邢利沙,陈海霞,王佳,王艳伟
(天津大学药物科学与技术学院,天津市现代药物传递及功能高效化重点实验室,天津,300072)
大蒜(Allium sativum L.)为百合科葱属植物,在我国南北方均有种植。大蒜鳞茎既是人们喜爱的调味品,又是常用的植物药。大蒜的主要成分是水、蛋白质和糖类,微量成分有脂类、酶类、肽类、氨基酸、苷类、维生素和微量元素等[1]。大蒜功能成分主要分为挥发性化合物和非挥发性化合物两大类;挥发性化合物主要包括硫代亚磺酸酯类和其他脂溶性有机硫化物,非挥发性功能物质主要包括水溶性有机硫化物、类固醇皂苷、甾体类、黄酮类、酚类等[2]。大蒜具有清热解毒、杀菌消炎、预防和治疗高血压、动脉粥样硬化、糖尿病、提高机体免疫力和防癌抗癌等医疗保健作用[3]。大蒜药物制剂在临床上可用于治疗心脑血管疾病、感染性疾病、治疗口腔溃疡、慢性结肠炎和脂肪肝等疾病[4]。目前,关于大蒜抗氧化活性的研究虽已有报道,但研究对象和评价方法不尽相同,而且关于大蒜不同极性萃取物体外抗氧化活性的研究鲜有报道。本研究中采用石油醚,乙酸乙酯,正丁醇有机溶剂对大蒜的乙醇提取物进行萃取,并分析了不同极性萃取物的体外抗氧化活性结果。
大蒜,购自天津大学附近的市场。
DPPH自由基,购自于Sigma公司,其余的试剂均为国产分析纯。
UV-9200紫外分光光度计(Rayleigh);电子分析天平(北京赛多利斯仪器有限公司);旋转蒸发仪和数显恒温水浴锅(上海亚荣生化仪器厂);FD-1A-50冷冻干燥机(北京博医康实验仪器公司)。
1.3.1 大蒜活性成分的提取
取去皮大蒜200 g,洗净冷冻干燥得到脱水大蒜60.43 g,按1∶7(g∶mL)的比例加入体积分数 80% 乙醇回流提取2 h,过滤滤渣同法提取2次。合并3次滤液,于45℃下减压浓缩回收溶剂,得到大蒜粗提物(Crude-Extract)11.67 g。
将大蒜乙醇粗提物混悬于水中,依次用石油醚、乙酸乙酯、正丁醇萃取,分别减压回收溶剂,真空冷冻干燥得石油醚萃取物(PE-F):0.17 g,乙酸乙酯萃取物(EA-F):0.14 g,正丁醇萃取物(n-Bu-F):4.75 g,水萃取物(W-F):6.23 g。
1.3.2 多酚含量的测定
采用福林-酚比色法测定粗提物和不同极性萃取物的总多酚含量[5]。以没食子酸为标准品绘制标准曲线,得到标准曲线方程为:Y=0.004A760+0.001(R2=0.996)。向反应体系中加入粗提物及不同极性萃取物的样品溶液,在760 nm波长下测定其吸收值A,通过多酚的标准曲线计算样品中多酚含量。
1.3.3 抗氧化活性测定方法
1.3.3.1 大蒜不同极性萃取物对DPPH自由基清除作用
大蒜不同极性萃取物清除DPPH自由基的活性按照文献[6]的方法进行测定。在517 nm下测定不同样品溶液的吸光度A,不加样品的反应体系作为对照,每个样品测定5个不同质量浓度。样品对DPPH自由基清除率的计算公式为:
1.3.3.2 大蒜不同极性萃取物的还原力测定
配制不同浓度的样品溶液,按照文献[7]的测定方法测定还原力活性。向0.1 mL不同浓度的样品溶液中加入0.2 mol/L pH值为6.6的磷酸盐缓冲液0.7 mL和30 mmol/L的K3Fe(CN)6溶液2 mL,50℃水浴20 min后加入10%三氯乙酸2 mL,混匀后静置10 min。取上述溶液的上清液1 mL加入FeCl33 mL静置10 min,700 nm波长测吸光度A,吸光值越大则还原力越强。
1.3.3.4 大蒜不同极性萃取物对Fe2+-Vc诱导小鼠肝脂质过氧化抑制活性
[8]的测定方法,小鼠禁食12 h后,脱颈椎处死,迅速取出肝脏,在4℃下加入30倍体积生理盐水制成肝匀浆。向不同浓度的0.1 mL样品溶液中分别加入 100 μ mol/L 的 Vc、10 μ mol/L 的 FeSO4溶液各0.25 mL,pH为7.4、0.05 mol/L的磷酸盐缓冲液0.9 mL,肝匀浆0.5 mL,以不加Vc和FeSO4的反应体系作为对照。将上述反应体系在37℃中保温30 min,加入20%的三氯乙酸(TCA)1 mL终止反应,再加入显色剂0.67%的硫代巴比妥酸(TBA)1 mL,充分混匀后,100℃沸水浴显色反应,冰水浴终止显色反应,3 800 r/min离心15 min,取上清液,在532 nm波长测吸光度A。每个样品平行操作3次取平均值。样品对肝脂质过氧化抑制率的计算公式为:
大蒜不同极性萃取物经过减压浓缩,冷冻干燥,得到不同极性部位的样品,其得率和多酚含量见表1。由表1可知,由于溶剂极性不同对萃取产物的得率,萃取产物的成分组成有较大的影响,其中正丁醇萃取物得率和多酚的含量分别为(7.861±0.541)%和(3.784±0.023)%。
表1 不同极性部位的大蒜提取物得率和多酚含量Table 1 Yields and content of polyphenol of different fractions of garlic
