王荣霞黄 敏陈傅晓谭 围
(1海南省海洋与渔业科学院,海南海口570203;2海南省热带海水养殖技术重点实验室,海南省热带海水养殖工程技术研究中心,海南海口570203;3南海生物资源开发与利用协同创新中心,广东广州510275)
棒叶蕨藻变种对重金属Cu2+、Pb2+和Cd2+胁迫的生理响应
王荣霞1,黄 敏1,2,陈傅晓1,3,谭 围1,3
(1海南省海洋与渔业科学院,海南海口570203;2海南省热带海水养殖技术重点实验室,海南省热带海水养殖工程技术研究中心,海南海口570203;3南海生物资源开发与利用协同创新中心,广东广州510275)
为研究棒叶蕨藻变种(Caulerpa sertularoides f.Longipes)对重金属离子胁迫的生理响应,通过恒温光照培养方法探讨棒叶蕨藻变种在重金属铜离子(Cu2+)、铅离子(Pb2+)、镉离子(Cd2+)的胁迫下对其日特定生长率(SGR)、可溶性蛋白含量、叶绿素a(Chl-a)、谷胱甘肽转移酶(GST)和超氧化物歧化酶(SOD)等指标的影响。结果显示,3种重金属离子的胁迫会影响藻体的正常生长,SGR均出现负增长,可溶性蛋白和Chl-a含量随处理浓度的增大而呈下降趋势,其中Cu2+的影响尤为明显;重金属对藻体生长的抑制能力大小为Cu2+>Pb2+>Cd2+;3种重金属离子对SOD和GST影响均表现为先升后降趋势,除了Cd2+对SOD影响峰值出现在5.00 mg/L之外,其他处理组的峰值均出现在质量浓度为2.50mg/L时。研究结果可为棒叶蕨藻变种的重金属胁迫机理研究提供参考。
棒叶蕨藻变种;重金属;胁迫;生理响应
海藻与植物一样,体内产生的活性氧与其清除系统保持着动态的平衡,当环境中存在逆境胁迫时,抗氧化系统会增强,从而达到对抗逆境的作用[1]。重金属对水体的污染日渐严重,如果重金属胁迫长期存在,植物细胞会产生大量自由基损伤细胞膜中不饱和脂肪酸和蛋白质,使细胞膜结构松散,严重时会影响细胞膜的结构和功能,对藻体产生巨大伤害甚至死亡[2-4]。国内有关海藻重金属胁迫下抗氧化系统的响应有少量的报道研究,如:钝顶螺旋藻在CdCl2胁迫下,超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化物酶(POD)活性随着浓度增加呈现出先上升后下降的规律[5];龙须菜随着Cd2+浓度的升高,其生长受到抑制,藻红素、叶绿素a、可溶性蛋白均呈下降趋势[6]。
棒叶蕨藻变种 (Caulerpa sertularoides f.Longipes)属于绿藻门,绿藻纲,蕨藻目,蕨藻科,蕨藻属。对棒叶蕨藻变种的研究主要集中在养殖废水中的氨氮、硝酸盐氮的吸收[7],以及南美白对虾[8]和番红砗磲[9]生态养殖模式构建等方面,而其对重金属离子胁迫的生理响应等方面的文献报道甚少。本研究着重针对棒叶蕨藻变种对重金属Cu2+、Pb2+、Cd2+胁迫的生理响应,旨在深入探讨重金属对大型海藻藻体内的生理生化指征的影响,为重金属胁迫机理研究以及大型海藻进行养殖废水处理、改善海区环境研究提供应用参考。
1.1 材料及处理
棒叶蕨藻变种取自海南省三沙市西沙海域的珊瑚礁盘上,先在室外大量扩繁,再在智能人工气候培养箱(赛福PRX-350B)中暂养。培养条件:温度25℃,光照度为8 000~9 000 Lx,盐度31。
1.2 方法
设置3组培养液:Cu2+(A组)、Pb2+(B组)、Cd2+(C组)。每组培养液设计一个空白对照(0.00 mg/L)和 5个浓度梯度,分别为 0.05、0.50、2.50、5.00和10.00 mg/L。空白对照组分别标记为A0、B0和C0,0.05 mg/L实验组标记分别为A1、B1和C1,其他组别以此类推。实验用1 L烧杯装800 mL培养液,在每个烧杯中接种3 g健康藻体,每组金属离子培养液各浓度梯度均设平行3组,培养6 d,每天对培养的棒叶蕨藻变种进行观察,并纪录表征变化情况。在第6天分别测定日特定生长率(SGR)、可溶性蛋白含量、谷胱甘肽-s转移酶(GST)、超氧化物歧化酶(SOD)活性等指标。
