解庆范 郭妙莉 陈延民
(泉州师范学院化工与材料学院,泉州 362000)
过去数十年关于Schiff碱的过渡金属配合物的研究一直非常活跃,一个重要的原因是它们在抑菌、抗病毒、消炎和抗肿瘤等方面的药理作用使之具有潜在的应用前景[1-4]。另一方面,过渡金属广泛存在于许多生物酶中,作为酶的活性中心发挥着重要的作用[5-6]。利用简单的有机配体合成新型的配合物,是分子结构设计的重要策略之一,合成的关键在于金属离子和配体的选择以及反应条件[7-8]。Schiff碱具有双齿、三齿和多齿等多种类型,有助于形成单核、双核和多核等各种类型的配合物,在配合物的分子设计和合成中可以发挥更多的想象力。近年来,非贵金属配合物作为抗肿瘤药物的研究取得快速发展[9],研究较多的是铜的配合物[10-11]。事实上,有些锌、镉、钴、镍等的金属配合物也表现出良好的抗肿瘤活性[12-19]。我们分别以Schiff碱邻氨基酚缩5-硝基水杨醛 (H2L1)和邻氨基酚缩水杨醛(H2L2)为第一配体,4,4′-联吡啶为第二配体合成了一种五配位的钴双核配合物[Co2(H2O)2(L1)2(4,4′-bipy)] (1)和一种大平面的双核镍配合物[Ni2(L2)2(4,4′-bipy)] (2),本文主要报导它们的晶体结构和抗癌活性,并分析了它们的光谱特征和热稳定性,对镍配合物应用Gaussian 09程序,采用密度泛函方法 (DFT),在UB3LYP/6-31G(d)水平进行了量化计算。
德国Elmentar Vario EL元素分析仪;美国Nicolet is10型FT-IR红外光谱仪;上海美普达UV-1800PC型紫外-可见分光光度计;德国塞驰STA 409 PC型综合热分析仪;美国Varian CARY/Eclipse型荧光分光光度计;日本理学Rigaku Saturn724 CCD单晶衍射仪。所用试剂均为市售分析纯试剂。
1.2.1 配合物1的合成
将大约10 mmol的邻氨基酚和等量的5-硝基水杨醛置于20 mL无水乙醇中,75℃下水浴加热回流3 h,冷却、过滤,并用无水乙醇洗涤,得到黄色粉末状配体H2L1,真空干燥备用。取0.2 mmol乙酸钴、0.2 mmol H2L1、0.1 mmol 4,4′-联吡啶、6 mL 水、4 mL乙醇和1 mL DMF,置于内衬聚氟乙烯不锈钢自动升压反应釜中,于120℃恒温3 d,得到1的暗红色块状晶体。对C36H28Co2N6O10的元素分析计算值(%):C 52.57,H 3.43,N 10.22;测试值(%):C 52.48,H 3.51,N 10.16。 IR(cm-1):H2L1:1 616s,1 593,1 545s,1 520,1 316vs,1 240,1 201,831,793,743s;1:1 609 vs,1 581,1 527,1 472s,1 440,1 302,1 217,830,815,737s。
1.2.2 配合物2的合成
将10 mmol邻氨基酚与1.2 mL水杨醛溶于20 mL无水乙醇,并加1 mL乙酸,在75℃下水浴加热回流3 h,冷却、过滤,并用无水乙醇洗涤,得到黄色粉末状配体H2L2,真空干燥备用。在5 mL DMF和15 mL乙醇的混合溶剂中,加入0.4 mmol乙酸镍、0.2 mmol 4,4′-联吡啶、0.4 mmol配体 H2L2 和 0.4 mmol乙酸钠,于60℃下加热回流2 h,析出橙色粉末。过滤后用DMF重结晶,滤液静置1周后析出2的橙色棒状单晶。对C36H26N4Ni2O4的元素分析计算值(%):C 62.12,H 3.77,N 8.05;测试值(%):C 62.15,H 3.70,N 8.11。 IR(cm-1):H2L2:1 628vs,1 601,1 548,1 507,1 454,1 321,1 269,1 219,879,824,754vs;2:1 605vs,1 582,1 527,1 481vs,1 457,1 319,1 217,846,813,737。
分别选取 0.40 mm×0.32 mm×0.05 mm(1)和 0.38 mm×0.30 mm×0.22 mm (2)的单晶置于 Rigaku Saturn 724 CCD单晶衍射仪上,用经石墨单色器单色化的Mo Kα 射线(λ=0.071 073 nm),以 ω 扫描方式收集单晶衍射数据用于单晶结构分析。衍射数据和晶胞参数用SAINT程序[20]还原,全部强度数据均经Lp因子校正,并进行了经验吸收校正。晶体结构由直接法解出,对全部非氢原子坐标及其各向异性热参数进行全矩阵最小二乘法修正,有机物上的氢原子由理论加氢法得到,上水分子上的氢原子通过差值图中找出。结构精修分别采用SHELXL-97[21]和Olex2程序包[22]。主要晶体数据列于表1。
