曹燕妮,王华川,王聪懿,朱深银,温剑虎*
(重庆医科大学附属第一医院1.药学部;2.胸心外科,重庆 400016)
慢病毒介导的Nestin基因沉默抑制人食管癌ECA109细胞增殖
曹燕妮1,王华川2,王聪懿2,朱深银1,温剑虎2*
(重庆医科大学附属第一医院1.药学部;2.胸心外科,重庆 400016)
目的 通过体外实验探讨沉默巢蛋白(Nestin)基因对人食管癌ECA109细胞增殖能力的影响及可能机制。方法 合成Lenti-Nestin慢病毒载体,实验设blank组、scrambled组和Lent-Nestin组,转染ECA109细胞,建立稳定沉默Nestin基因的细胞系Lenti-Nestin;用qRT-PCR和Western blot检测Nestin、c-myc和cyclin D1 mRNA和蛋白表达;CCK-8法检测细胞增殖能力;平板集落实验检测细胞的集落形成。结果 稳定沉默Nestin的细胞系构建成功;与blank组和scrambled组相比,Lent-Nestin组中NestinmRNA(P<0.01)和蛋白(P<0.05)水平明显降低;细胞增殖能力明显降低(P<0.01),集落形成能力显著下降(P<0.05);沉默Nestin表达后,c-myc、cyclin D1表达明显受到抑制(P<0.05)。结论 沉默Nestin基因表达可抑制人食管癌ECA109细胞的增殖能力,其可能通过调控c-myc、cyclin D1表达参与其中。
Nestin;食管癌;增殖;基因沉默
*通信作者(corresponding author):tiger001@163.com
食管癌是严重危害人类健康的消化道恶性肿瘤之一,其发病原因复杂,与患者的年龄、性别、家族史等有关[1],同时也与多种分子的异常表达密切相关[2],因此针对肿瘤相关分子的研究已成为当前的研究热点[3]。巢蛋白(nestin)定位于细胞质,主要在未分化及具有分裂能力的细胞中表达,近年来研究发现,其在肿瘤的发生发展过程中起着重要作用[4]。Nestin在人神经外胚层肿瘤、胶质瘤、黑色素瘤及食管癌等组织中呈高表达趋势[5],且与食管癌的发生、侵袭与转移能力的获得呈正相关[6]。本研究在此基础上,利用慢病毒介导的Nestin沉默载体(Lenti-Nestin)感染人食管癌 ECA109细胞,构建Nestin沉默的稳转细胞系,并观察沉默Nestin表达对ECA109细胞增殖能力的影响及可能机制,为食管癌早期诊断及综合治疗奠定实验基础。
Lenti-Nestin、scrambled序列及转染试剂(上海吉凯基因公司);胎牛血清、PRMI 1640培养基(Hy-Clone公司);anti-cyclin D1(Abcam公司);anti-Nestin(Sigma公司);anti-c-myc(Bioworld公司);Total RNA提取试剂盒(Omega公司);蛋白提取试剂盒和ECL发光试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司)。
人食管癌ECA109细胞(由重庆医科大学附属第一医院肿瘤研究中心储存)培养于含10%胎牛血清的RPMI1640培养基,在37℃、5%CO2培养箱中培养。感染前24 h,接种细胞2×105个于6孔板中培养24 h,当细胞汇合达到70% ~80%时,根据预实验结果选取含有干扰Nestin效果最佳序列(5'-GGACAAGAGAACCUGGAAATT-3')及阴性 scrambled序列的病毒液按MOI=10比例感染各分组细胞,24 h后更换培养基,72 h后观察绿色荧光强度,感染效率>80%时,扩大培养用于后续实验。实验分组为:blank组、scrambled组和Lenti-Nestin组。
收集对数增殖期的各组细胞,按照Total RNA提取试剂盒说明书提取细胞总RNA。采用SYBR Green法进行qRT-PCR,用于扩增Nestin目的片段的引物Nestin-F:5'-CTCCAAGAATGGAGGCTGTAGGA A-3',Nestin-R:5'-CCTATGAGATGGAGCAGGCAAG A-3';β-actin-F:5'-TGGCACCCAGCACAATGAA-3',β-actin-R:5'-CTAAGTCATAGTCCGCCTAGAAAGCA-3'。反应条件:95℃预变性3 min,95℃变性15 s,55℃退火 20 s,72℃延伸20 s,39个循环;采用2-△△Ct法计算并分析。
收集对数增殖期的各组细胞,加入细胞裂解液提取总蛋白,BSA法测定蛋白浓度,加入适量上样缓冲液于100℃煮沸变性5 min;每孔50 μg,80 V恒压SDS-PAGE电泳,250 mA恒流2 h冰浴电转至PVDF膜,5%脱脂牛奶室温封闭2 h,加入一抗(Nestin 1∶500、β-actin 1∶3 000、c-myc 1∶500、cyclin D1 1∶1 000)4℃过夜,次日 TBST漂洗10 min×3次,加入HRP标记的二抗(1∶3 000)室温孵育1 h,TBST漂洗10 mim×3次,ECL化学发光显影。
