辛向荣,贺 琴,游金明,叶亚玲,邓宸玺
(江西农业大学动物科技学院,江西省动物营养重点实验室,江西省营养饲料开发工程中心,江西南昌330045)
谷氨酰胺(Glutamine,Gln)是肠道细胞进行细胞周转的能量底物[1],是嘌呤和蛋白的氮源供体,用来维持依赖于ATP的代谢过程的顺利进行。Gln代谢产生的鸟氨酸是多胺合成的重要前体,而多胺是一种脂肪组胺类,在IPEC-1的分化、增殖及受损肠道上皮修复等过程中发挥重要作用[2-3]。研究发现,添加Gln能保护肠道上皮紧密连接蛋白,防止肠道氧化损伤,并刺激蛋白质合成和细胞增殖[4-6],Gln对维持断奶仔猪肠道正常形态、结构和功能,缓解断奶应激损伤具有重要作用[7-9]。但Gln溶解度低,具有热不稳定性,影响了其在动物生产上的应用[10]。丙氨酰-谷氨酰胺(Alanyl-Glutamine Dipeptide,Ala-Gln)被吸收后可迅速释放Gln,可以解决Gln的应用问题。此外, Ala-Gln已成为人类营养研究领域中的热点,在全肠外营养中的研究日益成熟,这为Ala-Gln在畜禽饲料中应用提供了理论支撑[11-12]。自噬(Autophagy)可以定义为细胞“自食”的一个过程,细胞依赖溶酶体降解受损蛋白、损伤或衰老的细胞器等细胞结构,可被多种应激所触发[13-14]。这是机体面对新陈代谢应激进化出的一种防御反应。当处于营养缺乏状态时细胞通过自噬作用回收降解后胞质蛋白,并利用非必需细胞器分解提供代用能源[15]。本研究旨在通过检测IPEC-1细胞活力、抗氧化酶活力及丙二醛(MDA)含量,免疫荧光技术检测氧化应激状态IPEC-1的自噬程度,研究H2O2诱导氧化应激状态下不同浓度的Ala-Gln对IPEC-1的保护作用。
1.1 试验材料 本试验采用的Ala-Gln购自上海超强化工有限公司,纯度≥99%。猪小肠上皮细胞IPEC-1由中国科学院长沙亚热带农业生态研究所提供。
1.2 氧化应激模型的建立 试验采用单因子试验设计,37℃、5% CO2培养箱中培养细胞24 h后,弃去培养液。加入DMEM完全培养液(不含Gln和血清),再分别向每个复孔中添加0、0.25、0.50、1.00、2.00、4.00 mmol/L Ala-Gln预处理20 h。后利用H2O2诱导细胞构建氧化应激模型(前期试验确定最佳应激模型为400 μmol/L H2O2作用4 h),试验共设6个处理,每个处理8个重复。模型建立后开始以下试验数据的测定。
1.3 MTT法检测细胞活力 各复孔均加入100 μL浓度为1 mg/mL的MTT,培养4 h后,倒掉上清液,加入150 μL的二甲基亚砜,震荡混匀10 min。用酶标仪检测490 nm处每孔的吸光度。
1.4 细胞抗氧化酶活性和MDA含量的检测 将细胞培养板内上清液去除,加入细胞裂解液100 μL,混匀37℃孵育2 min,待测其中MDA含量、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)和超氧化物歧化酶(SOD)活力。采用南京建成生物工程研究所的MDA试剂盒(货号A003-4)、GSH-Px试剂盒(货号A005)和SOD试剂盒(货号A001-3),按操作说明要求检测培养液中SOD和GSH-Px活力及MDA含量。
1.5 LC3-II的免疫荧光定量分析 用PBS洗涤细胞5次(10 min/次),加入4%多聚甲醛室温下固定15 min。固定后的细胞用PBS洗涤,100%甲醇-20℃透明10 min,透明后PBS洗涤,之后室温下用5%牛血清白蛋白(BSA)封闭液封闭1 h。然后将细胞与抗LC-3抗体一起在抗体稀释液(1:50 5% BSA)中4℃培养过夜。经过3次TBST洗涤,再将细胞与FITC-anti-Rabbit抗体在抗体缓冲液(1:100 5% BSA)中37℃培养1 h。然后马上用TBST洗涤3次(5 min/次),蒸馏水漂洗1次。取出盖玻片,甘油封片处理,荧光显微镜观察拍照。
