林梦娇,田倪妮,魏 玲*,朱向情,杨晓华,田 青,曹 帅,阮光萍,潘兴华*
(1昆明总医院地方干部病房,昆明 650032;2昆明市第一人民医院心内科,昆明 650011;3云南省干细胞工程实验室,昆明 650032)
慢性缺氧是多种心血管疾病及心室重的诱因,是发病的重要环节,尤其对于老年患者,慢性缺氧可致多种心血管疾病[1,2]。热休克蛋白47(heat shock protein 47,HSP47)是一种高度保守的分子蛋白,既往研究表明其是胶原的特异性分子伴侣,在胶原分泌、合成及其所致纤维化中起重要作用。慢性缺氧可引起明显的肺动脉高压以及右心室重构,甚至最终发展为心力衰竭[3,4]。本研究通过建立慢性缺氧SD大鼠模型,测定HSP47 mRNA表达量及Ⅰ型前胶原C端原肽(procollagen Ⅰ C-propeptide, PⅠCP)及Ⅲ型前胶原N端原肽 (procollagen Ⅲ N-propeptide,PⅢNP)的含量,探讨其与心肌纤维化的相关性。
参考Bonnet等实验[3-5]改良缺氧箱。缺氧箱箱体系统主要由动物饲养箱体和箱内气路组成。氧气浓度控制系统由高压氮气气瓶、电磁阀、氧浓度控制器、气体流量控制器组成,置于箱体的上部。设置箱体内的氧浓度后,整个系统由氧气浓度控制系统自动控制。智能控氧仪位于箱体上部,实时检测箱体内氧含量,并显示在智能控氧仪屏幕上,当箱体内氧浓度高于设置值时,电磁阀开启,充氮气进入箱体,充气速度由气体流量计控制,当氧浓度低于设定值时电子阀自动关闭,停止氮气输入。使箱体内氧气浓度保持在一定范围内。
40只SPF级的雄性SD大鼠适应性正常饲养1周,按随机数字表完全随机分为5组,每组8只。对照组不给于缺氧处理(A组)。各慢性缺氧组大鼠放入缺氧箱中,向箱中快速通入氮气, 控制气流流量(0.09~0.1)m3/h,箱内氧气浓度从20.95%开始下降,控制氧浓度为10%±0.5%,分别缺氧 7 d(B组)、14 d(C组)、21 d(D组)、28 d(E组)。每天早上8∶00~8∶30开箱放气,清理粪便,补给食物和水,其他时间模型组大鼠均饲养于缺氧箱中。
1.3.1 心肌组织总RNA的提取 从-80℃冰箱中取出心肌组织,移到液氮预先冷却的研钵中,边加液氮边研磨至样品成白色粉末。待液氮挥发完后,加入2 ml Trizol(Takara,9109)。将变成固体的Trizol研磨成粉末。继续研磨至Trizol恢复成液体。将所得液体转移入离心管。按Trizol说明书提取总RNA。将所得样本的RNA分别移放置入RNase free离心管中,将离心管标记后放入-80℃冰箱中冻存。
1.3.2 逆转录获取cDNA 在200 μl薄壁聚合酶链反应(polymerase chain reaction, PCR)管中配制RT混合反应液,反应体系20 μl。在PCR仪上按照下面条件进行逆转录(reverse transcription, RT): 25℃ 5 min,42℃ 60 min,70℃ 5 min,4℃孵化,最终可得到cDNA,并放入-20℃冰箱冻存。
1.3.3 引物的设计与合成 根据NCBI(美国国立生物技术信息中心)Genebank中大鼠HSP 47的基因序列以及beta-actin内参序列,用Primer premier 5.0引物设计软件设计出特异性高的引物序列。该引物的合成由昆明贝尔吉有限公司合成。引物片段约115 bp。
表1 目的基因及内参引物Table 1 The primers of target gene and beta-actin
1.3.4 实时荧光定量PCR反应 目的基因HSP47的扩增条件: 20 μl反应体系,行实时荧光定量PCR(quantitative real-time PCR,q-PCR)反应,50℃ 2 min起始模板变性,95℃ 3 min模板变性(循环数1);95℃ 10 s退火,55℃ 1 min延伸(循环数38);72℃ 5 min延伸(循环数1);65℃ to 95℃制作溶解曲线。收集数据,测定样品各管的Ct值,设定无cDNA样品作为对照管。
1.3.5 患者血清中PⅠCP浓度的测定 采用酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)方法检测本组40只SD大鼠血清中PⅠCP、PⅢNP浓度。将特异性抗体与固相载体联结,形成固相抗体,先后加入受检标本、酶标抗体,最后加底物显色。用酶标仪检测。
1.3.6 HE和MASSON组织切片染色 用HE和MASSON染色法对对照组及慢性缺氧组大鼠心肌组织进行切片染色,观察镜下改变。