DPPH是一种稳定的有机自由基,已经被广泛用来测定不同植物的抗氧化活性,因此可以通过测定样品对DPPH自由基的清除能力来评价抗氧化剂的性能[9-10]。由图1可以得出,大蒜不同极性萃取物对DPPH自由基均有一定的清除能力,其清除率与不同极性萃取物样品的质量浓度呈现良好的剂量-效应关系。在检测的浓度内(0.17~0.83 mg/mL):乙醇粗提物、石油醚、乙酸乙酯、正丁醇和水萃取物对DPPH的清除能力的线性相关系数 R2分别为0.964、0.989、0.971、0.975和0.946。正丁醇、乙酸乙酯和石油醚萃取物对DPPH自由基的半数清除率(IC50)分别为0.46、0.50和0.79 mg/mL;其清除 DPPH自由基活性均比粗提物的活性好,且有显著性差异(P<0.01)。多酚含量较高的正丁醇萃取物比其他各层萃取物清除DPPH自由基能力强。
图1 大蒜水提取物对DPPH自由基的清除作用(n=3)Fig.1 Scavenging activity against DPPH free radicals of different extracts from garlic(n=3)
抗氧化剂的还原力与其抗氧化性之间存在联系,还原能力的高低可以间接反映抗氧化能力的强弱,因此还原力检测被广泛用来检测植物药抗氧化活性[11-12]。由图2可知大蒜粗提物及其不同极性萃取物均有一定的还原能力,还原能力强弱次序为:正丁醇萃取物>乙酸乙酯萃取物>石油醚萃取物>粗提物>水萃取物。正丁醇萃取物的还原力明显优于粗提物和其它极性萃取物的活性,在显著性水平检验中正丁醇萃取物的还原力活性与其他样品之间均存在显著性差异(P<0.01)。在0~0.13 mg/mL的浓度范围内,正丁醇萃取物的还原力活性具有较好的线性浓度依赖关系(R2=0.996)。由试验结果可以得出,大蒜的粗提物通过不同极性溶剂分级后抗氧化活性成分多酚在正丁醇萃取物得到富集,这可能是正丁醇萃取物还原力活性明显优于其它样品的原因之一。
图2 大蒜提取物还原力活性测定结果(n=3)Fig.2 Reducing power of different extracts from garlic(n=3)
脂质过氧化是细胞膜上的多元不饱和脂肪酸的氧化降解过程。丙二醛(MDA)是脂质过氧化的中间产物之一,其含量的高低可反映机体内脂质过氧化的程度。抗氧化剂通过抑制脂质过氧化的发生减少MDA的生成。通过测定MDA的吸光度可以反映脂质过氧化抑制活性的大小,吸光度越小抗氧化剂对脂质过氧化的抑制作用就越强[13-14]。从图3可以看出,在检测的浓度范围内(0.125~0.625 mg/mL)不同的样品对脂质过氧化的抑制能力随浓度的增大呈逐步上升的趋势。石油醚萃取物,乙酸乙酯萃取物和正丁醇萃取物均有较好的肝脂质过氧化抑制活性且石油醚萃取物的抑制活性优于其他萃取物的活性。石油醚萃取物,乙酸乙酯萃取物和正丁醇萃取物的半数抑制浓度分别为0.20,0.39和0.36 mg/mL,在测定的浓度范围内粗提物和水萃取物部分均未得到半数抑制浓度。该测定结果与清除DPPH自由基和还原力活性的结果不同,可能是由于石油醚提取物的极性较小,更容易进入细胞膜进而抑制细胞膜上不饱和脂肪酸的氧化降解,降低了MDA的生成量,较其他萃取物更好地抑制了肝脂质过氧化。
图3 大蒜提取物对Fe2+-Vc诱导小鼠肝脂质过氧化的抑制(n=3)Fig.3 Inhibition effect of different extracts from garlic on liver lipid peroxidation(n=3)
采用体积分数80%乙醇回流提取、梯度萃取得石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物、正丁醇萃取物和水萃取物。通过DPPH自由基清除活性,还原力和肝脂质过氧化抑制活性评价分析了粗提物和不同极性萃取物的体外抗氧化活性。结果表明,大蒜粗提物和不同极性萃取物均有抗氧化活性,其抗氧化活性大小与样品具有较好的剂量-效应依赖关系。在不同抗氧化体系中,大蒜不同极性萃取物的抗氧化活性强弱不同,其中清除DPPH自由基和还原力的强弱一致大小次序均为:正丁醇萃取物>乙酸乙酯萃取物>石油醚萃取物>粗提物>水萃取物。肝脂质过氧化抑制活性的强弱顺序为:石油醚萃取物>正丁醇萃取物>乙酸乙酯萃取物>粗提物>水萃取物。在清除DPPH自由基和还原力的抗氧化活性测定中,得率和多酚含量较高的正丁醇萃取物具有较好的抗氧化活性。石油醚萃取物具有较好的肝脂质过氧化抑制活性,分析原因可能是由于采用的抗氧化体系不同,不同极性萃取物抗氧化成分的种类和结构有所差异。结果表明,与大蒜的乙醇粗提物和其他萃取物相比,正丁醇萃取物在清除DPPH自由基和还原力体外抗氧化模型中表现出较好的抗氧化活性,在肝脂质过氧化抑制活性模型中也表现出较好的抗氧化活性,是大蒜的活性部位,其抗氧化活性与多酚的含量呈正相关的关系。综上所述,得率和多酚含量较高的正丁醇萃取物具有较好体外抗氧化活性,作为天然抗氧化剂的开发研究具有开发利用价值。
参考文献