收集对数增殖期的各组细胞,计数重悬,按2000个/孔接种于96孔培养板中,待细胞贴壁后记为0 h,分别在 0、24、48、72 和 96 h 加入 10 μL CCK-8工作液,37℃孵育2 h后,在450 nm处测定吸光度值。
收集对数增殖期的各组细胞,计数重悬,按2 000个/孔接种于6孔培养板中,37℃、5%CO2培养,2~3 d换液,10 d后取出,甲醇固定30 min,1%结晶紫染色15 min,PBS漂洗后拍照。
采用SPSS 13.0统计软件分析,各组实验数据以均数±标准(±s)表示,组间比较采用单因素方差分析和t检验。
将Lenti-Nestin及scrambled组慢病毒感染人食管癌ECA109细胞培养72 h后,荧光显微镜观察感染效果,荧光比例达80%以上(图1)时,提示感染成功且稳定表达,可用于后续实验。
图1 荧光观察慢病毒Lenti-Nestin和scrambled感染人食管癌ECA109效率Fig 1 The expression of fluorescence protein in ECA109 cells infected with lentivirus Lenti-Nestin and scrambled(×200)
与blank组和scrambled组相比,Lenti-Nestin组中Nestin基因的表达水平明显下调(P<0.05,P<0.01)(图2,3)。
图2 qRT-PCR检测Nestin mRNA表达水平Fig 2 Expression of Nestin mRNA was detected by qRT-PCR(±s,n=3)
与blank组和scrambled组相比,Lenti-Nestin组中细胞增殖速率明显下降(P<0.05,P<0.01)(图4)。
与blank组和scrambled组相比,Lenti-Nestin组中细胞克隆团数明显减少(P<0.05)(图5)。
图3 Western blot检测Nestin蛋白表达水平Fig 3 Expression of Nestin protein was detected by Western blot(±s,n=3)
图4 CCK-8测定沉默Nestin基因表达对ECA109细胞增殖的影响Fig 4 ECA109 cells were infected with Lenti-Nestin or scrambled lentivirus and cell proliferation was evaluated by CCK-8 assay(±s,n=3)
Lenti-Nestin组中c-myc、cyclin D1蛋白表达水平明显低于 blank组和scrambled组(P<0.05)(图6)。
图5 平板集落实验检测沉默Nestin对ECA109细胞集落形成能力的影响Fig 5 Colony forming capacity of silencing Nestin expression in ECA109 cells were detected by colony formation assay(±s,n=3)
肿瘤细胞的过度增殖是一个多步骤、多阶段演变的过程,是恶性肿瘤重要的生物学特性之一。近年来研究发现,在肿瘤细胞的增殖过程中众多基因的表达发生了改变或异常,c-myc、cyclin D1在多种肿瘤组织中表达增高[7],其作为 Wnt、ERK 等信号通路下游重要靶基因,促进肿瘤细胞的增殖[8]。而c-myc、cyclin D1基因表达的下调能明显抑制肿瘤细胞的增殖能力[9-10]。
巢蛋白(nestin)作为中间丝蛋白参与调控细胞周期、细胞分化及细胞的变形、运动等重要的生理过程,同时也在肿瘤的发生与发展过程中起着重要作用。Nestin可通过激活Wnt信号通路,促进乳腺癌细胞的增殖及侵袭的发生[11],影响FAK和整合素的定位和功能,进而调控前列腺癌细胞侵袭能力[12]。本实验采用RNAi技术将载有Nestin干扰序列的慢病毒 Lenti-Nestin感染 ECA109细胞,构建Nestin沉默的稳转细胞系,并检测NestinmRNA和蛋白在Lenti-Nestin组细胞中的表达。结果显示,Nestin表达水平明显下调,提示Nestin基因被有效沉默。而稳定沉默Nestin细胞系的成功构建为基因的靶向治疗提供稳定、持久的有力工具。Lenti-Nestin组中沉默Nestin基因表达后,ECA109细胞的增殖、集落形成能力明显受到抑制,提示食管癌中高表达的Nestin与肿瘤的恶性增殖密切相关。为了揭示沉默Nestin导致增殖能力下降的原因,进一步检测了c-myc、cyclin D1 蛋白表达,结果显示 c-myc、cyclin D1表达水平明显降低,提示Nestin可能通过调控其表达而影响食管癌的增殖能力。而Nestin如何靶定其相关信号通路分子来介导这一过程目前尚未清楚,有待更进一步的研究。
