气相色谱法测定低酒精度饮料中乙醇的含量

2018-05-03 02:02陈国通CHENGuotong
食品与机械 2018年2期
关键词:顶空静态酒精

陈国通CHEN Guo-tong

毛琼玲1

左书瑞2

陈俊宇1

王爱霞1

邵家丽1

(1.新疆维吾尔自治区分析测试研究院,新疆 乌鲁木齐 830011;2.新疆维吾尔自治区职业病防治院,新疆 乌鲁木齐 830011)

饮料可分为含酒精饮料和无酒精饮料[1],无酒精饮料又称软饮料,是指酒精体积分数小于0.5%,以补充人体水分为主要目的流质食品,包括碳酸类饮料、果蔬汁饮料、茶类饮料、乳饮料等。其中的一些无酒精饮料在生产发酵过程中也会产生少量的酒精,如果过量饮用这些饮料后驾驶机动车,可能会造成酒精测试结果属于酒后驾驶。为了避免这种情况发生,有必要对无酒精以及低酒精度饮料中乙醇的含量进行测定。

饮料中乙醇含量的测定方法包括气相色谱法[2-4]、酒精计法[5]、碘量滴定法[6]、近红外光谱[7-8]等方法。但是上述方法均需要对样品进行蒸馏等复杂的前处理操作且误差大。并且低酒精度饮料中的乙醇含量都比较低,一般不易准确测出[9]。而静态顶空气相法具有前处理简单且不受非挥发组分干扰等优点,常用于测定挥发性及半挥发性有机物。林秋婕等[10]利用顶空气相色谱法测定紫杉醇注射液中乙醇含量,但是利用静态顶空气相色谱法测定低酒精度饮料尚未见报道。鉴于此,本试验采用静态顶空气相法直接测定饮料中乙醇含量,并与传统蒸馏后进样的气相色谱法进行比较。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

1.1.1 材料与试剂

植物饮料(外包装中未注明是否含有酒精及酒精含量等信息):市售;

乙醇:色谱纯,天津市福晨化学试剂厂;

试验用水为超纯水:电阻率≥18.3 MΩ·cm,实验室通过 Millipore超纯水系统自制。

1.1.2 主要仪器设备

气相色谱仪:GC-2010 plus型,配有氢火焰离子化检测器,日本岛津公司;

自动顶空进样器:HS-20型,配20 mL顶空瓶,日本岛津公司;

电子天平:XS204型,瑞士梅特勒-托利多国际贸易有限公司。

1.2 方法

1.2.1 仪器条件 色谱柱:TG-WAXMS石英毛细柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm),HP-5石英毛细柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm);升温程序:40 ℃保持5 min,以20 ℃/min升至170 ℃,保持1 min;载气:氮气;载气流速:1.0 mL/min;压力:74.3 kPa;进样量:1.0 μL;分流比:20∶1;空气流速:400 mL/min;氢气流速:40 mL/min;尾吹气流速:30 mL/min;检测器温度:300 ℃。

进样方式:直接进样与自动顶空进样。

直接进样:进样口温度:190 ℃;进样量:1 μL标液;自动进样器:AOC-20i+s。

顶空条件:炉温60 ℃恒温;平衡时间30 min;进样量:1 mL 气体;样品流路温度:150 ℃;传输线温度:150 ℃。

1.2.2 标准曲线 精密量取恒温至20 ℃的色谱纯乙醇1,2,5,10,50,100,200,400,500 μL于10 mL容量瓶中用超纯水定容。取1 mL各标液,直接进样。另取1 mL各标液加入已提前加入0.3 g氯化钠的25 mL顶空瓶中自动顶空进样。以乙醇含量为横坐标,以峰面积为纵坐标,绘制标准曲线。以信噪比等于3为标准,计算试验条件下乙醇的检出限(LOD)。以信噪比等于10为标准,计算试验条件下乙醇的定量限(LOQ)。