1.6 统计分析 采用SPSS 17.0分析软件中ANOVA程序对所测指标进行单因素方差、线性和二次型分析,并用Duncan´s法进行差异显著性比较。结果用平均值±标准误表示,P<0.05为差异显著性判断标准。
2.1 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞活力的影响 如图1所示,氧化状态下,随Ala-Gln添加水平的提高,IPEC-1细胞活力显著增强(P<0.05),且在Ala-Gln为2.00 mmol/L时达到最大值。4.00 mmol/L Ala-Gln水平反而使细胞活力显著下降(P<0.05),但仍高于0.25、0.50、1.00 mmol/L Ala-Gln下IPEC-1细胞活力。
图1 Ala-Gln对氧化应激状态IPEC-1细胞活力的影响
2.2 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞抗氧化性能的影响 由表1可知,添加Ala-Gln预处理细胞,显著提高了氧化应激状态IPCE-1 GSH-Px和SOD活性(P<0.05),显著降低了MDA含量(P<0.05)。氧化应激状态下IPEC-1 GSH-Px活性随Ala-Gln添加浓度增加而提高,而SOD活性在Ala-Gln预处理水平为0.25 mmol/L和0.50 mmol/L时活性最高,之后随Ala-Gln添加水平提高而降低。氧化应激状态下IPEC-1中MDA含量随Ala-Gln预处理水平提高而降低。
表1 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞抗氧化性能的影响
2.3 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞自噬蛋白LC3-II的影响 由图2可观察到,阳性荧光信号为LC3-II,其为自噬体的标志蛋白,代表自噬发生。对照组细胞未经H2O2处理,细胞结构完整,排列紧密,个别细胞出现阳性荧光信号,为IPEC-1正常细胞生理状态。当加入H2O2诱导氧化应激后(图2-A),IPEC-1细胞密度短时间降低,且细胞膜和核膜严重破损,加速外渗细胞质到培养基中,细胞核几乎消融,且胞内很少出现阳性荧光信号,IPEC-1细胞逐渐死亡;当在培养基中加入Ala-Gln预处理后,随Ala-Gln添加水平提高IPEC-1生物膜结构趋于完整,胞内细胞质和核内遗传物质得到很好的保护,细胞密度也随之提高,细胞质中阳性荧光信号增强,当Ala-Gln预处理量为4.00 mmol/L时,细胞生理结构同正常对照组相比无显著差异,与Ala-Gln预处理量为2.00 mmol/L时细胞相比,胞内荧光信号有减少趋势。
3.1 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞抗氧化性能的影响 Gln是体内重要的抗氧化剂,其作为重要的免疫增强因子,对维持内环境氧化和还原稳态起到重要作用[16]。研究发现,细胞培养基中添加Gln可减缓脂多糖或H2O2引起的氧化应激[5]。Gln主要通过减少氧化应激下的细胞凋亡,增强抗氧化酶防御作用、热休克蛋白的表达及诱导细胞自噬来发挥作用[17]。Gln兼备免疫调节与抗氧化能力,这为在临床营养治疗中的应用开辟了广阔的应用空间。