特定生长率(SGR)计算公式:
FSGR=[(Wt/W0)1/t-1]×100%
式中:W0—初始时刻棒叶蕨藻变种的鲜重,g;Wt—t时刻棒叶蕨藻变种的鲜重,g;t—两次测定间隔时间,d;FSGR—特定生长率,%/d。
叶绿素a测定参照刘涛等[10]方法,可溶性蛋白、谷胱甘肽-s转移酶(GST)、超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定分别采用南京建成生物公司购买的可溶性蛋白、谷胱甘肽-s转移酶(GST)、超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒测定。
1.3 数据处理
用Excel软件进行数据处理。SGR等指标在系列浓度重金属下的变化趋势采用线性回归分析(Linear Regression Analysis)方法进行分析。
2.1 藻体的表征变化
A0、B0和C0组连续培养6 d,藻体正常。A2组和A3组在培养的第2天藻体棒叶开始出现白化,而A4和A5组在培养的第2天藻体棒叶、假根出现白化和变细。至第6天,A1和A2组棒叶、假根白化、变软;A3、A4和A5组藻体则出现部分白化。在第3天,B3、B4和B5组藻体棒叶、假根开始出现少量白化现象;至第6天,B3、B4和B5组藻体匍匐枝、直立枝、棒叶、假根均出现了白化、脱落,B5组部分藻体出现溃烂,B1和B2组藻体的棒叶、假根开始出现白化和变细;C2、C3、C4和C5组的藻体匍匐枝出现白化、变细,直立枝、棒叶、假根出现白化、脱落。至第6天,C4和C5组的藻体匍匐枝、直立枝、棒叶、假根均出现严重白化、脱落现象;至第6天,C1和C2组藻体的棒叶、假根开始出现白化、变软。
2.2 日特定生长率的变化
图1显示了藻体在培养第6天的FSGR值,其与Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度均呈现出负相关性(R2分别为0.917、0.980、0.978),表明藻体的FSGR随着Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度增加而下降,出现了负增长,其中Cu2+的下降速率(k=-1.775)大于Pb2+(k=-1.040)、Cd2+(k=-0.942)。由图1可以看出,A1组(FSGR=-3.13%/d)在培养的第6天对藻体的生长起到非常明显的抑制作用,而B1组(FSGR=-0.33%/d)和C1组(FSGR=-0.39%/d)对藻体的抑制作用远小于A1组。
图1 SGR随Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度变化情况Fig.1 Changes of SGR according to Cu2+,Pb2+and Cd2+concentrations
2.3 可溶性蛋白含量的变化
藻体的可溶性蛋白与Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度均呈现出负相关性(R2分别为0.905,0.943,0.976),表明藻体的可溶性蛋白含量随着Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度的增大而呈下降趋势(图2)。
图2 不同Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度下可溶性蛋白含量变化Fig.2 Changes of soluble proteins according to different Cu2+,Pb2+and Cd2+concentrations
其中,A组的下降速率(k=-0.619)高于B组(k=-0.588)和C组(k=-0.550)。在实验的第6天,A0、B0和C0组的可溶性蛋白含量分别为3.30、3.06和3.14 mg/g;A1、B1和C1组可溶性蛋白含量仅为A0、B0和C0组的59.1%、91.2%和89.6%;而A5、B5和C5组在实验的第6天分别降至0.11、0.22和0.32 mg/g。
