乌江上游毕节段溶洞地下水浮游硅藻及水质分析

2015-03-12 17:40孙丹支崇远李娅
江苏农业科学 2015年2期
关键词:物种多样性溶洞

孙丹 支崇远 李娅

摘要:对乌江上游毕节段层台镇玉龙村溶洞的3个采样点进行野外水样采集,利用硅藻细胞密度、多样性指数、均匀度指数及硅藻商等指标评价溶洞地下水水质现状。结果表明,溶洞地下水中共发现硅藻18 属107 种(含变种),平均细胞密度为1.59×104个/L,硅藻群落结构为物种较丰富、细胞密度较低、多样性较高。洞口1、洞口3共有的硅藻种类较多,可能是洞口1、洞口3的水环境特征相似,洞口2水环境可能受人为干扰影响。溶洞地下水质为贫营养状态,水体清洁。

关键词:浮游硅藻;优势种;物种多样性;溶洞

中图分类号: Q178.1文献标志码: A文章编号:1002-1302(2015)02-0323-03

收稿日期:2014-10-14

基金项目:国家自然科学基金(编号:41062005、30560011);贵州省科技基金(编号:黔科合外G字[2012]7023);贵州省科技厅科技支撑计划(编号:黔科合SY字[2012]3178)。

作者简介:孙丹(1988—),女,吉林松原人,硕士研究生,主要从事湿地生态学研究。E-mail:719479994@qq.com。

通信作者:支崇远,博士,教授,从事硅藻生理生态学研究。E-mail:zhicyy@qq.com。喀斯特溶洞是由溶蚀作用形成的,洞中的水有溶蚀、侵蚀作用[1]。溶洞地下水与河流、湖泊等地表水有一定的区别。硅藻分布非常广泛,在淡水、半咸水、海水、陆地上都能生存。硅藻是一种低等的单细胞藻类植物,个体微小,体长一般在1~200 μm。硅藻种类多、生命周期短、繁殖快、属种丰富,对环境因子变化十分敏感,国内外已将硅藻作为水质监测的重要指标[2-6]。关于应用硅藻对溶洞地下水质进行分析的研究很少[7-8]。本研究以贵州省毕节市七星关区层台镇玉龙村溶洞地下水为对象,分析溶洞地下水中浮游硅藻群落的组成及分布,旨在为浮游硅藻种群多样性研究提供理论基础。1材料与方法

1.1采样地点

玉龙洞位于乌江上游毕节段层台镇玉龙村,分布于整个村。依据玉龙洞在乌江上游毕节段的特点,依次在洞口1(位于村头)、洞口2(位于农户住宅旁)、洞口3(位于山上)(图1)3个采样点采集样品。洞口均较小,洞口的水流速度比较快,洞口1、洞口3周边植物繁茂,洞口2附近有人居住。洞壁潮湿,洞内温度较洞外低。

1.2样品的处理

在洞口1、洞口2、洞口3采样点分别取自然状态水1 000 mL。

1.2.1钙质、泥沙处理加入一定量浓度为12 mol/L的盐酸溶液,利用乙醇灯对试验器皿持续加热至不产生气泡为止。

1.2.2有机质、其他藻类处理加入一定量的浓硫酸溶液,加热至不起泡为止。

1.2.3样品提取向样品中注入蒸馏水,自然冷却;待硅藻沉积在容器底部,使用真空水泵吸除烧杯上清液;多次重复此操作,至溶液最终pH值为7左右。

1.2.4样品存放根据样品硅藻密度,将硅藻溶液定容至50 mL备用。

1.2.5标本制作从制得的硅藻样品中提取500 μL样本置于18 mm×18 mm盖玻片上,使用ZCY胶将样本制成硅藻永久制片,干燥。

1.3硅藻鉴定与统计

使用50iBas尼康生物相差光学显微镜(DIC)对溶洞中的硅藻进行鉴定,统计硅藻的壳面数量。 结合国际权威硅藻图谱、《中国淡水藻类》及《中国淡水藻志》第4卷、第10卷、第12卷鉴定硅藻属种[9-13]。分别计算硅藻的物种数以及每物种个体数,每个样品计数3片,各片之间数值差距小于等于15%,如果误差大于15%,则相应增加计数片数,取其平均值。

1.4方法

硅藻细胞密度(N)计算公式如下:

N=n×V1/V2×V3。(1)

式中:V1为浓缩样体积(mL),V2为计数体积(mL),V3为采样体积(mL),n为个体数[14]。

Berger-Parker 物种优势度指数(I) 计算公式如下:

I=ni/N。(2)

式中:I为物种的优势度,N为样品的个体总数,ni为第i种物种的个体数。当优势度I≥0.1时,该物种即为优势属或优势种。

硅藻生物多样性指数(H)计算公式如下:

