胃癌组织中COX-2与PTEN的表达及临床病理的关系

2015-03-22 08:38丁涤非韩晓婷陆笼辉
淮海医药 2015年5期
关键词:磷酸酶胃癌淋巴结

丁涤非,胡 凯,方 萍,韩晓婷,陆笼辉

胃癌是世界范围内引起恶性肿瘤死亡的主要疾病。最新统计[1]显示,在2003-2007年中国胃癌发病率居恶性肿瘤第2位,男性高于女性;同期胃癌死亡率居恶性肿瘤死因第3 位,男性亦高于女性。早期胃癌多无症状,或者仅有一些非特异性消化道症状,因此仅凭临床症状,诊断早期胃癌十分困难。进展期胃癌患者生存率低,复发率高[2-4]。第10 号染色体同源丢失性磷酸酶和张力蛋白基因(phosphatase and tensin homolog deleted on chromosome ten,PTEN)是一种抑癌基因,近年来研究[5]发现,该基因的缺失表达与人类多数恶性肿瘤发生、发展及转移密切相关。PTEN 抑癌基因,其表达的蛋白具有双磷酸酶活性,可以通过脱磷酸作用调节多种信号传导系统,PTEN 可通过使磷酸肌醇(PI3K)去磷酸化,拮抗PI3K/AKT 信号传导通路,调节细胞的凋亡,抑制细胞的增殖,还可以通过下调黏着斑激酶(FAK)的活性抑制细胞的黏附,浸润和转移,通过促分裂原活化蛋白(MAPK)途径抑制细胞的分化。人环氧化酶(cyclooxygenase cyclooxygenase-2,COX-2)基因定位于1号染色体q25.2~25.3 上,由10 个外显子和9 个内含子构成,为编码603~604 个氨基酸组成的多肽,被认为是“快速反应基因”。COX-2 具有促进炎症反应、促进细胞增殖、抑制细胞凋亡、抑制免疫功能、诱导肿瘤血管形成,促进肿瘤细胞浸润、转移等功能[6]。本研究用免疫组化法联合检测胃癌组织中两者的表达,以探讨其表达水平与胃癌的发生、发展及转移的关系,及胃癌中COX-2 与PTEN 的表达的相关性。

1 资料与方法

1.1 病理资料 随机选取从2009年5月-2011年5月我院手术后经病理证实为胃癌的资料80 例,癌旁组织80 例,男55例,女25 例,年龄35~78 岁,平均年龄(53.4 ±3.4)岁。年龄≥50 岁52 例,<50 岁28 例。根据美国恶性肿瘤联合委员会(AJCC 第7 版)2011年NCCN 指南胃癌PTNM 分期法进行临床分期:Ⅰ期+Ⅱ期(28 例)、Ⅲ期(52 例),无Ⅳ期患者。28例无淋巴结转移,52 例淋巴结有转移。按分化程度分成三型:高中分化30 例,低分化50 例。标本经福尔马林固定、石蜡包埋、切片,分别作COX-2 HE 染色、PTEN HE 染色。所有胃癌患者术前均未接受放化疗,均为第一次手术。癌旁组织为正常组织。

1.2 实验方法 本试验采用免疫组织化学Elivision 方法。鼠抗人COX-2 单克隆抗体、鼠抗人PTEN 单克隆抗体均购自北京博奥森生物技术公司,Elivision 检测试剂盒购自福建迈新生物技术开发有限公司。免疫组化染色严格按照Elivision试剂盒说明书操作步骤进行,阳性对照选用已知阳性胃癌切片,用PBS 代替一抗做阴性对照。

1.3 免疫组化染色结果判定 采用SP 免疫组织化学方法检测,均设阴性及阳性对照,观察阳性反应采用双盲法。PTEN免疫组化染色阳性判定标准为细胞质或细胞核中出现棕黄色颗粒。两位病理科医师随机选择10 个高倍镜视野,每个视野计数100 个细胞,计算阳性细胞的百分率,阳性细胞的百分率<10%为阴性(-);百分率>10%为阳性,结果拍摄成像。

1.4 统计学方法 应用SPSS17.0 统计软件包进行统计分析;计数资料采用χ2检验或Fisher’s 确切概率分析;PTEN 和COX2 的相关性采用Spearman 等级相关分析;取P<0.05 具有统计学意义。