2.4 叶绿素a含量的变化
图3表明,Cu2+、Pb2+、Cd2+对藻体Chl-a含量的影响与可溶性蛋白的相似,藻体Chl-a的含量随着Cu2+、Pb2+、Cd2+处理浓度的增大而呈下降趋势,其中A组的下降最为明显,B组次之。实验第6天,A0、B0和C0组的Chl-a含量分别为0.53、0.52和0.56 mg/g,是A3组的6.2倍、B3和C3组的2倍。
图3 不同Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度下Chl-a的含量变化Fig.3 Changes of chlorophyll-a according to different Cu2+2+,Pb2+and Cd2+concentrations
2.5 超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响
Cu2+、Pb2+、Cd2+对藻体SOD活性的影响随着处理浓度的增加呈现出先升后降的趋势。从图4中可以发现,各处理组的SOD值均高于空白对照组(A0、B0和 C0),说明达到0.05 mg/L以上的Cu2+、Pb2+、Cd2+对藻体均具有胁迫作用。
实验第6天,当A组的浓度≤2.50 mg/L时,SOD与培养液中Cu2+的浓度呈正相关;在浓度2.50 mg/L时 SOD值达到峰值(195.54 U/mg prot),为 A0组的 4倍;浓度>2.50 mg/L时,SOD值有所下降。实验第6天,B0组的SOD值为37.89 U/mg prot,SOD随着Pb2+浓度的增加而呈现先上升后下降的趋势;B3组的SOD值达到峰值(111.24 U/mg prot),为B0组的2.9倍;C组与A和B组不同,其峰值(93.57 U/mg prot)出现在C4组,是C0的2.5倍。
图4 不同Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度下SOD的含量变化Fig.4 Changes of SOD concentration according to different Cu2+,Pb2+and Cd2+concentrations
2.6 谷胱甘肽转移酶(GST)活性的影响
Cu2+、Pb2+、Cd2+对藻体GST活性的影响随着处理浓度的增加呈现出先升后降的趋势。从图5可以发现,所有的浓度处理组的GST值均高于空白对照组(A0、B0和C0),表明大于0.05 mg/L的3种重金属离子对藻体均具有胁迫作用。
图5 不同Cu2+、Pb2+、Cd2+质量浓度下GST的含量变化Fig.5 Changes of GST concentration according to Cu2+,Pb2+and Cd2+concentrations
实验第6天,A0组GST为15.11U/mg prot,当Cu2+的浓度≤2.50mg/L时,GST与培养液中Cu2+的浓度呈正相关,峰值(104.56 U/mg prot)出现在A3组,是A0组的6.9倍;浓度>2.50 mg/L时,GST值虽有所下降,但仍高于较低浓度组。实验第6天,GST随着Pb2+浓度的增加而呈现先上升后下降的趋势,B3组的 GST达到峰值(100.76 U/mg prot),为 B0组的 9倍。实验第6天,C0组的GST为10.98U/mg prot,当Cd2+的浓度≤2.50 mg/L时,GST与Cd2+的浓度呈正相关性,C3组的 GST达到所有实验组的峰值(158.33 U/mg prot),为C0组的14倍。
3.1 对藻体生长的影响