1.2.3 样品处理 蒸馏法:用洁净、干燥的100 mL容量瓶,准确量取100 mL样品(液温20 ℃)于500 mL蒸馏瓶中,用50 mL水分3次冲洗容量瓶,洗液并入500 mL蒸馏瓶中,加几颗沸石(或玻璃珠),连接蛇形冷凝管,以取样用的原容量瓶作接收器,外加冰水浴。开启冷却水,缓慢加热蒸馏,收集馏出液。当接近刻度时,取下容量瓶,盖塞,于20 ℃水浴中保温30 min,再补加水至刻度,混匀,备用;静态顶空法[11]:准确移取1 mL样品加入已提前加入0.3 g氯化钠的25 mL顶空瓶中,立即压盖备测。

1.2.4 静态顶空条件优化 平衡温度:选择乙醇体积浓度为0.5%的标准溶液,分别在50,60,70,80,90 ℃,平衡30 min,测定连续进样6次的峰面积;平衡时间:选取乙醇体积分数为0.5%的乙醇标准溶液,60 ℃分别平衡10,15,20,30,40 min 后顶空进样,测定其对应的峰面积。

1.2.5 样品测定及加标回收试验

(1) 样品测定:分别取6份各100 mL样品选用蒸馏法处理并气相色谱直接进样测定,另外分别取6份各1.00 mL样品置于已提前加入0.3 g氯化钠的25 mL顶空瓶中,立即压盖,并于60 ℃下平衡30 min后自动顶空进样测定。

(2) 空白加标回收试验:取9个250 mL容量瓶分为A、B、C 3组,分别标记为A1、A2、A3、B1、B2、B3、C1、C2、C3。A组加入1.25 mL乙醇,B组加入2.50 mL乙醇,C组加入5.00 mL 乙醇,用超纯水定容至标线。从各瓶中取100 mL用于蒸馏法处理并气相色谱直接进样测定。另外分别从各瓶中取1.00 mL样品置于已提前加入0.3 g氯化钠的25 mL顶空瓶中,立即压盖,并于60 ℃下平衡30 min后自动顶空进样测定。A组理论浓度为0.5%,B组理论浓度为1.0%,C组理论浓度为2.0%;回收率按式(1)计算。

(1)

式中:

P——回收率,%;

Ci——实际测得乙醇浓度,%;

Ct——乙醇理论浓度,%。

(3) 样品加标回收试验:取9份各100 mL样品,分为D、E、F 3组,分别标记为D1、D2、D3、E1、E2、E3、F1、F2、F3。D组加入0.5 mL乙醇,E组加入1.0 mL乙醇,F组加入2.0 mL 乙醇,用于蒸馏法处理并气相色谱直接进样测定。另外取9份各1.00 mL样品置于已提前加入0.3 g氯化钠的25 mL顶空瓶中,立即压盖。分组及标记情况同蒸馏法样品加标回收试验。用微量进样针在G组加入5 μL乙醇,H组加入10 μL乙醇,I组加入20 μL乙醇,并于60 ℃下平衡30 min 后自动顶空进样测定。回收率按式(2)计算。

(2)

式中:

P——回收率,%;

C1——加标前样品乙醇浓度,%;

C2——加标后乙醇浓度,%;

V——样品体积,mL;

V0——乙醇加入量,mL。

2 结果与分析

2.1 色谱柱选择与进样方式比较

分别选用TG-WAXMS色谱柱和HP-5色谱柱进行测定,结果表明HP-5(弱极性)与TG-WAXMS(极性)色谱柱均有较好的分离效果,由于TG-WAXMS色谱柱对甲醇和乙醇具有更好的分离效果[12],故本试验选用TG-WAXMS色谱柱。

传统乙醇测定大多采用蒸馏后进样或用水稀释后直接进样[13],本试验分别采用传统蒸馏后进样和顶空后进样2种方式对样品进行测定。通过对比,发现由于乙醇测定的溶剂主要为蒸馏水,而水汽化膨胀体积较大,可能会造成在进样口样品蒸汽膨胀出衬管形成“倒灌”,导致进样重现性较差且峰形不好。故如果采用直接进样法,建议适当减小进样量。而顶空法具有峰形好,重现性好,无干扰的优势,且对色谱柱有保护作用。顶空进样标准品色谱图见图1。