CCDC:1440518,1;1432468,2。
表1 配合物的晶体数据Table 1 Crystallographic data for the complexes
续表1
采用MTT法,参照文献[23]方法,考查了配合物对人肝癌细胞HEPG2和人结肠癌细胞SW620的体外增殖抑制作用,以同一药物不同浓度对抑制率作图,根据线回归方程求出半数抑制浓度IC50。
2.1.1 配合物1的晶体结构
配合物1的分子结构见图1,主要键长和键角列于表2。1属三斜晶系P1空间群,它由2个中心离子 Co2+、2 个 Schiff碱配体 L12-、1 个 4,4′-联吡啶和2个配位水组成,是一种中心对称的双核配合物。其中,中心离子的配位环境呈现四方锥几何构型[CoN2O3]。Co2+的这种配位构型在许多配合物中都曾出现过,这主要源自该离子的d7电子构型。Schiff碱L12-以三齿螯合配位,它提供的2个氧原子和1个亚胺基的氮原子与联吡啶的1个氮原子构成锥底,Co2+偏离锥底平面约0.021 nm,配位水位于锥顶,Co-O 键长为 0.195 8(2)~0.207 8(2)nm,Co-N 键长 0.205 1(2)~0.209 8(3)nm, 键 角为 81.30(9)°~171.43(10)°。 配体 H2L1 配位时酚羟基脱除质子,C1-O1 和 C13-O2 键长分别为 0.135 3(4)和 0.129 5(4)nm,比正常的C-O单键的略短,说明酚羟基氧原子与苯环存在共轭作用。借助Diamond 3.2计算出L12-的 2 个苯环(C1~C6 和 C8~C13)的二面角为 11°,4,4′-联吡啶的整个分子呈现共平面,其吡啶环(C14~C18,N3)与 L12-的硝基苯酚片段 (N1,C8~C13,O2)的二面角为 73.5°,吡啶环与苯酚片段(O1,C1~C6)的二面角是 65°。
图1 配合物1的分子结构Fig.1 Molecular structure of 1
配位水的氢原子H5A和H5B分别与另外2个相邻的配合物基元的酚羟基氧原子O1形成强烈的氢键,O5-H5A…O1ii和O5-H5B…O1iii氢键键长分别为0.238 nm和0.189 nm,键角111°和156°。由于氢键的作用,配合物联接形成梯形层状超分子(图2),而层与层之间C7-H7与硝基的氧原子O4之间存在弱的氢键(0.312 9 nm)。这些氢键共同稳定了配合物的晶体结构。
表2 配合物1的主要键长和键角Table 2 Selected bond lengths(nm)and bond angles(°)for the complex 1
表3 配合物1中的氢键参数Table 3 Parameters of hydrogen bonds in the complex 1
图2 配合物1中的氢键Fig.2 Hydrogen bands in the complex 1
2.1.2 配合物2的晶体结构
配合物2也是一种双核结构,属于三方晶系,R3空间群,它由2个中心离子Ni2+、1个4,4′-联吡啶和2个Schiff碱L22-组成(图3),主要键长和键角列于表4。在2中H2L2脱除羟基质子,同样以-2价配体形式采用三齿螯合方式与Niギ配位,Niギ的配位数为4,处于平面四边形的配位环境,键角为82.50(3)°~177.90(3)°。 整个分子的所有原子几乎完全共平面,呈现巨大的平面结构,2个苯酚片段(O1,C1~C6 和 O2,C13~C8)的二面角为 1.8°,Schiff碱L22-的分子平面与吡啶环(N2,C14~C18)的二面角为3.9°。由此可见,2的分子内存在很强共轭作用,从而导致各种化学键均比一般的Schiff碱镍配合物的化学键要短。Ni-O 键长为 0.183 6(6)~0.179 3(6)nm,Ni-N 键长为 0.192 9(8)~0.194 9(5)nm。 键长也明显比1中化学键Co-O或Co-N短,亚胺基C=N键长0.109 3(12)nm 明显比 2 中相应的键(0.128 7(4)nm)短得多。相邻的配合物分子相互平行,吡啶环之间存在较强的π-π相互作用,质心间距0.335 8 nm(图4)。由于分子间的π-π相互作用,配合物堆积形成一种一维超分子链。
图3 配合物2的分子结构Fig.3 Molecular structure of the complex 2
图4 配合物2晶体中的芳环π-π堆积作用Fig.4 π-π stacking interactions in the crystal of complex 2
表4 配合物2的主要键长、键角和扭转角Table 4 Selected bond lengths(nm),bond angles and torsion angles(°)for the complex 2