棒叶蕨藻变种是一种适应能力非常强的藻类,其生长速度较快,具有吸收养殖废水中氨氮和硝酸盐氮的能力[7]。研究表明,重金属能够直接或间接作用于生物体DNA,会引起海洋生物的遗传物质发生突变,引起生长缓慢、异常发展,降低胚胎、幼体及成体的存活率,通过敏感种的灭绝,导致生态退化,对生态系统构成直接和间接的威胁[11-13]。本实验结果显示,Cu2+、Pb2+、Cd2+的胁迫会影响藻体的正常生长。在培养第6天,藻体均出现不同程度的白化和脱落现象,SGR出现负增长,Cu2+、Pb2+、Cd2+浓度越大对藻体生长的抑制越大,且Cu2+的毒性大于Pb2+和Cd2+,表明重金属对藻体生长的抑制能力大小依次为Cu2+>Pb2+>Cd2+。
3.2 对藻体生化特征的影响
植物在受到重金属污染时,细胞膜的通透性会改变,对叶绿体、线粒体、细胞核等亚显微结构有一定程度的破坏[14]。大型海藻是地球重要的生产者之一,光合色素和捕光色素蛋白种类繁多,其中大多数藻类光能传递的顺序为类胡萝卜素→Chl-b→Chl-a。Chl-a的含量能代表海藻的生产力。重金属的污染会破坏叶绿体膜系统,过量的重金属甚至会破坏叶绿体的结构,重金属的存在一定程度上阻碍了植物对其他营养元素的吸收,阻断了营养元素的运输,影响了叶绿素的正常合成[14]。本实验中,随着Cu2+、Pb2+、Cd2+浓度的增长,Chl-a含量呈下降趋势,A组下降尤为明显。
可溶性蛋白是植物的渗透调节剂之一,是植物适应环境、增强抗逆性的基础[15]。研究发现,低浓度的Pb2+对细基江蓠可溶性蛋白的影响不显著,但高浓度(大于5.00 mg/L)的Pb2+存在显著的影响[16]。本实验中,随着Cu2+、Pb2+、Cd2+浓度的增长,可溶性蛋白含量越来越低,说明浓度越高,藻体对环境的胁迫响应越明显,其中A组的可溶性蛋白含量下降比B、C组明显。
实验结果表明,藻体对重金属 Cu2+、Pb2+、Cd2+毒害的生理响应机理是随着重金属离子浓度的增加,Chl-a和可溶性蛋白含量逐渐下降,这可能是由于重金属离子影响了藻体叶绿素的合成,或者直接破坏了叶绿体的结构,加剧影响藻体的光合作用。随着重金属离子浓度和处理时间的增加,重金属离子与-SH基结合导致蛋白变形,也可能是重金属取代了酶蛋白的活性中心,影响了酶的活性,导致蛋白质合成受阻。因此,可溶性蛋白随着实验组浓度的增加而迅速下降,抗氧化系统的平衡随之被打破,相应的抗氧化酶含量也出现变化。
3.3 对藻体抗氧化系统的影响
超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽转移酶(GST)是植物抗氧化系统的两种关键酶。藻体内SOD和GST含量的增加表明了藻体对重金属Cu2+、Pb2+、Cd2+的胁迫做出了相应的生理响应,增强了藻体对逆境的耐受力。
SOD是一种酸性蛋白,是清除活性氧反应过程中第一个发挥作用的抗氧化酶,它能催化超氧阴离子自由基发生歧化反应,生成O2和H2O,避免由O-2生成破坏力更强大的羟自由基[17]。本实验结果显示,3种重金属离子对SOD影响的变化趋势相似,均为先升后降。A、B组以2.50 mg/L为界限,浓度≤2.50 mg/L时SOD呈现正相关,浓度>2.50 mg/L时为负相关(C组SOD影响峰值则出现在C4组)。这是因为Cu2+、Pb2+、Cd2+能激发棒叶蕨藻变种自身的抗逆境体系,诱导SOD活性增加,但这种应激的调节能力是相对有限的,当胁迫强度增强至某一阈值时,SOD活力就出现了下降。实验还发现,SOD对 Cu2+的响应比 Pb2+和Cd2+要灵敏,A3组中Cu2+的SOD含量分别为B3、C3组的1.75倍和2.5倍,出现这种情况可能与藻体中金属结合蛋白 Cu/Zn-SOD有一定的关系[18]。
