大戟苷诱导人宫颈癌Hela细胞凋亡及其作用机制研究

2018-09-10 02:38张德莉李晓强白银亮何荣霞吕银凤文惠方魏丽
中国药房 2018年20期
关键词:凋亡宫颈癌机制

张德莉 李晓强 白银亮 何荣霞 吕银凤 文惠方 魏丽

中圖分类号 R285 文献标志码 A 文章编号 1001-0408(2018)20-2773-04

DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2018.20.08

摘 要 目的:研究大戟苷对人宫颈癌Hela细胞凋亡的诱导作用及其机制。方法:取Hela细胞分为空白对照组、顺铂组(阳性对照,10 mg/L)和大戟苷低、中、高剂量组(50、100、200 mg/L),分别加入相应药物进行培养。药物作用24、48、72 h后,采用MTT法检测细胞增殖抑制率。药物作用48 h后,采用流式细胞术检测细胞凋亡率,采用Hoechst 33258染色法检测细胞核的形态变化;采用Western blot法检测细胞色素C(Cyt-C)、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10蛋白表达水平。结果:与空白对照组比较,顺铂组和大戟苷各剂量组细胞增殖抑制率和细胞凋亡率均显著升高(P<0.05或P<0.01),细胞核浓染,或有变形、缩小、碎裂,或出现凋亡小体。与空白对照组比较,大戟苷低、中、高剂量组细胞中Cyt-C、Caspase-8和Caspase-9蛋白表达水平均显著升高,Bcl-2蛋白表达水平和Bcl-2/Bax比值均显著降低(P<0.05或P<0.01);大戟苷中、高剂量组细胞中Bax、Caspase-3和Caspase-10蛋白表达水平均显著升高(P<0.05或P<0.01)。结论:大戟苷能显著抑制Hela细胞增殖、促进细胞凋亡,其作用可能是通过激活Caspase依赖的线粒体凋亡途径来实现的。

关键词 大戟苷;宫颈癌;Hela细胞;凋亡;机制

ABSTRACT OBJECTIVE: To study induction effect of euphornin on the apoptosis of cervical cancer Hela cells and its mechanism. METHODS: The cervical cancer Hela cells were divided into blank control group, cisplatin group (positive control, 10 mg/L) and euphornin low-dose, medium-dose and high-dose groups (50, 100, 200 mg/L). They were treated with relevant medicine. The inhibitory effect of Hela cells proliferation was tested by MTT assay after 24, 48, 72 h of medicine treatment. The apoptotic rate of Hela cells was measured by flow cytometry after 48 h of medicine treatment. Morphology of nucleus was detected by Hoechst 33258 staining. The protein expression of Cyt-C,Bcl-2,Bax,Caspase-3,Caspase-8,Caspase-9 and Caspase-10 were detected by Western blot assay. RESULTS: Compared with blank control group, inhibitory rate of cell proliferation and cell apoptosis rate were increased significantly in cisplatin group and euphornin groups (P<0.05 or P<0.01), and obvious staining, deformation, shrinking, fragmentation or apoptotic bodies was found in nucleus. Compared with blank control group, the protein expression levels of Cyt-C, Caspase-8 and Caspase-9 in euphornin low-dose, medium-dose and high-dose groups were increased significantly, while the protein expression level of Bcl-2 and Bcl-2/Bax ratio were decreased significantly (P<0.05 or P<0.01); the protein expression levels of Bax,Caspase-3 and Caspase-10 in euphornin medium-dose and high-dose groups were increased significantly (P<0.05 or P<0.01). CONCLUSIONS: Euphornin can significantly inhibit the proliferation of Hela cell and promote cell apoptosis, the effect of which will be achieved by activating the Caspase-dependent mitochondrion apoptosis pathway.

KEYWORDS Euphornin;Cervical cancer;Hela cell;Apoptosis; Mechanism

宫颈癌是女性最常见的妇科恶性肿瘤之一,发病率在全球女性肿瘤中居第3位,严重威胁女性健康[1]。泽漆是大戟属植物泽漆(Euphorbia helioscopia L.)的干燥全草,其作为民间验方的重要组成部分用于治疗宫颈癌、食道癌等表现出一定疗效,因此其抗肿瘤活性引起了研究者的广泛关注[2-3]。近年来,有研究者对泽漆的不同溶剂提取物进行了抗肿瘤活性筛选,发现其对多种肿瘤细胞均有一定的抑制作用[2-4]。以往研究显示,泽漆的乙酸乙酯、石油醚、氯仿等萃取液对肝癌SMMC7721细胞、HepG2细胞,胃癌SGC7901细胞和肺癌A549细胞均有显著的增殖抑制作用,其机制可能是通过线粒体途径诱导肿瘤细胞凋亡[5-8]。目前的研究大多是针对泽漆的提取混合物,对其单体活性成分的研究较少。只有Chen H等[9]于2012年首次研究了泽漆的二萜酯类单体活性成分之一大戟苷(Euphornin)的细胞毒作用,结果发现其对肺腺癌LA795细胞增殖具有显著的抑制作用,因此提出大戟苷是泽漆提取物发挥抗肿瘤作用的最关键组分之一,但并未对其抗肿瘤作用机制作进一步研究。基于此,本课题组拟研究大戟苷诱导人宫颈癌Hela细胞凋亡的作用及其机制,为大戟苷临床上用于宫颈癌的治疗提供实验基础。

