林 琛,邢更彦
金纳米粒子对骨科相关细胞增殖与代谢作用的研究进展
林 琛,邢更彦
金纳米粒子(gold nanoparticles,AuNPs)已在不同的领域表现出了很好的研究与应用前景,如化学、生物与医药等。其中,在骨科学领域亦表现出了独特的生物效能,尤其对骨科学相关细胞的作用,如成骨细胞、破骨细胞、软骨细胞及人骨髓间充质干细胞(human bone marrow-derived mesenchymal stem cells,hMSCs)等。不同直径、不同官能团修饰的AuNPs可以不同程度地影响这些细胞的生物效应表达,同时也可获得细胞内的相关信息。
金纳米粒子;骨细胞;骨科学
纳米科技与纳米技术在许多领域均有着广泛的影响,包括生物医学的应用,如银纳米粒子(silver nanoparticles,AgNPs)、C60(fullerene)、量子点(quantum dots)等。其中金纳米粒子(gold nanoparticles,AuNPs)尤其令科学家关注,其无毒性,易于合成及良好的生物相容性均优于其他纳米粒子[1]。目前,其在化学、生物、工程与医药方面等已经有了至关重要的应用[2]。例如,AuNPs运载脱氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid, DNA)至细胞核的效率是聚乙烯胺的8倍,并且AuNPs已成功地应用于新型癌症的靶向运输治疗方法中。另外,吸附于某些物质上的AuNPs,其表面等离子共振峰会发生红移,利用该性质可对某些物质进行免疫、标定与示踪,同时AuNPs也因其独特的催化效应被关注,作为一种新型的催化剂,在催化氧化反应中可以保持着很高的催化活性[3]。
近期研究表明,AuNPs与骨科学息息相关[4,5]。尤其对与骨科学相关的细胞,如成骨细胞、破骨细胞、软骨细胞及骨髓间充质干细胞的作用显著。这就要求笔者明确AuNPs进入细胞的方式及其与各型细胞的相互作用。以便对其生物效应有进一步的了解,从而更好应用于生物医学领域。因此,本研究就AuNPs与骨科学相关细胞的相互作用进行了总结与阐述。
AuNPs要进入细胞发挥其生物学功能,该过程需要越过细胞膜来实现。在过去的几年里,已有实验致力于研究细胞摄取AuNPs的方式与途径[6,7]。研究发现,AuNPs可通过细胞内吞方式或者直接穿透细胞膜进入细胞,带负电荷的AuNPs多以内吞作用进入细胞[8],然而近乎50%的阳性AuNPs则通过直接扩散进入细胞[9],细胞内吞可相对稳定的发挥粒子功能,而后者在一定程度上可对细胞膜产生破坏作用,若其带有高电荷密度,在进入到脂质双分子层后可在双分子层边界部分生成孔洞,初期为疏水状,随着孔洞的扩大,逐渐演变为亲水状直至稳定。适宜的孔洞可实现AuNPs的有效运输,若孔洞过大则会导致细胞内外信息交流紊乱,进而减弱或者丧失细胞的功能。可见其表面电性是影响其进入细胞方式的重要因素。除表面电性,多种因素均能不同程度影响细胞对金纳米粒子的摄入,AuNPs的形状,配体结构和化学组成等都能导致其细胞摄入不同程度的改变[10]。
2.1 AuNPs对成骨细胞的作用 成骨细胞是骨形成细胞,在骨的发生发展、功能的发挥及重建与维护方面有着至关重要的作用[11]。原始成骨细胞拥有很多研究的有利条件,包括研究细胞生长过程中的调控机制,基质矿化作用与细胞分化的关系等。Zhang等[12]利用AuNPs干预初级成骨细胞,运用细胞增殖及细胞毒性检测试剂盒(cell proliferation and cytotoxicity assay kit ,MTT)、逆转录定量聚合酶链式反应(quantitative real-timechain reaction,Q-RTPCR)、蛋白免疫印迹法(western blot)及酶联免疫吸附剂测定(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)的方法评价其与20、40 nm金粒子生物相容性,包括形态学、增殖能力、分化能力、基因与蛋白表达及其潜在的机制。结果发现,AuNPs被成骨细胞所吸收,分布于细胞核周围,但是未观察到细胞形态学的改变。