赵江平 牛 忻,2 杨 群 李淑娟 韦凤爽 郝丽莉 刘江云*
1.苏州大学医学部药学院,江苏 苏州 215123;2.菏泽市食品药品检验检测研究院中药科,山东 菏泽 274000
HPLC法同时测定水栀子中栀子苷和西红花苷-I的含量
赵江平1牛 忻1,2杨 群1李淑娟1韦凤爽1郝丽莉1刘江云1*
1.苏州大学医学部药学院,江苏 苏州 215123;2.菏泽市食品药品检验检测研究院中药科,山东 菏泽 274000
目的:建立水栀子中两种主要组分的双波长同时含量测定方法。方法:采用Cosmosil 5C18-AR-Ⅱ 色谱柱(250mm × 4.6mm,5μm);流动相为甲醇- 0.1% 乙酸溶液梯度洗脱;流速1.0mL/min;检测波长238nm(1)和440nm(2),测定水栀子中栀子苷(1)、西红花苷-I(2)的含量。结果:两种组分色谱分离良好,栀子苷、西红花苷-I的线性范围分别为50.16~501.6μg/mL(r=0.9999)、10.13~101.3μg/mL(r=0.9997),加样回收率分别为97.77%、97.39%。结论:该测定方法快速、准确,可为水栀子的质量分析方法提供参考。
水栀子;HPLC;栀子苷;西红花苷-I
栀子为茜草科植物栀子(GardeniajasminoidesEllis)的干燥成熟果实,广泛分布于长江以南的江西、广西、云南、浙江、福建、台湾等地。栀子是我国药食两用的传统中药,具有泻火除烦、清热利湿、凉血解毒等功效[1],现已用于清开灵注射液、牛黄上清丸、龙胆泻肝丸、清火栀麦片等多种中成药。研究表明,栀子主要含有环烯醚萜、西红花苷、绿原酸酯、果胶、油脂等类成分[2]。栀子苷是栀子清热解毒的主要有效组分之一,其可通过和某些氨基酸结合转化为食用色素栀子蓝和栀子红。栀子中的西红花苷类成分(栀子黄)与西红花中的藏红花素组分的结构和主成分组成均类同,具有抗氧化损伤、治疗或预防心脑血管疾病及癌症等药理作用,受到国际关注。除药用外,栀子黄、栀子蓝均为我国习用的天然食品添加剂[3],并已应用到日本、美国等国际市场。
目前市售的商品栀子有栀子(又称山栀子;黄栀子)与水栀子之分,其中水栀子为栀子的变型大花栀子(Gardeniajasminoidesvar.radicans)或长果桅子(Gardeniajasminoidesf.longicarpa),该品种树形高大,结果率高,果实长而大,因而栽培较广泛。传统习惯认为入药用山栀子,入染料用水栀子[4]。随着水栀子栽培面积的扩大和应用,其与栀子相比较的化学成分[5-7]、药理作用[8]研究受到关注,但二者之间成分异同、功效是否相似尚不明确[9]。课题组在前期栀子应用基础研究过程中[10-11],进一步调研发现栀子黄在工业生产中常选用水栀子。鉴于水栀子与栀子的成分定量分析报道少见,笔者参考相关研究,以栀子苷、西红花苷-I为指标成分,采用HPLC双波长法测定其含量,并与栀子进行对比分析,为水栀子的质量分析和后续深入开发应用提供科学参考。
1.1 仪器 Agilent 1260高效液相色谱系统(包括1260 Infinity VL 型四元泵,1260 DAD VL 检测器,美国Agilent 公司);ODS色谱柱(5C18- PAQ,4.6×250 mm,日本Cosmosil公司);MP2002电子天平(上海舜宇恒平科学仪器有限公司);ME215S电子天平(德国Starorious公司);SB-5200DTDN超声波清洗机(宁波新芝生物科技股份有限公司)。
1.2 材料 水栀子鲜果(GR161001,4℃冰箱冷藏,产地四川大竹县)由四川广田嘉禾农业开发公司提供;栀子(GJ160603,产地江西)购自苏州市天灵中药饮片有限公司,经苏州大学药学院陆叶博士鉴定依次为茜草科水栀子Gardeniajasminoidesvar.radicans(Thunb.) Makino、栀子GardeniajasminoidesEllis的果实。水栀子干品,采用水栀子鲜果在80℃烘箱干燥24h获得。西红花苷-I对照品为本实验室自制(按液相相对峰面积计,HPLC纯度为90.6%)[10];栀子苷对照品(中国食品药品检定研究院)。乙腈(色谱纯,瑞士Oceanpak公司);纯净水(杭州娃哈哈公司);甲醇、冰乙酸等其他试剂均为分析纯(国药集团化学试剂有限公司)。
2.1 对照品溶液的制备 精密称取栀子苷对照品50.16mg、西红花苷-I对照品10.13mg,置同一50mL棕色容量瓶中,用甲醇超声,定容,作为对照品储备液;精密量取对照品储备液0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0mL于10mL棕色容量瓶中,用甲醇定容,制成系列对照品混标溶液。
2.2 供试品溶液的制备 参照中国药典2015版栀子含测项进行[1]。精密称取样品粉末约0.1g,置25mL容量瓶中,加20mL甲醇超声(功率250 W,频率40kHz)提取30min,放冷至室温后定容,经0.45μm滤膜滤过,即得。
2.3 色谱条件[5-6]色谱柱:Cosmosil 5C18-AR-Ⅱ 色谱柱(250mm × 4.6mm,i.d. 5μm);以0.1%乙酸溶液(A)-乙腈(B)为流动相梯度洗脱(0~4min,20% B;4~40min,20%~90% B);流速1.0mL/min;柱温30℃;检测波长238nm(栀子苷)、440nm(西红花苷-I);进样量20μL。在该色谱条件下,对照品及供试品中的各色谱峰分离良好,分离度大于1.5。如图1所示。
2.4 线性关系考察 取对照品混标溶液,按“2.3”项下色谱条件进行测定。以对照品浓度为横坐标,以峰面积值为纵坐标,绘制标准曲线,计算回归方程。得到栀子苷的线性方程为y=2964.8x+156.35,r=0.9999,线性范围50.16~501.6μg/mL;西红花苷-I的线性方程为y=5659.8x+44.591,r=0.9997,线性范围10.13~101.3 μg/mL。结果表明,各成分在各自浓度范围内线性关系良好。