1 材料

1.1 仪器

BB15型CO2细胞培养箱(美国Thermo Scientific公司);Synergy H1型全功能酶标仪(美国BioTek公司);IX51型荧光显微镜(日本Olympus公司);FACS Calibur型流式细胞仪(美国BD公司);DYY-Ⅲ型电泳仪、DYY-Ⅲ型电泳槽(北京六一实验仪器厂);Z216K型高速冷冻离心机(德国Hermle 公司)。

1.2 药品与试剂

大戟苷(兰州大学天然药物化学教研室,批号:20151121,纯度:≥98%);顺铂注射液(江苏豪森药业股份有限公司,批号:160508,规格:30 mg/6 mL);四甲基偶氮唑蓝(MTT)、Hoechst 33258染色试剂盒、Annexin V-FITC细胞凋亡检测试剂盒、ECL化学发光试剂盒(碧云天生物技术研究所);鼠抗人细胞色素C(Cyt-C)、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9、Caspase-10、β-actin单克隆抗体和辣根过氧化物酶标记兔抗鼠二抗(美国Santa Cruz公司);BCA蛋白定量分析试剂盒、胎牛血清、DMEM培养基、双抗(青霉素-链霉素)、磷酸盐缓冲液(PBS,pH 7.4)[赛默飞世尔科技(中国)有限公司];水为双蒸水。

1.3 细胞

人宫颈癌Hela细胞株由中国科学院上海细胞库提供。

2 方法

2.1 细胞培养

取Hela细胞,在含有10%胎牛血清、100 U/mL青霉素、100 μg/mL 链霉素的DMEM培养基(以下简称“DMEM培养基”)中,于37 ℃、5%CO2条件下培养。待细胞生长至对数生长期时取出用于试验。

2.2 细胞增殖抑制率检测

采用MTT法检测。将Hela细胞以5×104个/孔接种于96孔培养板,在37 ℃、5%CO2条件下培养24 h;将细胞分为空白对照组、顺铂组(阳性对照)和大戟苷低、中、高剂量组,分别加入含相应药物的DMEM培养基。根据文献[9],大戟苷低、中、高剂量组的药物终质量浓度分别为50、100、200 mg/L;顺铂组的药物终质量浓度为10 mg/L;空白对照组加入等体积的不含药DMEM培养基。加药后继续培养24、48、72 h。每组细胞均设6个复孔平行操作。培养完毕后收集细胞,以MTT染色液染色,采用酶标仪在492 nm波长处检测吸光度(OD值),计算大戟苷对Hela细胞的增殖抑制率。细胞增殖抑制率(%)=(1-试验组OD值/对照组OD值)×100%。试验重复3次。

2.3 细胞凋亡率检测

采用流式细胞术检测。将Hela细胞以1×105个/孔接种于6孔培养板中,在37 ℃、5%CO2条件下培养24 h;按“2.2”项下方法进行分组及加入相应药物;继续培养48 h后收集细胞,用预冷的PBS洗涤2次;按照Annexin V-FITC细胞凋亡检测试剂盒说明书操作,采用流式细胞仪检测细胞凋亡率。试验重复3次。

2.4 细胞核形态观察

采用Hoechst 33258染色法检测。按“2.3”项下方法取Hela细胞接种、培养、分组及加入相应药物;继续培养48 h后收集细胞并制成细胞悬液(1×104个/mL);按照Hoechst 33258染色试剂盒说明书操作后,于荧光显微镜下观察Hela细胞核形态并对图像进行分析。鏡下可见细胞呈蓝色荧光;凋亡细胞的细胞核浓染,或有变形、缩小或碎裂,或出现凋亡小体。

2.5 细胞中凋亡相关蛋白表达水平检测

采用Western blot法检测。按“2.3”项下方法取Hela细胞接种、培养,分为空白对照组(不含药DMEM培养基)和大戟苷低、中、高剂量组(终质量浓度分别为50、100、200 mg/L),加入相应药物;继续培养48 h后加入含蛋白酶抑制剂的RIPA裂解液冰浴裂解25 min,收集细胞,在4 ℃条件下15 000 r/min离心25 min,取上清,采用BCA法进行总蛋白定量,-80 ℃保存备用。蛋白采用10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分离,转膜,5%脱脂奶粉封闭2 h后,加入一抗(Cyt-C、Bcl-2、Bax、Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9、Caspase-10、β-actin,稀释度均为1 ∶ 1 000),4 ℃孵育过夜,然后加入二抗室温孵育2 h,电化学发光法显色。以β-actin为参比,采用Image Pro Plus 6.0软件分析目标条带的相对灰度值,以表示蛋白表达水平。试验重复3次。