1.3.7 HSP47 mRNA相对表达量的计算方法 本实验采用定量PCR中的公式法进行相对定量,实时连续测定基因扩增过程中产生的荧光,以达到指数扩增时的循环周数(Ct)值进行校正。方法如下:用下列公式计算各组大鼠的HSP47 mRNA相对表达量,以beta-actin作为对照,A组作为基准,其余各组作为目的基因,目的基因mRNA的表达量均表达成基准的N倍(N=2-△△Ct),其中△Ct= Ct(目的基因)- Ct(beta-actin),△△Ct=△Ct样品-△Ct基准。各组△Ct的比较间接反映出各组真实拷贝数间的关系,各样本Ct值越大,说明目的基因拷贝数越少。重复3次取Ct平均值。本实验中,Bio-rad CFX96自带程序计算方法同上,获得目的基因的相对表达量。
采用SPSS17.0统计软件进行数据分析。计量资料采用均数±标准差表示。多组间比较采用单因素方差分析或 Tamhane 方差分析。两组间比较采用t检验,相关性分析采用 Pearson 直线相关分析。P<0.05为差异有统计学意义。
目的基因HSP47 mRNA引物片段长度为115 bp,beta-actin引物片段长度为135 bp左右。基因条带无引物二聚体且清晰无杂带(图1),因此引物的设计合理,PCR引物及扩增产物特异性高。
图1 热休克蛋白47mRNA扩增产物Figure 1 Heat shock protein 47 mRNA amplification product
与对照组比较,模型C组、D组、E组的HSP47 mRNA表达量明显增多(P<0.01), 模型B组HSP47 mRNA表达量无明显差异(P>0.05)。亚组间两两比较:与B组比较,C组、D组、E组的HSP47 mRNA表达量明显增多(P<0.01);与C组比较,D组、E组的HSP47 mRNA表达量明显增多(P<0.01);与D组比较,E组的HSP47 mRNA表达量明显增多(P<0.01)。
图2 热休克蛋白47 mRNA在不同缺氧组心肌中的相对表达量Figure 2 Relative expression of heat shock protein 47 mRNA in different hypoxia groups
A: control group; B: chronic hypoxia for 7 d; C: chronic hypoxia for 14 d; D: chronic hypoxia for 21 d; E: chronic hypoxia for 28 d. Compared with group A,**P<0.01; compared with group B,##P<0.01; compared with group C,△△P<0.01; compared with group D,▲▲P<0.01
与对照组比较,模型B组、C组、D组、E组的血清、心肌组织PⅠCP、PⅢNP含量明显增多(P<0.01)。亚组间两两比较:与B组比较,C组、D组、E组的血清、心肌组织PⅠCP、PⅢNP含量明显增多(P<0.01);与C组比较,D组、E组的血清、心肌组织PⅠCP、PⅢNP含量明显增多(P<0.01);与D组比较,E组的血清、心肌组织PⅠCP、PⅢNP含量明显增多(P<0.01;表2)。
心肌HSP47mRNA与血清和心肌的PⅠCP、PⅢNP呈正相关,差异有统计学意义(P<0.05;表3)。
正常心肌细胞在HE染色和MASSON染色下(图3A,3B)呈短柱状,细胞核呈椭圆形、深染、染色质均匀。慢性缺氧大鼠HE染色下(图3C,3D)心肌细胞弥漫空泡变,心肌间质广泛纤维化。MASSON染色下胶原纤维呈蓝色,肌纤维呈红色。
表2各组大鼠血清和心肌的PⅠCP和PⅢNP浓度的比较
GroupSerumPⅠCPPⅢNPMyocardiumPⅠCPPⅢNPA69.25±8.171.16±0.01153.66±7.613.85±0.02B78.32±10.001.17±0.01160.41±1.743.85±0.01C95.10±9.59∗∗##1.51±0.02∗∗##181.50±10.84∗∗##4.10±0.01∗∗##D115.85±9.16∗∗##△△1.83±0.01∗∗##△△216.15±11.50∗∗##△△4.24±0.01∗∗##△△E235.64±10.43∗∗##△△▲▲2.48±0.02∗∗##△△▲▲279.78±6.54∗∗##△△▲▲5.05±0.02∗∗##△△▲▲
PⅠCP: procollagen Ⅰ C-propeptide; PⅢNP: procollagen Ⅲ N-propeptide. Compared with group A,**P<0.01; compared with group B,##P<0.01; compared with group C,△△P<0.01; compared with group D,▲▲P<0.01