2 结果

本组80 例胃癌中PTEN 阳性表达有33 例,阳性表达率为41.3%,癌旁组织阳性表达有64 例,阳性表达率为80%,差异具有显著性(P<0.05);80 例胃癌中COX-2 阳性表达有56例,阳性表达率为70%,在癌旁组织阳性表达有12 例,阳性表达率为6%,差异具有显著性(P<0.05)。

2.1 胃癌组织中PTEN、COX-2 与临床病理间的指标关系见表1、表2。

表1 PTEN 与临床病理间的指标关系

2.2 PTEN 和COX-2 在胃癌中的相关性 80 例胃癌组织中PTEN 和COX-2 蛋白双阳性表达15 例,双阴性表达4 例,PTEN(+)COX-2(-)18 例,PTEN(-)COX-2(+)43 例,两者的表达强度呈明显负相关(r=-0.508,P=0.003<0.05),即胃癌组织中COX2 表达愈强,PTEN 蛋白表达就愈弱,反之亦然。见图1~图6。

表2 COX-2 与临床病理间的指标关系

3 讨论

胃癌是消化系统常见的恶性肿瘤之一,其发生和发展是一个复杂的过程,激活原癌基因和肿瘤抑制基因失活,和其他或更多的分子水平上的变化密切相关。PTEN 是1997年Tamura M 等[7]克隆到的抑癌基因,其位于染色体人类10 号染色体的长臂(10q23.3)上。肿瘤抑制因子PTEN 是具有序列相似性的细胞骨架蛋白张力磷酸酶。PTEN 基因过表达抑制细胞迁移,而反义PTEN 促进转移。同时具有磷酸酪氨酸磷酸酶和双重特异性磷酸酶是PTEN 的结构特点同时有磷酸酪氨酸磷酸酶和双特异性磷酸酶是PTEN 的结构特点。研究显示PTEN 的抑癌机制为诱导细胞周期停止和程序性细胞死亡,调节细胞粘连、迁移和分化,抑制血管的生成[8]。研究显示[9]PTEN 可通过粘着斑激酶(focal adhesion kinase(FAK))参与PTEN/PI3K/AKT 信号途径,导致肿瘤的侵袭和转移。PTEN 抑癌活动在很大程度上取决于其脂质磷酸酶活动,反义PI3K/AKT 激活。而在许多肿瘤疾病中有PTEN 的基因的突变,如甲状腺癌、胶质母细胞癌、前列腺癌、乳腺癌、黑色素瘤等。

近年来COX-2 在多种肿瘤中表达情况受到关注,许多研究[10]证实COX-2 和肿瘤血管生成之间存正相关关系。COX-2 能增加VEGF 的表达、整合素调节内皮细胞,纤溶胶原酶激活因子,间质胶原酶和各种蛋白水解酶活化因子表达式,促进细胞外的退化,增加微血管通透性,和监管活动的HIF-1α 和Survivin,KGF 协同促进胃癌血管生成[11],从而为肿瘤及转移提供适合的基础口侵润及转移。COX-2 通常被发现在许多类型的肿瘤组织包括食道、胃、结肠、肝脏、胆道系统、胰腺癌、乳腺癌、肺癌、膀胱癌[12]。现研究已从多方面证明COX-2 在多种恶性肿瘤中表达上调,并与肿瘤的发生及侵袭转移密切有关。COX-2 可以通过刺激肿瘤细胞增殖,抑制细胞凋亡和抑制人体的免疫功能,可以通过促进血管形成参与转移癌前病变的肿瘤。王晓英等的研究表明COX-2 和PTEN 基因表达与胃癌浸润程度高度相关性,可能具有评价胃癌浸润程度的潜在价值[13]。

图1 COX-2 在癌组织中的阳性表达(Elivision 法×100)

图2 COX-2 在癌组织中的阳性表达(Elivision 法×400)

图3 COX-2 在癌旁组织中的阴性表达(Elivision 法×400)

图4 PTEN 在癌旁组织中的阳性表达(Elivision 法×400)

图5 PTEN 在胃癌组织中的阴性表达(Elivision 法×100)

图6 PTEN 在癌组织中的低表达(Elivision 法×400)