H=-∑(ni/N)×ln(ni/N)。(3)

式中:n为样点第i种硅藻个体数,N为样点中的硅藻总个体数[15-16]。H>3代表清洁水质,2

D=(S-1)/lnN。(4)

式中:D代表Margalef 多样性指数,S代表硅藻种类数,N代表硅藻个体总数。D>6代表清洁水,4≤D≤6代表水质轻度污染,3≤D<4代表水质中度污染,D<3代表水质重度污染。

E=H/log2S。(5)

式中:H为Shannon-Weaver多样性指数,S为种类数。当 00.8代表无污染。

硅藻商(Q)=中心纲硅藻种数/羽纹纲硅藻种数。(6)

当Q≥1 时代表水体富营养化; Q<1 时代表水体贫营养。

2结果与分析

2.1水质理化指标

由表1可知,各采样点氧化还原电位由高到低依次为洞口2>洞口3>洞口1;无机磷、无机氮含量最大值均出现在洞口2,说明洞口2水质较洞口1、洞口3差,这主要是因为该采样点位于村内,容易被生活污水等污染。

2.2硅藻的组成及分布

本研究共计发现硅藻107种(含变种、变型),隶属2纲9科18属(表2)。其中,羽纹纲物种较丰富,共8科17属104种,占总种数的97.20%;中心纲1科1属3种,占总种数的

2.3不同采样点硅藻的优势种

浮游硅藻优势种在水生态系统中有重要作用,不同优势种的组成、变化、优势度可以很好地反映水质。3个洞口的优势属种分布特征不同(表3),洞口1的优势属为曲壳藻属(Achnanthes)、舟形藻属(Navicula);洞口2的优势属为桥弯藻属(Cymbella)、曲壳藻属(Achnanthes)、卵形藻属(Cocconeis)、舟形藻属(Navicula);洞口3的优势属为菱形藻属(Nitzschia)、桥弯藻属(Cymbella)、曲壳藻属(Achnanthes)、舟形藻属(Navicula)。研究表明,桥弯藻属(Cymbella)、曲壳藻属(Achnanthes)、卵形藻属(Cocconeis)、小环藻属( Cyclotella )、Achnanthes minutissima是水质清洁的指示属种[17]。研究区域主要优势种为Achnanthes minutissima var.jackii和Navicula parablis,硅藻在各采样点的优势属、优势种多数为清洁指示种,由此可见,各采样点水质良好。

2.4硅藻细胞密度

溶洞地下水硅藻细胞密度为1.08×104~1.95×104个/L,平均值为1.59×104个/L。洞口1硅藻细胞密度最大值为 1.95×104个/L,洞口2的细胞密度最小值为1.08×104个/L,洞口3的细胞密度1.73×104个/L。水体中浮游硅藻密度<30×104个/L为贫营养,30×104~100×104个/L为中营养,>100×104个/L为富营养[18]。溶洞地下水浮游硅藻的密度小于30×104个/L,故溶洞地下水为贫营养。

2.5硅藻多样性指数及硅藻商

由表4可见,采样点硅藻多样性指数H为2.733 7~4228 5,其中最高值出现在洞口1,最低值出现在洞口2;丰富度指数D为5.849 2~14.919 5,其中最高值出现在洞口1,最低值出现在洞口2;均匀度指数E为0.604 3~0.699 6,其中最高值出现在洞口1,最低值出现在洞口2;硅藻商Q值为0.022 2~0.087 0,其中最高值出现在洞口2,最低值出现在洞口3。H>3为清洁水质,D>6为清洁水质,0.5

3结论与讨论

3.1溶洞地下水硅藻群落结构特征

本调查表明,溶洞地下水中共发现硅藻18 属107 种(含变种),平均细胞密度为1.59×104个/L,硅藻群落结构为物种较丰富、细胞密度较低和多样性较高[19-23]。溶洞地下水中硅藻以曲壳藻属(Achnanthes)和舟形藻属(Navicula)2个属为优势属,曲壳藻Achnanthes minutissima var. jackii (Rabenhorst) Lange-Bertalot、舟形藻Navicula parablis Hohn & Hellerman为优势种。不同采样点溶洞地下水中硅藻分布特征不同,洞口1硅藻为67种,洞口2为22种,洞口3为46种。各采样点均出现的硅藻种类有曲壳藻属(Achnanthes)、舟形藻属(Navicula)、脆杆藻属(Fragilaria)、卵形藻属(Cocconeis)、桥弯藻属(Cymbella),其中,洞口1、洞口3共有的硅藻种类较多,可能是洞口1、洞口3的水环境特征相似,洞口2水环境可能受人为干扰影响。