GST是动植物重要的解毒酶,其分布广泛且功能多样,主要参与外源性有毒物质的解毒过程[19]。实验中,GST的变化与A、B和C组SOD变化相似,以2.50 mg/L为界,浓度≤2.50 mg/L时GST呈正相关,浓度>2.50 mg/L的GST呈负相关。这说明在浓度较低时,藻体在较低浓度的Cu2+、Pb2+、Cd2+外源有毒物质的胁迫下,能增强体内的GST活性来缓解有毒物质的毒害作用。但随着有毒物质浓度的增大,GST的活性也随之降低,说明GST对重金属Cu2+、Pb2+、Cd2+的耐受力也是相对有限的。GST可以调控谷胱甘肽(GSH)或亲电基团中的巯基、咪唑基和Cd2+结合并转移,使得细胞质中的Cd2+保持低浓度[20]。实验中,C3组GST含量约为B3和A3组的1.56倍,可能是GST参与了细胞对重金属Cd2+的转移过程,使得藻体对Cd2+有一定的耐受力,这可能也是Cd2+实验组SOD的峰值出现在C4组的原因之一。
Cu2+、Pb2+、Cd2+三种重金属离子的胁迫会影响藻体的正常生长,SGR均出现负增长,可溶性蛋白和Chl-a含量随处理浓度的增大而呈下降趋势,其中Cu2+的影响尤为明显。重金属对藻体生长抑制能力大小为Cu2+>Pb2+>Cd2+。三种重金属离子对SOD和GST影响的变化趋势相似,均表现为先升后降,除了Cd2+对SOD影响峰值出现在5.00 mg/L处理浓度之外,其他处理组的峰值均出现在浓度为2.50 mg/L时。其中,Cu2+的处理浓度为2.50 mg/L时,SOD值达到峰值(195.54 U/mg prot);Cd2+的处理浓度为2.50 mg/L时,GST达到峰值(158.33 U/mg prot)。本研究结果可为棒叶蕨藻变种的重金属胁迫机理研究提供参考。 □
[1] 张容芳,唐东山,刘飞.藻类抗氧化系统及其对逆境胁迫的响应[J].环境科学与管理,2011,36(12):21-25.
[2] DE VOS C H,VONK M J,VOOIJS R,et al.Glutathione depletion due to copper-induced phytochelatin synthesis causes oxidative stress inSilene cucubalus[J].Plant Physiol,1992,98(3):853-858.
[3] SCHUTZENDUBELA,POLLEA.Plant responses toabiotic stresses:heavy metal-induced oxidative stress and protection by mycorrhization[J].Journal of Experimental Botany,2002,53:1351-1365.
[4] PEREIRA P,DE PABLO H,ROSA-SANTOS F,et al.Metal accumulation and oxidative stress inUlva sp.substantiated by response integration into a general stress index[J].Aquatic Toxicology,2009,91(4):336-345.
[5] 王红叶,杨芳,陈思嘉,等.钝顶螺旋藻对Cd胁迫的生理反应[J].海洋环境科学,2007,26(2):151-153.
[6] 余江,杨宇峰,聂湘平,等.大型海藻龙须菜对重金属镉胁迫的响应[J].四川大学学报,2007,39(3):83-90.
[7] 王荣霞,黄敏,谭围,等.羽毛藻对石斑鱼养殖废水中氮和磷的吸收特征[J].安徽农业科技,2017,45(1):89-90,104.
[8] 李卫东,王荣霞,沈铭辉,等.南美白对虾与羽毛藻生态养殖研究[J].现代农业科技,2015(10):249-250.
[9] 谭围,王荣霞,黄敏.番红砗磲水泥池循环水养殖模式研究[J].安徽农业科技,2016,44(29):102-106.
[10]刘涛.大型海藻实验技术[M].北京:海洋出版社,2016:94.
[11]AKHTERM S,AL-JOWDERO.Heavy metal concentrations in sediments from the coast of Bahrain[J].International Journal of Environmental Health Research,1997(7):85-93.
