陆娜娜
(合肥市滨湖医院病理科,合肥 230601)
胃癌(gastric cancer)是人类最常见的消化道恶性肿瘤之一,在我国,其发病率呈逐年上升趋势。免疫逃逸机制在胃癌发生、发展中发挥重要作用,其中,程序性死亡配体-1(programmed death ligand-1,PD-L1)是影响肿瘤生物行为的重要因素。粘蛋白1(mucin 1, MUC1)是粘蛋白家族成员中的一种I型跨膜蛋白,在肿瘤组织中异常表达。目前关于PD-L1和MUC1与胃癌之间的关系研究甚少,为此,本研究采用免疫组织化学S-P(streptavidin- peroxidase,链霉菌抗生物素-过氧化物酶)法检测胃癌组织中PD-L1和MUC1的表达,分析其在胃癌生物学行为中的作用,以及两者间的关系。为胃癌的临床诊治、预后评估提供有效理论依据。
收集合肥市滨湖医院病理科2014年至今住院胃癌手术切除标本120例,另取40例距癌灶边缘5cm以上的正常胃粘膜组织作为对照。所有病例术前均未接受放疗、化疗及其他针对肿瘤的特殊治疗,且术后经病理证实。所有标本经10%中性福尔马林液固定,石蜡包埋,常规切片。
兔抗人MUC1单克隆抗体(ab45167)购自Abcam公司,兔抗人PD-L1单克隆抗体(RMA-0732)、即用型快捷免疫组织化学检测试剂盒及DAB显色试剂盒均购自福州迈新生物技术开发有限公司。
S-P法免疫组织化学染色参照试剂盒说明书操作,用已知阳性切片作为阳性对照,用PBS代替一抗作为阴性对照。
PD-L1免疫反应产物定位于细胞膜,MUC1免疫反应产物定位于细胞质。采用半定量方法[1]按以下2种方式进行评分:①按细胞染色强弱评分:0分不着色,1分浅黄色,2分棕黄色,3分棕褐色;②选取5个高倍视野(40×物镜),计数阳性染色细胞占细胞总数的百分比:0分0%~5%,1分6%~25%,2分26%~50%,3分51%~75%,4分76%~100%。按①与②乘积判断结果:<3为阴性(-),≥3为阳性(+)。染色结果由两位病理科医师进行诊断核实。
应用SPSS13.0软件包进行统计分析。各样本资料差异的统计学处理采用X2检验方法,Spearman相关分析检验方法,P<0.05表示有统计学意义。
免疫染色结果显示,在40例正常胃黏膜组织中,PD-L1均呈免疫反应阴性(图1上排), MUC1均呈免疫反应阳性,阳性细胞分布在正常胃粘膜中,包括主细胞、壁细胞和粘液细胞(图1下排)。
图1 PD-L1(上排)和MUC1(下排)在正常胃粘膜组织的表达(S-P法)Fig.1 Expression of PD-L1 (upper row) and MUC1 (lower row) in the normal gastric mucosa (S-P method)
在胃癌组织中,PD-L1免疫染色阳性率为32.5%(39/120),免疫反应阳性产物定位于肿瘤细胞的细胞膜(图2);MUC1免疫反应阳性率为65%(78/120),免疫反应阳性产物定位于肿瘤细胞的细胞质(图3)。肿瘤直径大于5cm组PD-L1和MUC1阳性表达率分别为48.9%(21/43)和76.7%(33/43),均显著高于肿瘤直径小于5cm组的23.4%(18/77)和58.4%(45/77)。浸润深度T3-T4组PD-L1和MUC1阳性表达率分别为40.3%(29/72)和75%(54/72),均显著高于T1-T2组的20.8%(10/48)和50%(24/48)。淋巴结转移阳性组PD-L1和MUC1阳性表达率分别为40.6%(28/69)和73.9%(51/69),均显著高于阴性组的21.6%(11/51)和52.9%(27/51)。PD-L1和MUC1表达与患者年龄、性别、肿瘤分化程度及TNM分期均无关(表1)。
图2 PD-L1在胃癌组织中肿瘤细胞的细胞膜上表达(S-P法)。比例尺:上排,200µm;下排,50µmFig.2 Expression of PD-L1 on the membrane of gastric carcinoma cells (S-P method). Scale bars∶ 200µm in the upper row and 50µm in the lower row
在120例胃癌中,PD-L1和MUC1表达均阳性36例,均阴性39例,前者阳性而后者阴性3例,前者阴性而后者阳性42例;PD-L1和MUC1在胃癌组织中的表达呈正相关(表2)。