表3 心肌HSP47 mRNA与血清和心肌的PⅠCP和PⅢNP相关性分析Table 3 Correlation analysis of cardiac HSP47 mRNA and PⅠCP and PⅢNP in serum or myocardium
PⅠCP: procollagen Ⅰ C-propeptide; PⅢNP: procollagen Ⅲ N-propeptide; HSP47: heat shock protein 47
图3 大鼠心肌组织HE和MASSON染色Figure 3 HE staining and MASSON staining of myocardial tissue A: control group(HE ×200); B: control group(MASSON ×200); C: chronic hypoxia group(HE ×400); D: chronic hypoxia group (MASSON ×400)
心肌纤维化(myocardial fibrosis,MF)是指心肌正常组织结构中出现的以细胞增殖、细胞外基质过度沉积为主要表现的疾病[5,6]。心肌过量纤维化是心室重构的重要标志,心肌纤维化导致心脏僵硬度增加、心脏顺应性降低,心脏传导阻滞,心脏收缩及舒张功能障碍,最终导致心力衰竭发生[7,8]。细胞外基质(extracellular matrixc,ECM)是由Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原、Ⅳ型胶原、Ⅴ型胶原、Ⅵ型胶原构成,其中以Ⅰ型胶原和Ⅲ型胶原为主[9]。 心肌胶原中含Ⅰ型胶原约80%,因其纤维比较粗、僵硬度很大以及抗牵拉功能较强,从而在维持室壁强度上起重要的作用。心肌胶原中含Ⅲ型胶原约11%,Ⅲ型胶原的纤维比较细,且其弹性和伸展性比较好。在维持心肌组织正常结构和心脏功能完整性方面,Ⅰ型胶原与Ⅲ型胶原的比例具有很重要的意义[6]。研究表明[10,11]。PⅠCP C基末端肽可作为Ⅰ型胶原蛋白合成的标志物,PⅢNP N基末端肽可作为Ⅲ型胶原蛋白合成的标志物,因此在实验中检测PⅠCP和PⅢNP 浓度就可反映胶原含量以及胶原合成和降解的情况,故PⅠCP和PⅢNP可成为MF重要的指标。HSP47作为热休克蛋白家族中唯一的胶原特异性分子伴侣,与胶原前体的加工、折叠、合成、分泌等过程密切相关,特别是与Ⅰ型胶原的分泌有关。HSP47与胶原合成密切相关,两者表达有时间和空间上的一致性[12],这种一致性在培养细胞[13]、胚胎组织发育[14]和组织纤维化中均得到了证实。因此可通过观察HSP47 mRNA的表达量来间接反映心肌纤维化程度。所以通过检测血清、心肌的PⅠCP、PⅢNP的浓度、心肌HSP47 mRNA表达联合组织病理学(HE染色、Masson)检测可以反映出缺氧导致心肌纤维化的程度。
本研究应用ELISA法检测血清、心肌PⅠCP、PⅢNP的浓度,应用q-PCR技术检测各组大鼠HSP47 mRNA表达,结果发现:与对照组相比,模型组中的血清、心肌的PⅠCP、PⅢNP浓度和心肌HSP47 mRNA相对表达量均明显增多(P<0.01);模型组内两两比较,血清、心肌的PⅠCP、PⅢNP的浓度和心肌HSP47 mRNA相对表达量均有明显的统计学差异(P<0.01),且随缺氧时间增加而增多。对正常组大鼠和慢性缺氧组大鼠心肌组织做组织切片同样证实:正常心肌细胞在HE染色和MASSON染色下呈短柱状,细胞核呈椭圆形、深染、染色质均匀。慢性缺氧大鼠HE染色下心肌细胞弥漫空泡变,心肌间质广泛纤维化。MASSON染色下胶原纤维呈蓝色,肌纤维呈红色,胶原纤维连接呈网状。大量研究证明HSP47在胶原蛋白分泌细胞的内质网内与胶原特异性结合,参与胶原的折叠、装配、修饰和转运,与胶原合成密切相关,两者表达有时间和空间上的一致性[12]。本研究中HSP47 mRNA相对表达量与血清和心肌中PⅠCP、PⅢNP浓度均随缺氧时间的增加而增多,并且相关性分析显示,心肌HSP47 mRNA与血清和心肌的PⅠCP、PⅢNP、CVF呈高度线性正相关(P<0.05),说明了HSP47 mRNA相对表达量与胶原合成一致,与朱慧等[15]的结果一致。HSP47 mRNA的表达量与胶原合成密切相关,可以间接反映心肌纤维化程度,提示HSP47作为心肌胶原分子伴侣在慢性缺氧心脏重构、心肌纤维化中起重要作用,为治疗缺氧所导致的心力衰竭提供了新的方法。
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