图6 沉默Nestin基因对cyclin D1、c-myc蛋白表达的影响Fig 6 Expression of cyclin D1 and c-myc protein was detected by Western blot(±s,n=3)
综上所诉,食管癌中高表达的Nestin参与了食管癌细胞的恶性增殖,随着对该基因功能及机制研究的完善,Nestin将成为诊断和预测食管癌的分子标志物和食管癌治疗的新靶点。
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SilencingNestinexpression mediated by lentivirus inhibits human esophageal cancer ECA109 cell proliferation
CAO Yan-ni1,WANG Hua-chuan2,WANG Cong-yi2,ZHU Shen-yin1,WEN Jian-hu2*
(1.Dept.of Pharmacy;2.Dept.of Cardiothoracic Surgery,Chongqing Medical University,Chongqing 400016,China)
ObjectiveTo investigate the effect ofNestingene silencing on the proliferation of human esophageal cancer ECA109 cells and possible mechanism.MethodsLenti-Nestinwas constructed and transfected into ECA109 cells to establish a stable Nestin-silencing cell line Lenti-Nestin.Blank group,scrambled group,Lenti-Nestingroup were set up.The expressions of Nestin,c-myc and cyclin D1 mRNA and protein levels were detected by qRT-PCR and Western blot.The cell proliferation was analyzed by CCK8 assay.ResultsThe stable Nestin-silencing cell line was successfully established.The expression ofNestinmRNA(P<0.01)and protein(P<0.05)levels were reduced significantly and the downregulation evidently suppressed cell proliferation(P<0.01)and colony forming capacity(P<0.05)compare with the scrambled group and blank group.However,The c-myc and cyclin D1 expression levels in ECA109 cells in Lenti-Nestingroup were significantly lower than that of scrambled group and blank group(P<0.05).ConclusionsKnockdownNestinexpression significantly inhibits the level of esophageal cancer ECA109 cells proliferation,which may act via influencing the expression of c-myc,cyclin D1.
Nestin;esophageal;proliferation;gene silencing
R735.1;R394.3
A
10.16352/j.issn.1001-6325.2015.09.013
1001-6325(2015)09-1214-05
2015-02-11
2015-04-27
重庆市卫生局重点科研项目(200821H)