[12]TUNCER G,KARAKAST,BALKAST,et al.Land-based sources of pollution along the Black Sea coast of Turkey:Concentrations and annual loads to the Black Sea[J].Marine Pollution Bulletin,1998,36(6):409-423.
[13]陈静生,邓宝山,陶澍,等.环境地球化学[M].北京:海洋出版社,1990:196-235.
[14]鲁先文,宋小龙,王三应,等.重金属铅对小麦叶绿素合成的影响[J].潍坊教育学院学报,2008,21(2):47-48,59.
[15]方志红,董宽虎.NaCl胁迫对碱蒿可溶性糖和可溶性蛋白含量的影响[J].中国农业通报,2010,26(16):147-149.
[16]颜海波.江蓠属海藻在N营养盐和重金属Pb、Cd胁迫下的生理生化响应及蛋白质组学研究[D].汕头:汕头大学,2010.
[17]张薇薇,黄晓林,朝霞,等.棉花酶促抗氧化系统对逆境胁迫生理响应的研究进展[J].中国农业通报,2009,25(19):108-112.
[18]时萌,王芙蓉,王棚涛.植物响应重金属镉胁迫的耐性机理研究进展[J].生命科学,2016,28(4):504-511.
[19]易乐飞,郝伟,李信书,等.条斑紫菜Mu型谷胱甘肽转移酶基因克隆与分析[J].水产科学,2016,35(1):67-71.
[20]胡延玲,张春华,居婷,等.镉胁迫下两种水稻GSH和GST应答差异的研究[J].农业环境科学学报,2009,28(2):305-310.
The physical responses of Caulerpa sertularoides f.Longipes to heavy metal(Cu2+、Pb2+、Cd2+)stress
WANG Rongxia1,HUANG Min1,2,CHEN Fuxiao1,3,TAN Wei1,3
(1 Academy of Marine and Fishery of Hainan Province,Haikou 570203,China;2 Hainan Provincial Key Laboratory for Tropical Seawater Aquaculture Technology,Hainan Provincial Research Center for tropical seawater aquaculture Engineering technology,Haikou 570203,China;3South China Sea Bio-resource Exploitation and Utilization Collaborative Innovation Center,Guangzhou 510275,China)
In order to study the physiological responses of the algaeCaulerpa sertularoides f.Longipesto heavy metal(Cu2+,Pb2+,Cd2+)stress,constant-temperature illuminating cultivation method has been adopted to explore the influence of the stress from Cu2+,Pb2+and Cd2+on the specific growth rate(SGR),content of soluble protein,chlorophyll-a(Chl-a),glutathione-S-transferase(GST)and superoxide dismutase(SOD)of the algae.The results show that stress of the three kinds of heavy metal ions affects the normal growth of the algae;SGR showed negative growth;soluble protein and Chl-a contents decreased when the content of heavy metal ions increased;the influence of Cu2+was most obvious.The inhibition ability of heavy metals on the growth of algae was as follows:Cu2+>Pb2+>Cd2+.Both the SOD and GST contents,under the influence of the three heavy metal ions,increased first and then declined;the peak effect on the SOD concentration appeared when the concentration of Cd2+was 5 mg/L,but in other treatment groups the peak effect appeared at the concentration of 2.50 mg/L.This study will provide a scientific basis for the study on the mechanism of heavy metal stress toCaulerpa sertularoides f.Longipes.
Caulerpa sertularoides f.Longipes;Heavy metal;stress;physiological responses
10.3969/j.issn.1007⁃9580.2017.02.005
S955.7
A
1007-9580(2017)02-025-06
2017-01-15
海南省重点研发计划项目(ZDYF2017027);海南省自然科学基金项目(20164167)
王荣霞(1987—),女,工程师,硕士,研究方向:大型海藻养殖与渔业生态环境。E-mail:103490682@qq.com
:谭围(1982—),男,高级工程师,硕士,研究方向:水产经济动物繁殖生物学。E-mail:tanwei2599@163.com