AuNPs可以显著提高成骨细胞的增殖,增强碱性磷酸酶(alkalinephosphatase, ALP)的表达,增加成骨细胞中的钙盐沉积。另外,在金粒子的存在下,骨形态蛋白2(bone morphogenetic protein-2, BMP-2)、Runx转录因子2(Runt-related transcription factor-2, Runx-2)、骨钙素(osteocalcin, OCN)的表达有了显著的上调。值得注意的是,20 nm金粒子对成骨细胞活动的上调能力要显著强于40 nm金粒子。对涉及该过程的信号通路研究发现,AuNPs可以提高细胞外信号调节激酶(extracellular regulated protein kinases, ERK)的磷酸化及其总数的水平,表明ERK/MAPK通路参与该过程。与张金超等[13]研究类似,其认为AuNPs通过Runx-2,BMP-2,ALP和OCN四种基因之间相互作用,从而刺激成骨细胞系MC3T3-E1细胞的成骨分化。Wang等[14]利用金纳米包裹二氧化钛处理体外培养的成骨细胞,MTT检测其对成骨细胞活性与增殖发现在2 d与4 d时成骨细胞活性是逐渐升高的,且高于对照组。其包裹二氧化钛可通过简单的电化学沉积法提高磷灰石形成能力,促进成骨细胞增殖与细胞粘附。粒子表面成分,粗糙度与细胞接触表明能量可影响细胞对细胞外基质蛋白(如纤维连接蛋白与副纤维连接蛋白)的摄取与合成,这些蛋白是促进细胞增殖的重要物质。
2.2 AuNPs对人骨髓间充质干细胞的作用 人骨髓间充质干细胞(human bone marrow-derived mesenchymal stem cells,hMSCs)由于其多向分化能力而被视为可用于人体组织重建的一类细胞。而AuNPs对hMSCs有其独特的作用,尤其对成骨分化的作用明显。已有研究表明,AuNPs能够促进hMSCs的成骨分化[15],可透过细胞膜附着于细胞质内的细胞器与蛋白,通过传递适当的机械应力来刺激p38/MARK信号通路,该通路是骨形成与骨重建的关键调节器[16]。而且不同尺寸和形状对该过程的影响是不同的。Li等[17]分别研究了金纳米球、纳米星、纳米棒在直径为40、70、110 nm时对hMSCs成骨分化的影响。结果发现,球-40、星-70、棒-70能够显著提高细胞中ALP的表达及钙盐的沉积,上调成骨标记基因的表达,然而棒-40却起到了相反的作用。另外,不同修饰的金纳米其性能的表现也有所不同。Li等[18]用羧基、羟基、氨基修饰AuNPs来干预hMSCs,其中羧基修饰的AuNPs对细胞有显著的影响但这种影响确是矛盾的,一方面,它能够上调hMSCs转化生长因子-β(transforming growth factor-β, TGF-β)及成纤维细胞生长因子-2(fibroblast growth factor 2, FGF-2)的表达,促进细胞的增殖,然而另一方面,抑制了ALP的活性及hMSCs的细胞基质矿化作用,对hMSCs成骨分化产生不利的影响。miR-29b是hMSCs成骨分化的促进因子,然而其在细胞中转运成骨分化信使RNA(Messenger RNA, mRNA)的有效率很低, Pan等[19]用miR-29b缀合15 nmAuNPs,发现15 nmAuNPs能够装载miR-29b,从而有效的集中miR-29b的浓度进入细胞质中。AuNPs进入细胞后,主要附着于细胞内质网中,给予内质网一定的应力强度,类似于机械强度,而骨髓间充质干细胞和成骨细胞的细胞活性是与该强度密切相关的,过强的应力强度可导致细胞的凋亡,而适度的应力强度可促进细胞的生成[20]。