3.2喀斯特溶洞水质现状

3个采样点中,洞口2的水质较其他2个采样点差,这可能与村民日常生活有关。我国喀斯特溶洞繁多,具有很大的开发价值和研究价值。因此,应对溶洞水质进行长期连续监测,建立合理的保护方案,避免溶洞生态系统受到破坏。本研究中喀斯特溶洞平均硅藻商为0.046 5,均匀度指数等于0.643 6。溶洞地下水水质为贫营养状态,水质清洁。但是多样性指数仅定量考虑了群落的物种数及其个体数,未涉及物种与生态因子之间的关系,因此不能揭示水体的具体水污染类型。 在评价水体水质时,还应结合其他生物学及理化指标。

参考文献:

[1]何才华,王宗艳. 洞穴环境与洞穴旅游[J]. 贵州师范大学学报:自然科学版,2005,23(1):46-50.

[2]郭云,赵宇中,张波,等. 乌江中上游水体营养状况底栖硅藻指示性属种的研究[J]. 中国环境监测,2010,26(6):80-84.

[3]Battarbee R W,Flower R J,Juggins S,et al. The relationship between diatoms and surface water quality in the hoylandet area of Nord-Trondelag,Norway[J]. Hydrobiologia,1997,348(1/2/3):69-80.

[4]Vuorio K,Lagus A,Lehtimaki J M,et al. Phytoplankton community responses to nutrient and iron enrichment under different nitrogen to phosphorus ratios in the northern Baltic Sea[J]. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,2005,322(1):39-52.

[5]刘俊琢,张成君.硅藻指数在水环境监测与评价中的应用[J]. 环境监测管理与技术,2009,21(5):12-16.

[6]Kelly G M. Use of the trophic diatom index to monitor eutrophication in rivers[J]. Water Research,1998,32(1):236-242.

[7]李国忱,刘录三,汪星,等. 硅藻在河流健康评价中的应用研究进展[J]. 应用生态学报,2012,23(9):2617-2624.

[8]刘明,王倩,马健荣,等. 贵阳天河潭旱洞硅藻生物多样性与环境初步研究[J]. 中国岩溶,2009,28(3):324-328.

[9]胡鸿钧,魏印心. 中国淡水藻类——系统、分类及生态[M]. 北京:科学出版社,2006.

[10]胡鸿钧,李尧英,魏印心,等. 中国淡水藻类[M]. 上海:上海科学技术出版社,1979.

[11]齐雨藻,中国科学院中国孢子植物志编辑委员会. 中国淡水藻志:第4卷:硅藻门中心纲[M]. 北京:科学出版社,1995.

[12]齐雨藻,李家英,谢淑琦,等. 中国淡水藻志:第10卷:硅藻门羽纹纲[M]. 北京:科学出版社,2004.

[13]施之新. 中国淡水藻志:第12卷:硅藻门异极藻科[M]. 北京:科学出版社,2004.

[14]邓洪平,陈锋,王明书. 嘉陵江南充段硅藻群落结构及水环境分析[J]. 水生生物学报,2008,32(4):586-591.

[15]章宗涉,龚循矩. 微型生物监测新技术[M]. 北京:中国建筑工业出版社,1990.

[16]朱为菊,王全喜. 滴水湖浮游植物群落结构特征及对其水质评价[J]. 上海师范大学学报:自然科学版,2011,40(4):405-410.

[17]邓迪勇,卢伟,陶敏.硅藻在水环境监测中的指示作用及研究进展[J]. 环境科学与技术,2009,32(12):222-225.

[18]胡芳,刘桢. 湘江长沙段浮游藻类动态监测与水质评价[J]. 环境科学与管理,2012,37(2):111-113.

[19]邓洪平,陈锋,王明书,等. 嘉陵江下游硅藻群落结构及物种多样性研究[J]. 水生生物学报,2010,34(2):330-335.

[20]辛晓云,杨文杰,张红,等. 内蒙古岱海水质的硅藻生物指数评价[J]. 山西大学学报:自然科学版,2000,23(3):263-266.

[21]辛晓云. 河南南湾水库浮游硅藻的种群结构与水质污染评价初步研究[J]. 生态学杂志,2003,22(5):125-126.

[22]高亚辉,虞秋波,齐雨藻,等. 长江口附近海域春季浮游硅藻的种类组成和生态分布[J]. 应用生态学报,2003,14(7):1044-1048.

[23]杨清良. 台湾海峡西侧浮游硅藻类的种类组成与分布[J]. 海洋学报,1995,17(2):99-107.于雷,李晓蒙,张作明,等. 硫源对高温厌氧产氢菌Caldicellulosiruptor changbaicum发酵产氢的影响[J]. 江苏农业科学,2015,43(2):326-328.endprint

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