2.5 精密度考察 精密吸取水栀子供试品溶液20μL,重复进样6次,以峰面积指标计算RSD(n=6),考察方法的精密度。结果测得成分1和2的RSD分别为1.68%和1.02%,表明仪器的精密度符合分析要求。
2.6 重复性考察 按“2.2”项下方法平行制备6份水栀子供试品溶液,按“2.3”项色谱条件测定2种成分的含量。以含量为指标计算RSD,考察方法的重复性。结果测得成分1和2的含量依次为39.23、9.801mg/g,RSD依次为1.20%、1.13%,表明本法重复性符合分析要求。
2.7 稳定性考察 取水栀子供试品溶液,分别于0、4、8、12、16和24h进样分析,测定2种成分峰面积,以峰面积值为指标计算RSD(n=6)。结果测得成分1和2的RSD依次为3.01%、4.56%,表明本法供试品24h内稳定性良好。
2.8 加样回收实验 精密称取已知含量的水栀子样品50mg,共称取6份,分别加入精密对照品混合溶液(其中含对照品1和2依次为1.962、0.4742mg/mL)1mL,按照2.2项下供试品溶液的制备方法制备。成分1和2的平均回收率分别为97.77%、97.39%,详见表1。
表1 加样回收率实验结果 (n=6)
2.9 样品测定 按“2.2”项下制备供试品溶液,按“2.3”项下色谱条件进行测定,计算供试品中2个成分的含量(按干燥品计)。照中国药典2015年版水分测定法第二法,检测供试品中水分含量。结果见表2。
表2 样品测定结果 (n=3)
栀子果实中富含栀子苷、西红花苷、绿原酸酯、果胶、油脂等多种营养物质,相关成分分析报道较多,但水栀子的含量测定报道少见。本文参考前期研究相关文献[1,10-11],采用双波长法同时定量分析栀子苷和西红花苷-I含量,方法学研究结果表明该法灵敏度高、简便快捷,可为水栀子的质量分析方法提供参考。
水栀子传统习用为染色用品,其主要有效成分与栀子相似[5-7],但二者主成分的具体含量差异尚不明确,目前中国药典仅收载栀子为中药材正品[1]。本研究表明,本批次样品中水栀子与栀子的栀子苷含量差异不大,而西红花苷-I含量有较大差异,推测主要与西红花苷热稳定性差、容易降解有关,这与文献报道的栀子炮制过程中西红花苷含量明显降低现象相一致[12-13]。研究结果表明,水栀子的主成分与栀子相似,在栀子药材加工、栀子黄制备过程中应注意防止高温高热引起的西红花苷类成分降解。水栀子的药理作用与栀子是否相似,应在测定主要有效成分(栀子苷;西红花苷)含量基础上进行比较研究。
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Simultaneous Determination of Geniposide and Crocin-Ⅰ in the Fruits of Gardenia jasminoides var. radicans by HPLC
ZHAO Jiangping1NIU Xin1,2YANG Qun1LI Shujuan1WEI Fengshuang1HAO Lili1LIU Jiangyun1*
1. College of Pharmaceutical Sciences, SooChow University, Suzhou 215123, China;2. Heze City Food and Drug Inspection and Research Institute, Heze 274000, China
Objective To establish an dual-wavelength HPLC method for the simultaneous determination of two compounds in the fruits ofGardeniajasminoidesvar.radicans. Methods The chromatographic separation was performed on a Cosmosil - 5C18-AR-Ⅱ column (250mm × 4.6mm, 5μm) with a gradient elution of methanol and 0.1% acetic acid solution, at a flow rate of 1.0mL/min, and detected at both 238nm (for geniposide, 1) and 440nm (for crocin-Ⅰ, 2). Results The two compounds were separated with satisfaction, with linearity ranges between 50.16~501.6μg/mL (r=0.9999,1) and 10.13~101.3μg/mL (r=0.9997, 2), and average recovery rates to be 97.77% and 97.39%, respectively. Conclusion The method is accurate and selective, which could be applied for the quality analysis of the fruits ofGardeniagenus.
Gardeniajasminoidesvar.radicans; HPLC; Geniposide;Crocin-Ⅰ
R285
A
1007-8517(2017)20-0035-04
全国药学专业学位研究生优秀教学案例项目(2016工业药学);苏州大学医学部学生课外科研项目(2016-29)。
赵江平(1986-),男,汉族,硕士研究生在读,研究方向为天然产物研究与开发。E-mail:178309373@qq.com
刘江云(1972-),男,汉族,博士研究生,副教授,研究方向为天然产物研究与开发。E-mail:liujiangyun@suda.edu.cn
2017-09-02 编辑:穆丽华)