2.3 AuNPs对破骨细胞的作用 破骨细胞是骨组织成分的一种,行使骨吸收的功能,与成骨细胞在功能上相对应,二者协同,在骨骼的发育和形成过程中发挥重要作用[21]。骨吸收在骨重建中是非常重要的过程,然而,破骨细胞过度表达易对骨组织产生负性影响。研究发现,AuNPs可以在一定程度上抑制骨髓巨噬细胞形成破骨细胞,进而抑制其功能[21]。Sul等[22]用150 nm的AuNPs体外干预小鼠骨髓巨噬细胞破骨分化,结果发现,其能够抑制该分化过程,上调抗氧化剂酶谷胱甘肽过氧化物酶-1(glutathioneperoxidase, GSH-Px1)的表达,同时抑制破骨细胞产生氧自由基,而破骨细胞分化因子(receptor activator of nuclear factor kappa-B ligand, RANKL)的刺激与这两种物质的水平息息相关。Kim等[23]探究了AuNPs在生物体内对破骨细胞的影响,利用铂金纳米粒子采用灌胃法处理去卵巢引起的骨质疏松症的小鼠,提高了小鼠的骨密度,降低了破骨细胞的形成,再次验证了AuNPs通过抑制RANKL信号通路来抑制破骨细胞的功能。
2.4 AuNPs对软骨细胞的作用 骨关节炎的发展与软骨细胞的变性密切相关。软骨细胞广泛存在于人体骨与关节的软骨组织中,具有合成和分泌基质与纤维的功能。其中,聚蛋白多糖、2型胶原蛋白是软骨细胞外基质的两个主要组成成分,不仅提供着细胞结构支持,同时也承载着来自外界的机械压力[24],由于蛋白多糖的亲水性使得软骨细胞具有较高的保水能力,为软骨细胞的生存提供良好的微环境。Hsu等[25]用5 nm的AuNPs与2型胶原蛋白缀合成的复合材料,在不同浓度条件下(0.05%, 0.1%, 0.5%, 1%或 2.5%)干预软骨细胞后,发现该复合物在低浓度(≤0.5%)时,能够增强细胞的机械性能与抗氧化作用,降低细胞基质中NO的表达量,在0.1%浓度下能够促进细胞的增殖,上调1型胶原蛋白,聚蛋白多糖,Sox9相关基因的表达,但在2.5%浓度下这些基因的表达却是下降的。由此可见,AuNPs对软骨细胞有一定的生物作用影响,而软骨细胞又与骨关节炎的发展密切相关,Dwivedi等[26]利用金纳米颗粒作为硫酸软骨素运药载体干预软骨细胞,发现两者联合与只用硫酸软骨素比较,可见聚糖和胶原成两倍的增加,表明这种联合可以刺激软骨细胞的增殖,增加细胞外基质。该两种物质的表达与细胞中氧自由基的表达密切相关,已有研究表明AuNPs具有一定的抗炎性质,能够抑制氧自由基的产生[27]。氧自由基可调节细胞因子与趋化因子引起的炎性反应,其产生增多则会使炎性反应加重,进而通过线粒体呼吸链反应引起细胞内氧自由基的产生,降低细胞生理生化功能,加速细胞的衰老,而AuNPs的适当应用则会抑制该过程,增加聚糖和胶原的产生。
综上所述,不同直径、不同修饰的AuNPs在骨科学细胞领域有着独特的作用,如促进骨髓间充质干细胞的成骨分化,刺激成骨细胞与软骨细胞相关生长因子的表达,抑制破骨细胞生长等,降低ROS的产生,具有一定的抗炎作用[28],同时由于其良好的生物相容性,可以作为药物载体,从而更好发挥药物效能[29]。虽然AuNPs有着独特的生物学作用,但目前仍在问题,比如其适用于人体中并且对细胞有着正性作用(如促进增殖,增强组织细胞合成能力)时的浓度要求;不同直径、不同修饰的AuNPs性质的确定;在靶向运输中,作为稳定的药物载体,如何提高其与目的器官与细胞的靶向结合等,进而更应用于临床治疗,都是目前需要明确与解决的问题。纳米技术作为21世纪的新兴技术,在生物医学领域有着巨大的研究与应用前景,而AuNPs则在众多纳米粒子中扮演着重要的角色。AuNPs更多的生物效能在今后将会被发现,性质将会更加趋于稳定,其在生物医学领域中的应用亦将愈来愈广泛。
[1]Alkilany A M, Lohse S E, Murphy C J . The gold standard: gold nanoparticle libraries to understand the nano-bio interface [J]. Acc Chem Res, 2013, 46(3): 650-661. DOI: 10.1021/ar300015b. Epub 2012 Jun 25.
[2]Thakor A S, Jokerst J, Zavaleta C,et al. Gold nanoparticles: arevival in precious metal administration to patients [J]. Nano Lett , 2011, 11(10): 4029-4036.DOI: 10.1021/ nl202559p.