2.2 顶空条件优化结果

2.2.1 不同顶空平衡温度下的试验 从表1可以看出,随着温度的升高乙醇峰面积也相应增大,灵敏度也相应提高。但是过高温度会使测量精密度下降,并且温度过高后达到乙醇的沸点。故本试验选择平衡温度为60 ℃。

表1 不同顶空平衡温度下乙醇峰面积测定结果(平衡时间:30 min)Table 1 Peak area of ethanol at different headspace equilibrium temperature (equilibrium time: 30 min)

2.2.2 不同顶空平衡时间下的试验 由图2可知,峰面积随着时间的延长而增大,但是平衡30 min后,峰面积基本不再增加,因此平衡时间选为30 min。

2.3 标准曲线及检出限

乙醇线性范围、线性方程、相关系数(r)、检出限及定量限结果见表2。由表2可知,2种方法在体积分数为0.01%~5.00% 时均有较好的线性关系。

2.4 样品测定及加标回收试验

2.4.1 样品测定结果 由表3可以看出,选用传统蒸馏后进样的测定结果较静态顶空后进样的偏低,且相对标准偏差较大。

2.4.2 加标回收试验 为了考查2种测定方法的准确度,分别采用空白加标及样品加标2种加标方式计算回收率[14]。空白加标试验中加入的量是已知的,可以避免试样基质乙醇含量不确定性的干扰,考察方法的可行性程度。而样品加标可以充分将基质影响考虑在内,实际应用中不可或缺。

空白加标回收试验测定结果见表4。

样品加标回收试验测定结果见表5。回收率计算公式中的样品浓度采用表3中样品测得浓度的平均值进行计算。

图1 乙醇体积分数为0.5%的标准溶液顶空进样色谱图Figure 1 Headspace gas chromatography of a standard solution with a concentration of 0.5%

图2 不同平衡时间下测得乙醇峰面积(体积分数:0.5%)Figure 2 Ethanol peak area (volume fraction is 0.5%) under different equilibration time

表2 乙醇线性范围、线性方程、相关系数(r)、检出限及定量限Table 2 Linear ranges, Linear equations, correlation coefficients (r), detection limits, and quantitative limits of the ethanol

表3 样品测定结果及相对标准偏差Table 3 Sample result and relative standard deviation (n=6) %

表4 空白加标回收试验结果Table 4 Recoveries of blank sample %

表5 样品加标回收试验结果Table 5 Recoveries of sample %

通过对比蒸馏法和静态顶空法2个回收试验结果,得出无论是空白加标回收试验还是样品加标回收试验,蒸馏法的回收率相对较低,可能是蒸馏法前处理操作相对繁琐,容易造成目标产物的损失。而静态顶空法的回收率均在100%附近。究其原因是静态顶空法的处理步骤简单不易造成目标成分的损失。

3 结论

本试验采用静态顶空气相法与传统蒸馏后进样的气相色谱法2种方法测定饮料中乙醇含量。选用TG-WAXMS色谱柱。通过比对发现,2种方法在乙醇体积分数为0.01%~5.00%时均具有良好的线性关系。直接进样法会造成大量的水溶剂在进样口气化膨胀溢出衬管形成“倒灌”,导致进样重现性较差且峰形不好;而静态顶空进样可以避免此现象发生。通过空白加标及样品加标2种加标试验考察方法的准确度,结果表明传统蒸馏后直接进样的气相色谱法回收率相对较低(83%~91%),是由于该法前处理步骤繁琐且耗时较长,在处理过程中易造成待测物质乙醇的损失;而静态顶空法前处理简单,待测物质乙醇不易损失。

利用静态顶空法测定低酒精度饮料中的乙醇相比传统蒸馏法具有前处理简单、准确度高、重现性好、对色谱柱污染小、不受非挥发组分干扰等优点。另外该法还可以用于类似的低酒精度饮品中乙醇的测定。

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