Phase I Clinical Trial of the therapeutical antituberculous vaccine RUTI. Vaccine, 2010, 28(4):1106-1116.

[15] Nell AS, D'lom E, Bouic P, et al. Safety, tolerability, and immunogenicity of the novel antituberculous vaccine RUTI: randomized, placebo-controlled phase II clinical trial in patients with latent tuberculosis infection. PLoS One, 2014, 9(2):e89612.

[16] Saini V, Raghuvanshi S, Talwar GP, et al. Polyphasic taxonomic analysis establishes Mycobacterium indicus pranii as a distinct species. PLoS One, 2009, 4(7):e6263.

[17] Nyasulu PS. The role of adjunctive Mycobacterium w immunotherapy for tuberculosis. J Exp Clin Med, 2010, 2(3):124-129.

[18] Mayosi BM, Ntsekhe M, Bosch J, et al. Prednisolone and Mycobacterium indicus pranii in Tuberculous Pericarditis. N Engl J Med, 2014, 371(12):1121-1130.

[19] Sharma SK, Katoch K, Sarin R, et al. Efficacy and safety of Mycobacterium indicus pranii as an adjunct therapy in category II pulmonary tuberculosis in a randomized trial. Sci Rep, 2017, 7(1): 3354.

[20] World Health Organization. Global tuberculosis report 2018. 2018 (2019-08-12) [2019-05-10]. https://www.who.int/tb/publications/global_ report/en/.

[21] World Health Organization. BCG vaccine: WHO position paper, February 2018 - Recommendations. Vaccine, 2018, 36(24):3408-3410.

[22] Lu JB, Chen BW, Wang GZ, et al. Recombinant tuberculosis vaccine AEC/BC02 induces antigen-specific cellular responses in mice and protects guinea pigs in a model of latent infection. J Microbiol Immunol Infect, 2015, 48(6):597-603.

[23] Lu JB, Shen XB, Su C, et al. Therapeutic evaluation of isoniazid in combination with recombinant tuberculosis vaccine AEC/BC02 in guinea pigs infected with Mycobacterium tuberculosis. Chin J Antituberc, 2017, 39(2):123-128. (in Chinese)

卢锦标, 沈小兵, 苏城, 等. 异烟肼联合重组结核疫苗AEC/BC02对结核分枝杆菌感染豚鼠的治疗效果评价. 中国防痨杂志, 2017, 39(2):123-128.

[24] Lu JB, Yang L, Su C, et al. Therapeutic evaluation of antibiotics combined with recombinant tuberculosis vaccine AEC/BC02 in a guinea pig model of Mycobacterium tuberculosis infection. Chin J Microbiol Immunol, 2018, 38(6):414-419. (in Chinese)

卢锦标, 杨蕾, 苏城, 等. 重组AEC/BC02疫苗联合化疗在豚鼠模型中的抗结核效果. 中华微生物学和免疫学杂志, 2018, 38(6):414- 419.

[25] Coler RN, Dillon DC, Skeiky YA, et al. Identification of Mycobacterium tuberculosis vaccine candidates using human CD4+ T-cells expression cloning. Vaccine, 2009, 27(2):223-233.

[26] Garçon N, Di Pasquale A. From discovery to licensure, the Adjuvant System story. Hum Vaccin Immunother, 2017, 13(1):19-33.

[27] Brandt L, Skeiky YA, Alderson MR, et al. The protective effect of the Mycobacterium bovis BCG vaccine is increased by coadministration with the Mycobacterium tuberculosis 72-kilodalton fusion polyprotein Mtb72F in M. tuberculosis-infected guinea pigs. Infect Immun, 2004, 72(11):6622-6632.

[28] Tsenova L, Harbacheuski R, Moreira AL, et al. Evaluation of the Mtb72F polyprotein vaccine in a rabbit model of tuberculous meningitis. Infect Immun, 2006, 74(4):2392-2401.

[29] Gillard P, Yang PC, Danilovits M, et al. Safety and immunogenicity of the M72/AS01E candidate tuberculosis vaccine in adults with tuberculosis: a phase II randomised study. Tuberculosis (Edinb), 2016, 100:118-127.

[30] van den Berg RA, De Mot L, Leroux-Roels G, et al. Adjuvant- associated peripheral blood mRNA profiles and kinetics induced by the adjuvanted recombinant protein candidate tuberculosis vaccine M72/AS01 in bacillus calmette-guerin-vaccinated adults. Front Immunol, 2018, 9:564.

[31] Kumarasamy N, Poongulali S, Beulah FE, et al. Long-term safety and immunogenicity of the M72/AS01E candidate tuberculosis vaccine in HIV-positive and -negative Indian adults: Results from a phase II randomized controlled trial. Medicine (Baltimore), 2018, 97(45): e13120.

[32] Van Der Meeren O, Hatherill M, Nduba V, et al. Phase 2b controlled trial of M72/AS01E vaccine to prevent tuberculosis. N Engl J Med, 2018, 379(17):1621-1634.

[33] Schrager LK, Chandrasekaran P, Fritzell BH, et al. WHO preferred product characteristics for new vaccines against tuberculosis. Lancet Infect Dis, 2018, 18(8):828-829.

[34] Taylor JL, Ordway DJ, Troudt J, et al. Factors associated with severe granulomatous pneumonia in Mycobacterium tuberculosis-infected mice vaccinated therapeutically with hsp65 DNA. Infect Immun, 2005, 73(8):5189-5193.

[35] Derrick SC, Perera LP, Dheenadhayalan V, et al. The safety of post-exposure vaccination of mice infected with Mycobacterium tuberculosis. Vaccine, 2008, 26(48):6092-6098.

10.3969/j.issn.1673-713X.2019.05.011

国家自然科学基金面上项目(81572068)

卢锦标,Email:lujinbiao@nifdc.org.cn

2019-05-14

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