本研究显示,胃癌组织中COX-2 的表达阳性率为70.00%,较癌旁组织中COX-2 的表达明显升高,且与肿瘤的分化程度、淋巴结转移、临床分期相关,该研究提示COX-2 可能参与了胃癌的发生、发展及转移,可能是胃癌发生的一个早期事件和预后不良的指标。本实验研究结果显示胃癌中PTEN 的阳性表达率(41.3%)显著低于正常胃组织(80.0%)(P<0.01),且淋巴结转移组中PTEN 表达明显低于无淋巴结转移组,之间差异具有统计学意义(P<0.01)。这与Ettl 等在涎腺癌中的研究结果一致,推测PTEN 蛋白可能对肿瘤细胞的迁移有抑制作用,是胃癌转移的负相关因子。

综上所述,抑癌基因PTEN 的缺失表达和COX-2 的过表达在胃癌的发生、发展过程中可能起重要作用。胃癌组织中与正常组织中PTEN 基因的表达有统计学意义,胃癌组织中与正常组织中COX-2 基因表达有统计学意义。这可能说明胃癌的发生与发展和这两种基因密切相关。COX-2 与PTEN 在胃癌组织中的表达呈负相关,说明这两因子与肿瘤的淋巴结转移密切相关,在肿瘤的进展中起到一定的负相关作用。但PTEN 如何在信号转导通路中调控COX-2 因子仍有待进一步研究。对COX-2 和PTEN 的深入探讨有望为胃癌发病机制的研究及治疗提供新靶点。联合检测PTEN 和COX-2 蛋白表达可能成为胃癌淋巴结转移预测指标及判断预后的重要指标。

[1]邹小农,孙喜斌,陈万青,等.2003-2007年中国胃癌发病与死亡情况分析[J].肿瘤,2012,32(2):109-114.

[2]Bray F,Ren JS,Masuyer E,et al.Global estimates of cancer prevalence for 27 sites in the adult population in 2008[J].Int J Cancer,2013,132(5):1133-1145.

[3]Cunningham D,Allum WH,Stenning SP,et al.Perioperative chemotherapy versus surgery alone for resectable gastroesophageal cancer[J].N Engl J Med,2006,355(1):11-20.

[4]Macdonald JS,Smalley SR,Benedetti J,et al.Chemoradiotherapy after surgery compared with surgery alone for adenocarcinoma of the stomach or gastroesophageal junction[J].N Engl J Med,2001,345(10):725-730.

[5]Depwski PL,Rosenthal SI,Roes JS.Loss of expression of the PTEN gene protein product is associated with poor outcome in breast cancer[J].Mod Pathol,2001,14(7):672-676.

[6]Stasinopoulos I,Shah T,Penet MF,et a1.COX-2 in cancer;Gordian knot or A chilles heel[J].Front Pharm acol,2013,28(4):34.

[7]Tamura M,Gu J,Matsumoto K,et al.Inhibition of cell migration,spreading,and focal adhesions by tumor suppressor PTEN[J].Science,1998,280(5369):1614-1617.

[8]Zeng JC,Lin GP,Zhou KY.PTEN signaling pathways and tumor related research progress[J].Journal of Guangdong Medical College,2010,28(2):193-196.

[9]王知力,郭双平,王文亮.PTEN 基因的研究进展[J].临床与实验病理学杂志,2001,23(7):339-341.

[10]Kale S,Raja R,Thorat D,et a1.Osteopontin signaling upregulates cyclooxygenase-2 expression in tumor-associated macrophages leading to enhanced angiogenesis and melanoma growth via α9β1 integrin[J].Oncogene,2013,3(10):1038.

[11]王一斐,孙 健,李 琦.环氧化酶-2 在胃癌血管生成中作用的研究进展[J].实用医学杂志,2013,29(23):3832-3833.

[12]Liu ZQ,Jiang ZH,Liu L,et a1.Mechanisms responsible for poor oral bioavailability of paeoniflorin:Role of intestinal disposition and interactions with sinomenine[J].Pharm Res,2006,23(12):2768-2780.

[13]王晓英,屈昌民,梁淑文.COX-2 和PTEN 表达与胃癌浸润程度的关系[J].中国老年学杂志,2013,33(20):4985-4987.

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