程序性死亡配体-1(PD-L1)是一种重要的免疫抑制因子,也被称为CD274,是由290个氨基酸组成的跨膜糖蛋白,属于B7家族成员[2]。PD-L1除了表达于胎盘、扁桃体以及肺和肝中小部分的巨噬样细胞外[3],在人体正常组织细胞表面几乎不表达。PD-L1是程序性死亡因子(Programmed death 1,PD-1)的配体之一,它们共同组成的信号通路能调节肿瘤微环境,抑制T细胞增殖和活化,导致肿瘤免疫失活和免疫逃逸[4,5],从而促进肿瘤的发生和发展。PD-L1在多种肿瘤中如非小细胞肺癌[6]、恶性黑色素瘤[7]、乳腺癌[8]、结肠癌[9]等均呈现高表达。研究显示,PD-L1 在正常胃组织中几乎不表达,而在胃癌组织中表达水平明显上调[10-12]。但是在胃癌组织中的表达阳性率及其与临床病理因素间的关系,国内外文献报道尚存在一定差异。我们的结果显示,在胃癌组织中,PD-L1的表达与肿瘤大小、淋巴结转移及浸润深度有关,与患者年龄、性别、肿瘤分化程度及TNM分期无关。
图3 MUC1在胃癌组织中肿瘤细胞的细胞质内表达(S-P法)。比例尺:上排,200µm;下排50µmFig.3 Expression of MUC1 in the cytoplasm of gastric carcinoma cells (S-P method). Scale bars∶ 200µm in the upper row and 50µm in the lower row
表1 胃癌组织中PD-L1和MUC1表达与临床病理参数之间的关系Tab.1 The relationship between expression and clinicopathological manifestations of PD-L1 and MUC1 in gastric carcinoma
MUC1是由muc1基因编码的一种高分子量糖蛋白(120~225 ku),广泛分布于呼吸系统、消化系统和生殖系统等分泌型上皮细胞管腔表面,与家族其他成员共同组成细胞黏膜,保护机体免受外界细菌、病毒的侵害[13-15]。MUC1基因定位于1q21-24位点上,几乎所有的人类黏膜都分泌MUC1,且它多表达于上皮细胞近腔面,其在多种肿瘤组织中异常表达,表现为量的增加和结构改变,其畸形糖基化或糖基化不全,使MUC1暴露出新的蛋白或新的糖抗原[16]。研究显示,过度表达的MUC1可赋予肿瘤生长与转移性质,使肿瘤侵袭性增加[17]。MUC1表达上调会导致 E-钙muc表达水平的下调,使肿瘤相互间的黏附力下降,促进肿瘤转移的发生[18]。MUC1在胃癌[19]、前列腺癌[20]、乳腺癌[21]、胰腺癌[22]等多种肿瘤组织中均有表达,且表达水平上调与肿瘤的生长、浸润和转移密切相关。MUC1在肿瘤组织中的异常表达,使其成为一种潜在的肿瘤生物学标志物。我们的结果显示PD-L1蛋白与肿瘤大小、淋巴结转移及浸润深度有关,与患者年龄、性别、肿瘤分化程度及TNM分期无关。
表2 胃癌组织中PD-L1和MUC1蛋白表达之间的关系Tab.2 Correlation between PD-L1 and MUC1 expression in gastric carcinoma tissues
本研究结果还显示胃癌组织中PD-L1和MUC1表达呈正相关,说明二者在胃癌发生、发展和侵袭转移过程中可能存在协同作用,但其具体机制尚不清楚,国外有文献报道显示PD-L1和MUC1在急性髓细胞白血病(AML)中存在相关性,研究通过MUC1特异性shRNA或CRISPR/ Cas9基因编辑抑制MUC1-C表达后可导致PD-L1表达的几乎消失,提示MUC1-C是microRNA表达的关键调节因子,而且是促进PD-L1表达的关键机制,可导致AML细胞的免疫抑制特性[23]。Bouillez等研究发现在非小细胞肺癌中PD-L1整合MUC1蛋白进行免疫抑制,MUC1促进肿瘤核因子-κB(NF-κB)信号通道活化,活化的NF-κB促进了PD-L1的表达[24]。但国内在这方面还未见相关报道,我们的研究样本数比较少,可以采取大样本、不同实验方法来进一步验证相关蛋白在癌症形成中的作用。
综上所述,PD-L1和MUC1在胃癌的生物学进展中发挥重要作用,并且二者具有协同作用,联合检测可为其提供重要的参考指标,更有利于判断患者的预后。