2.6 统计学方法

数据以均数±标准差(x±s)表示。应用SPSS 15.0软件对多组间比较进行单因素方差分析,对组间两两比较进行LSD-t检验。P<0.05为差异有统计学意义。

3 结果

3.1 大戟苷对Hela细胞增殖的影响

与空白对照组比较,顺铂组和大戟苷低、中、高剂量组细胞加入相应药物作用24、48、72 h后,细胞增殖抑制率均显著升高,差异均有统计学意义(P<0.01),表明不同剂量的大戟苷对Hela细胞增殖均有显著的抑制作用。各组细胞增殖抑制率比较见表1。

3.2 大戟苷对Hela细胞凋亡的影响

与空白对照组比较,顺铂组和大戟苷低、中、高剂量组细胞加入相应药物作用48 h后,细胞凋亡率均显著升高,差异均有统计学意义(P<0.01),表明不同剂量的大戟苷均能够诱导Hela細胞发生凋亡。各组细胞的流式细胞图见图1,细胞凋亡率比较见表2。

3.3 大戟苷对Hela细胞核形态的影响

荧光显微镜下可见,与空白对照组比较,顺铂组细胞的细胞核出现明显的浓染、碎裂和凋亡小体;大戟苷低、中、高剂量组细胞的细胞核有不同程度的浓染或变形、缩小、碎裂,其中大戟苷中、高剂量组细胞出现凋亡小体。这表明大戟苷可剂量依赖性促进Hela细胞发生凋亡。各组细胞的细胞核形态显微图见图2。

3.4 大戟苷对Hela细胞中凋亡相关蛋白表达的影响

与空白对照组比较,药物作用48 h后,大戟苷低、中、高剂量组细胞中Cyt-C、Caspase-8和Caspase-9蛋白表达水平均显著升高,Bcl-2蛋白表达水平和Bcl-2/Bax比值均显著降低;大戟苷中、高剂量组细胞中Bax、Caspase-3和Caspase-10蛋白表达水平均显著升高,以上差异均有统计学意义(P<0.05或P<0.01)。各组细胞中凋亡相关蛋白电泳图见图3,蛋白表达水平比较见表3。

4 讨论

本课题组在预试验中考察了大戟苷对正常细胞系MRC-5细胞和人宫颈癌Hela细胞增殖的抑制作用,结果发现不同剂量的大戟苷(50、100、200 mg/L)均能显著抑制Hela细胞增殖,但对MRC-5细胞未表现出明显的增殖抑制作用。因此,本研究采用上述剂量进行试验。

线粒体凋亡途径是细胞凋亡最主要的途径之一,通常凋亡信号能引起线粒体的通透性转换孔(PT)开放,导致线粒体跨膜电位下降和Cyt-C释放进入细胞质[10]。作为凋亡诱导因子,Cyt-C能与凋亡酶激活因子(Apaf-1)、Caspase-9前体、腺嘌呤核糖核苷酸/腺嘌呤脱氧核糖核苷酸(ATP/dATP)形成凋亡体,然后募集并激活Caspase-3,进而诱发Caspase家族级联反应,最终导致细胞凋亡[11-13]。同时,Bcl-2家族蛋白能够调节PT孔的开放和关闭:促凋亡蛋白Bax可通过与PT孔的腺苷转位因子(ANT)和电压依赖性阴离子通道(VDAC)结合介导PT孔的开放,继而发挥其促凋亡效应;而抗凋亡蛋白Bcl-2则可通过与Bax竞争性地结合ANT或VDAC,继而发挥其抗凋亡效应[14-16]。本研究结果显示,大戟苷能显著诱导Hela细胞发生凋亡,升高Cyt-C、Bax蛋白表达水平,降低Bcl-2蛋白表达水平。这提示大戟苷能诱导Cyt-C向细胞质释放,从而启动线粒体凋亡途径。

Caspase蛋白家族属于半胱氨酸蛋白酶,是诱发细胞凋亡的关键酶,一旦被激活即能降解细胞内的蛋白质,导致细胞发生不可逆的死亡[17]。Caspase蛋白通常分为两类:一类是启动者,如Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10,它们能通过自催化或自剪接的方式被激活,继而引起Caspase家族级联反应;另一类是执行者,如Caspase-3、Caspase-6和Caspase-7,它们可直接降解细胞内结构蛋白和功能蛋白,引起细胞凋亡,但不能通过自催化或自剪接的方式被激活[18]。通常当Cyt-C过度释放进入细胞质后,Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10接受凋亡信号后通过异源活化方式激活下游Caspase信号,将凋亡信号级联放大,被异源活化的Caspase-3等最终执行细胞死亡程序[19-20]。本研究结果显示,大戟苷能显著升高Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9和Caspase-10蛋白表达水平。这进一步提示大戟苷能通过启动线粒体凋亡途径而诱导Hela细胞凋亡。

综上所述,大戟苷能显著抑制Hela细胞增殖、促进细胞凋亡,其作用可能是通过激活Caspase依赖的线粒体凋亡途径来实现的。

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(收稿日期:2018-04-25 修回日期:2018-08-24)

(編辑:段思怡)

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