[1] 田莉,杨秀伟,陶海燕.大蒜化学成分的气-质联用分析[J].天然产物研究与开发,2006,17(5):533-538.
[2] 闫淼淼,许真,徐蝉,等.大蒜功能成分研究进展[J].食品科学,2010,31(5):312-318.
[3] Amagase H.Clarifying the real bioactive constituents of garlic[J].The Journal of Nutrition,2006,136(3):716S-725S.
[4] 杨德明.大蒜的药理研究概况[J].时珍国药研究,1991,2(4):185-187.
[5] 王毕妮,曹炜,高慧,等.红枣酱的体外抗氧化作用[J].食品与发酵工业,2012,38(7):128-131.
[6] Kallel F,Driss D,Chaari F,et al.Garlic(Allium sativum L.)husk waste as a potential source of phenolic compounds:Influence of extracting solvents on its antimicrobial and antioxidant properties[J].Industrial Crops and Products,2014,62:34-41.
[7] TIAN J,CHEN H,CHEN,S,et al.Comparative studies on the constituents,antioxidant and anticancer activities of extracts from different varieties of corn silk[J].Food &Function,2013,4(10):1 526-1 534.
[8] MA L,CHEN H,ZHANG Y,et al.Chemical modification and antioxidant activities of polysaccharide from mushroom Inonotus obliquus [J].Carbohydrate Polymers,2012,89(2):371-378.
[9] Kiselova Y,Ivanova D,Chervenkov T,et al.Correlation between the in vitro antioxidant activity and polyphenol content of aqueous extracts from Bulgarian herbs[J].Phytotherapy Research,2006,20(11):961-965.
[10] Matthäus B.Antioxidant activity of extracts obtained from residues of different oilseeds[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2002,50(12):3 444-3 452.
[11] Custódio L,Fernandes E,Escapa A L,et al.Antioxidant and cytotoxic activities of carob tree fruit pulps are strongly influenced by gender and cultivar[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2011,59(13):7 005-7 012.
[12] XING R,YU H,LIU S,et al.Antioxidant activity of differently regioselective chitosan sulfates in vitro[J].Bioorganic & Medicinal Chemistry,2005,13(4):1 387-1 392.
[13] Ferreira I C F R,Barros L,Soares M E,et al.Antioxidant activity and phenolic contents of Olea europaea L.leaves sprayed with different copper formulations [J].Food Chemistry,2007,103(1):188-195.
[14] LI X L,ZHOU A G,HAN Y.Anti-oxidation and anti-microorganism activities of purification polysaccharide from Lygodium japonicum in vitro[J].Carbohydrate Polymers,2006,66(1):34-42.