以DMF为溶剂,将配合物配制成浓度大约为5 μmol·L-1的溶液,并以DMF为参比液,用 UV-1800PC型紫外-可见分光光度计在200~600 nm范围扫描,结果见图5。H2L1在294、364和434 nm处的吸收分别来自配体的π→π*电子跃迁、n→π*电子跃迁和分子内的电荷转移跃迁(ILCT);与Coギ形成配合物1后π→π*电子跃迁蓝移 (Δλ=24 nm)至270 nm,n→π*电子跃迁则消失,而ILCT蓝移(Δλ=20 nm)至414 nm处,发生蓝移的原因可能是配体的共平面程度减小,共轭作用减弱。H2L2的电子吸收特征与H2L1存在较大差别,π→π*电子跃迁出现在264 nm处,而348 nm处极强的ILCT吸收带掩盖了n→π*电子跃迁。形成配合物2后,配体的共平面程度增大,π→π*电子跃迁红移至270 nm;与H2L2比较可见,ILCT吸收带消失,而在432 nm处出现了1个新的吸收带,根据量化计算结果,可以将它指认为配体H2L2到配体4,4′-bipy的电荷转移跃迁(LLCT)。
图5 配合物的紫外-可见光谱Fig.5 UV-Vis spectra of the complexes
在N2气氛中,以10℃·min-1升温速率观察了配合物的热稳定性(图6)。1和2的热分解行为均分2阶段完成,1在127~160℃失去2个配位水,失重4.84%(计算值4.38%);305℃开始配合物骨架崩塌,有机物快速分解并挥发,在305~339℃快速失重52.41%,之后基本恒重,至900℃残重39.37%。2在276~333℃失重22.02%, 相当于失去1个4,4′-联吡啶(计算值22.71%),第二阶段在398~419℃失重33.11%,至900℃残重40.02%。
图6 配合物的热重分析图Fig.6 TGA curves of the complexes
在无菌的条件下,取对数生长期人结肠癌细胞SW620和人肝癌细胞HEPG细胞,2.5 g·L-1胰酶消化,调整细胞密度为2.5×104mL-1,培养时间为24 h,用全自动酶标仪在570 nm处测定它的吸光度值(OD值)并计算细胞的增殖抑制率。根据不同浓度对肿瘤细胞生长抑制率作图(图7和8),结果表明,配体H2L1和H2L2均不具有抗肿瘤活性;而配合物1和2均表现出一定的抗肿瘤活性,配合物的抗肿瘤活性可能来自金属离子配位的不饱和性和双核结构以及大型的平面结构,这些因素均有利于配合物分子与DNA发生作用。相比较而言,镍配合物的活性略高于钴配合物,1和2对人结肠癌细胞SW620的半数抑制浓度 IC50分别为 13.75和 9.96 μg·mL-1,对人肝癌细胞HEPG2的IC50分别为18.75和11.51 μg·mL-1。
图7 配合物对SW620的抑制作用Fig.7 Inhibition effects of the complexes on cell SW620
图8 配合物对HEPG2的抑制作用Fig.8 Inhibition effects of the complexes on cell HEPG2
用Gaussian 09程序包[24],采用密度泛函理论(DFT)[25],在 B3LYP水平对C,H,O,N原子用 6-31G(d)基组,Ni原子用lanl2dz基组,将分子分为吡啶C5N、Schiff碱C13NO2和金属原子Ni三部分,计算了分子的碎片对前线分子轨道的贡献,同时计算了配合物2的Wiberg键级,结果列于表5和6。
由表5可见,在最高占据分子轨道HOMO中,电子云主要分布在Schiff碱配体C13NO2(86.6%),而在最低空轨道LUMO中电子云主要集中在吡啶配体(96.2%),说明电子由HOMO向LUMO跃迁时,主要发生的是电子由Schiff碱配体向吡啶配体的电荷转移跃迁,即LLCT电子跃迁(最大吸收波长计算值为483 nm,实验值为432 nm)。
由于共轭作用,芳环上的电子云均一化,导致C-C/N的平均键级(1.367)小于1.500,而酚羟基C1-O1,C13-O2和C7-C8的键级分别为1.141、1.204和1.218,大于单键键级。 Ni1-O1、Ni1-O2、Ni1-N1、Ni1-N2的键级分别为 0.548、0.512、0.496和 0.367,表明配位能力酚羟基>亚胺基>吡啶基,热分解时Ni1-N2将优先断裂,这从理论上证明了2的热分解第一阶段的失重属于脱除4,4′-联吡啶行为。
表5 配合物2的前线分子轨道能量和分子碎片对该分子轨道贡献Table 5 Frontier molecular orbital energy and molecular fragment contribution to the molecular orbitals of complex 2