[3]姚素薇,邹 毅,张卫国. 金纳米粒子的特性、制备及应用研究进展[J].化工进展, 2007, 26(3): 310-314. DOI: 10.3321/j.issn:1000-6613.2007.03.003.
[4]Suarasan S, Focsan M, Soritau O,et al. One-pot, green synthesis of gold nanoparticles by gelatin andinvestigation of their biological effects on Osteoblast cells [J]. Colloids Surf B Biointerfaces, 2015(132): 122-131. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2015.05.009.
[5]Li C, Li Z Q, Wang Y,et al. Gold nanoparticles promote proliferation of human periodontal ligament stem cells and have limited effects on cells differentiation [J]. J Nanomater, 2016(9249): 1-10. DOI: 10.1155/2016/1431836.
[6]Crisana L, Crisanb B, Soritauc O,et al. In vitro study of biocompatibility of a graphemecomposite with gold nanoparticles andhydroxyapatite on human osteoblasts [J]. J Appl Toxicol, 2015, 35(10):1200-1210.DOI: 10.1002/ jat.3152.
[7]Choi S Y, Song M S, Ryu P D,et al. Gold nanoparticles promote osteogenic differentiation in human adiposederived mesenchymal stem cells through the Wnt/ β-catenin signaling pathway [J]. Int J Nanomedicine, 2015(10): 4383-4392. DOI: 10.2147/IJN.S78775.
[8]Ostdiek A M, Ivey J R, Grant D A,et al. An in vivo study of a gold nanocomposite biomaterial for vascularrepair [J]. Biomaterials, 2015(65): 175-183. DOI: 10.1016/ j.biomaterials.2015.06.045.
[9]Cho E C, Xie J, Wurm P A,et al. Understanding the role of surface charges in cellular adsorption versus internalization by selectively removing gold nanoparticles on the cell surface with a I2/KI etchant [J]. Nano Lett, 2009, 9(3):1080-1084. DOI: 10.1021/nl803487r.
[10]Verma A, Uzun O, Hu Y,et al. Surface-structure-regulated cell-membrane penetration by monolayer-protected nanoparticles [J]. Nat Mater, 2008,7(7):588-595. DOI: 10.1038/nmat2202.
[11]Jayakumar P, Di Silvio L .Osteoblasts in bone tissue engineering [J]. Proc Inst Mech Eng H, 2010, 224(12): 1415-1440. DOI: 10.1243/09544119JEIM821.
[12]Zhang D, Liu D, Zhang J,et al. Gold nanoparticles stimulate differentiation and mineralization of primary osteoblasts through the ERK/MAPK signaling pathway[J]. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl, 2014(42): 70-77. DOI: 10.1016/j.msec.2014.04.042.
[13]张金超,刘丹丹,易长青,等.金纳米粒子对成骨细胞MC3T3-E1增殖、分化和矿化功能的影响[J].科学通报, 2010(6): 435-441.
[14]Wang C Y, Bai Y, Bai Y L,et al. Enhancement of corrosion resistance and bioactivity of titanium by Au nanoparticleloaded TiO2nanotube layer [J]. Surf Coat Tech, 2016, 286(25): 327-334. DOI: 10.1016/j.surfcoat.2015.12.051.
[15]Phillips J E, Petrie T A, Creighton F P,et al. Human mesenchymal stem cell differentiation on self-assembled monolayers presenting different surface chemistries [J]. Acta Biomater, 2010, 6(1): 12-20. DOI: 10.1016/ j.actbio.2009.07.023.
[16]Yi C, Liu D, Fong C C. Gold nanoparticles promote osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells through p38 MAPK pathway [J]. ACS Nano, 2010, 4(11): 6439-6448.DOI: 10.1021/nn101373r.
[17]Li J, Li J J, Zhang J,et al. Gold nanoparticle size and shape influence on osteogenesis of mesenchymal stem cells[J]. Nanoscale, 2016, 8(15): 7992-8007.DOI: 10.1039/ c5nr08808a.
[18]Li J J, Kawazoe N, Chen G. Gold nanoparticles with different charge and moiety induce differential cell response on mesenchymal stem cell osteogenesis [J]. Biomaterials, 2015(54): 226-236.DOI: 10.1016/j.biomaterials.