前期研究发现,400 μmol/L的H2O2可显著降低IPEC-1的活力,显著降低IPEC-1内GSH-Px和SOD酶的活性,显著提高细胞内脂质过氧化产物MDA含量[18]。本试验中预添加不同水平Ala-Gln后IPEC-1细胞活力显著增强,且添加2.00 mmol/L Ala-Gln时氧化应激状态下IPEC-1细胞活力达到最大值,当Ala-Gln添加量为4.00 mmol/L时,细胞活力显著下降,但仍高于0.50、1.00 mmol/L Ala-Gln预处理过的IPEC-1细胞活力,该结果与席鹏彬等[19]研究结论相似。
图2 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞自噬蛋白LC3-II的影响
3.2 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞自噬蛋白LC3-II的影响 氧化应激能够造成IPEC-1内自由基的大量堆积,其中对生物膜上多不饱和脂肪酸过氧化损伤最为严重。从本试验免疫荧光结果中可以看出,氧化应激状态小肠上皮细胞的细胞膜和核膜发生脂质过氧化,使其流动性降低,通透性极大提高,胞内有机物质加速外渗,蛋白和核酸氧化变性,失去正常生理功能,IPEC-1死亡率极大提高,细胞密度显著降低。研究发现,Ala-Gln具有抗氧化应激能力,并且是细胞周转的主要燃料和氮源供体,在受损肠道上皮修复等过程中发挥重要作用[10,20-21]。IPEC-1细胞培养基中缺乏Gln 8 h内,会降低IPEC-1细胞数量,增加细胞自噬体的数量,并增强细胞LC3B-II的表达[22]。细胞发生自噬过程的特征在于所谓双膜囊结构自噬体的形成,这种结构由Atg12-Atg5-Atg16复合体和微管结合蛋白轻链3(LC3-I)-磷脂轭合物(LC3-II)介导[17,23]。Sakiyama等[17]研究发现,Gln能够增加肠上皮细胞内微管结合蛋白轻链3-磷脂轭合物(LC3-II)的数量,提高细胞内自噬体数量,同时能够通过控制mTOR和p38 MAP激酶通路来诱导细胞自噬,保护生理应激状态细胞。自噬对机体起保护作用,还是对机体造成危害,取决于机体所处的生理条件[24]。
本试验发现,细胞受到氧化应激使得IPEC-1细胞密度短时间降低,且细胞膜和核膜严重破损,加速外渗细胞质到培养基中,细胞核几乎消融,细胞死亡导致仅能从个别细胞中观察到自噬体。而Ala-Gln预处理后的细胞,IPEC-1生物膜结构趋于完整,胞内细胞质和核内遗传物质得到很好保护,细胞密度也随之提高,其中Ala-Gln添加水平为1.00 、2.00 mmol/L时,IPEC-1胞内自噬体较多,细胞趋于完整状态。当Ala-Gln预处理量为4.00 mmol/L时,细胞生理结构同正常对照组相比无显著差异,且与Ala-Gln预处理量为2.00 mmol/L时的细胞相比,胞内荧光信号有减少趋势。这可能是由于随着应激状态缓解,自噬体降低,细胞逐渐恢复为正常状态。
根据本试验结果可推测,当IPEC-1遭受氧化应激时,Ala-Gln能够通过提高抗氧化物酶活性,减少生物膜上脂质过氧化的发生,保护脂质双分子层结构,使膜的流动性和通透性不变,进而维持细胞中蛋白和核酸正常生物功能。而另一方面,在氧化应激生理条件下,Ala-Gln的添加使得细胞中自噬体增加,细胞通过自噬作用利用胞浆内受损的蛋白和细胞器等细胞结构,为抗氧化物酶的表达与合成提供原料和能量,增强营养缺乏状态时细胞防御能力,缓解细胞受到氧化应激的损伤。
本试验研究发现,预添加不同水平的Ala-Gln可显著提高氧化应激状态下IPEC-1细胞中GSH-Px、SOD酶活性,显著降低脂质过氧化产物MDA含量,增强细胞自噬以缓解细胞氧化应激,表明Ala-Gln对氧化应激状态下IPEC-1具有较强的抗氧化和细胞防御作用。