表6 配合物2的Wiberg键级Table 6 Wiberg bond order of the complex 2
[1]Rollas S,KüçükgüzclG.Molecules,2007,12:1910-1939
[2]SUN Xiao-Hong(孙晓红),BAI Yan(白燕),LIU Yua-Fa(刘源发),et al.Acta Chim.Sinica(化学学报),2008,68(8):788-792
[3]Suvarapu L N,Seo Y K,Baek S O,et al.Eur.J.Chem.,2012,9(3):1288-1304
[4]Hu G Q,Hou L L,Xie S Q,et al.Chin.J.Chem.,2008,26(6):1145-1149
[5]LIANG Fang-Zhen(梁 芳 珍 ),DU Ming(杜 鸣 ),REN Jian-Cheng(任 建 成).Chinese J.Inorg.Chem.(无 机 化 学 学 报),1999,15(3):393-396
[6]Garbutcheon-singh K B,Grant M P,Harper B P,et al.Curr.Top.Med.Chem.,2011,11:521-542
[7]Huang Y Q,Chen H Y,Li Z G,et al.Inorg.Chim.Acta,2017,466:71-77
[8]Huang Y Q,Wan Y,Chen H Y,et al.New J.Chem.,2016,40(9):7587-7595
[9]Jungwirth U,Kowol C R,Keppler B K,et al.Antioxid.Redox Signaling,2011,15(4):1085-1127
[10]Li X,Fang C,Zong Z,et al.Inorg.Chim.Acta,2015,432:198-207
[11]Zhang Y H,Zhang L,Liu L,et al.Inorg.Chim.Acta,2010,363(2):289-293
[12]Dai C H,Mao F L.J.Struct.Chem.,2013,54(3):624-629
[13]Chen C L,Zhu X F,Li M X,et al.Russ.J.Coord.Chem.,2011,37(6):435-438
[14]Akbayeva D N,Gonsalvi L,Oberhauser W,et al.Chem.Commun.,2003:264-265
[15]Chellaian J D,Johnson J.Spectrochim.Acta A,2014,127:396-404
[16]Wang R M,He N P,Song P F,et al.Pure Appl.Chem.,2009,81(12):2397-2405
[17]Adhikary J,Kundu P,Dasgupta S,et al.Polyhedron,2015,101:93-102
[18]MIN Rui(闵睿),FAN Xiao-Rui(范晓瑞),ZHOU Pan(周攀),et al.Chinese J.Inorg.Chem.(无机化学学报),2014,30(8):1771-1777
[19]Kareem A,Zafar H,Sherwani A,et al.J.Mol.Struct.,2014,1075:17-25
[20]Bruker AXS Inc.,SAINT Ver.8.34A,Madison,WI,USA,2013.
[21]Sheldrick G M.Acta Crystallogr.Sect.A:Found.Crystallogr.,2008,A64:112-122
[22]Dolomanov O V,Bourhis L J,Gildea R J,et al.J.Appl.Cryst.,2009,42:339-341
[23]GAO Ping-Zhang(高平章),ZHENG Min-Min(郑敏敏),CHEN Ya-Xin(陈雅心),et al.Chinese J.Inorg.Chem.(无机化学学报),2016,32(9):1572-1578
[24]Frisch M J,Trucks G W,Schlegel H B,et al.Gaussian 09,Revision A.02,Gaussian Inc.,Wallingford CT,2009.
[25]Dreizler R M,Gross E U K.Density Functional Theory.Heidelberg:Springer-Verlag,1990.