[19]Pan T, Song W, Gao H,et al. miR-29b-loaded gold nanoparticles targeting to the endoplasmic reticulum for synergistic promotion of osteogenic differentiation [J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2016, 8(30): 19217-19227.DOI: 10.1021/acsami.6b02969.
[20]Saito A, Ochiai K, Kondo S,et al. Endoplasmic reticulum stress response mediated by the PERK-eIF2α-ATF4 pathway is involved in osteoblast differentiation induced by BMP2 [J]. J boilchem, 2011, 286(6): 4809-4818. DOI: 10.1074/jbc.M110.152900.
[21]Beck G R Jr, Ha S W, Camalier C E,et al. Bioactive silicabased nanoparticles stimulate bone-forming osteoblasts, suppress bone-resorbing osteoclasts, and enhance bone mineral density in vivo[J].Nanomedicine, 2012,8(6):793-803.DOI: 10.1016/j.nano.2011.11.003.
[22]Sul O J, Kim J C, Kyung T W,et al. Gold nanoparticles inhibited the receptor activator of nuclear factor-κB ligand( RANKL)-induced osteoclast formation by acting as an antioxidant[J]. Biosci Biotechnol Biochem, 2010,74(11): 2209-2213.DOI:10.1271/bbb.100375.
[23]Kim W K, Kim J C, Park H J,et al. Platinum nanoparticles reduce ovariectomy-induced bone loss by decreasing osteoclastogenesis [J]. Exp Mol Med, 2012, 44(7): 432-439. DOI: 10.3858/emm.2012.44.7.048.
[24]Park J U, Kim S J, Na C S,et al. Chondroprotective and anti-inflammatory effects of ChondroT, a new complex herbal medication[J]. BMC Complementand AlternMed, 2016(16): 213. DOI: 10.1186/s12906-016-1211-0.
[25]Hsu S H, Yen H J, Tsai C L. The response of articular chondrocytes to typeⅡcollagen-Au nanocomposites [J]. Artif Organs, 2007, 31(12): 854-868. DOI: 10.1111/ j.1525-1594.2007.00482.x
[26]Dwivedi P, Nayak V, Kowshik M.Role of gold nanoparticles as drug delivery vehicles for chondroitin sulfate in the treatment of osteoarthritis [J]. Biotechnol Prog, 2015, 31(5): 1416-1422. DOI: 10.1002/btpr.2147.
[27]Pereira D V, Petronilbo F, Pereira H R,et al. Effects of gold nanoparticles on endotoxin-induced uveitis in rats [J]. Invest Ophthalmol Vis Sci, 2012, 53(13): 8036-8041. DOI: 10.1167/iovs.12-10743.
[28]Dohnert M B, Venâncio M, Possato J C,et al. Gold nanoparticles and diclofenac diethylammonium administered by iontophoresis reduce inflammatory cytokines expression in Achilles tendinitis [J]. Int J Nanomedicine, 2012(7): 1651-1657. DOI: 10.2147/IJN.S25164.
[29]Lee S M, Kim H J, Ha Y J,et al. Targeted chemophotothermal treatments of rheumatoid arthritis using gold half-shell multifunctional nanoparticles [J]. ACS Nano, 2013, 7(1): 50-57. DOI: 10.1021/nn301215q.
(2017-12-08收稿2017-03-15修回)
(本文编辑 宋宫儒)
Advances in the effect of AuNPs on proliferation and metabolism of orthopedic-related cells
LIN Chen and XING Gengyan. Clinical School of General Hospital of Chinese People's Armed Police Force, Anhui Medical University, Beijing 100039, China
Corresponding author: XING Gengyan, E-mail: xgy7766@263.net
Research on gold nanoparticles (AuNPs) has showed commendable results and application prospects in chemistry, biology and medicine. It also showed promise as a biomaterial for tissue engineering in orthopaedics cells, such as osteablast, osteoclast, chondrocyte and human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hMSCs) and so on. The AuNPs with different particle sizes and functional groups influence cell viability differently, and simultaneously obtain cell information.
AuNPs; osteocyte; orthopedics
R87
10.13919/j.issn.2095-6274.2017.04.014
100039 北京,安徽医科大学武警总医院临床学院
邢更彦,E-mail:xgy7766@263.net