心力衰竭与细胞凋亡研究进展

2015-01-22 11:51旭,金娟,刘
中西医结合心脑血管病杂志 2015年3期
关键词:心肌细胞线粒体家族

张 旭,金 娟,刘 莉

1972年Kerr最先提出细胞凋亡的概念,是细胞死亡形式之一,是指细胞在一定的生理或病理条件下,受内在遗传机制的控制自动结束生命的过程。在充血性心力衰竭(CHF)发生、发展过程中出现的许多病理因素(如氧化应激、压力或容量负荷过重、肾上腺素、血管紧张素Ⅱ、致炎细胞因子、缺血、缺氧等)均可诱导心肌细胞凋亡[1,2]。人心肌细胞的凋亡造成心肌细胞散在丢失,当心肌细胞广泛丢失时,就会损害心室功能导致心力衰竭。心肌细胞大量丢失引发维持内环境稳态的代偿机制,例如左心室肥大、左心室扩张,以及交感神经系统和肾素-血管紧张素系统活性增强。这些代偿机制反而成为加剧心力衰竭的因素。此外,心肌细胞凋亡参与心力衰竭的心肌重构,心肌细胞、胶原网架和血管床发生了一些改变,即心室重构。

1 心力衰竭过程中心肌凋亡的途径

凋亡由心力衰竭过程中心肌凋亡的途径外源性途径(涉及细胞表面死亡受体)和内源性途径(涉及线粒体和内质网)两条通路介导。死亡配体结合死亡受体时,外源性途径被激活,随后触发形成死亡诱导信号复合体(DISC)。半胱天冬酶8在DISC内被激活,然后剪切并激活下游的半胱天冬酶原。半胱天冬酶8也能剪切只含BH3结构域的蛋白Bid,后者的羧基部分转位到线粒体,触发线粒体凋亡事件。内源性途径则被多种生物、化学和物理刺激所激活。这些信号被促凋亡蛋白Bcl-2家族的Bax和只含BH3结构域的蛋白传递到线粒体和内质网。死亡信号触发线粒体向细胞质中释放促凋亡物质,其中包括细胞色素C。胞质细胞色素C触发形成第二个多蛋白复合体——凋亡体。半胱天冬酶原9在凋亡体中被激活,随后剪切并激活下游的半胱天冬酶原。下游的半胱天冬酶剪切数百种细胞蛋白,并致细胞凋亡。

2 心力衰竭过程中参与凋亡的重要蛋白因子

2.1 Fas/FasL Fas即CD59分子,属于TNF/神经生长因子受体家族,亦是一种跨膜蛋白。人Fas基因定位于第10号染色体(10q24)上,基因长度为2534bp,含8个内含子和9个外显子,编码319个氨基酸[3]。Fas基因分子结构由细胞外的N末端、中间的膜区及细胞内区3个部分组成。其中跨膜区位于分子中部,具有细胞凋亡信号传导作用,被称为死亡结构域。FasL是Fas的配体,是细胞表面的一种膜蛋白,抗Fas抗体、FasL或血浆sFasL均可与靶细胞表面的Fas结合,通过信号转导途径,最终诱导凋亡。死亡受体Fas在心血管疾病的发生和发展中有着重要作用。Fas配体首先结合到同源受体上,诱导受体簇和死亡受体诱导信号复合物的形成,复合物通过接头分子FADD被募集于多个caspase-8的前体上,激活caspase-8,再依次激活下游caspase执行因子[4]。

2.2 半胱胺酸天冬氨酸酶(caspases)家族蛋白 众多蛋白酶均参与凋亡的发生,其中caspases在凋亡的起始和执行过程中起关键作用。在哺乳动物中,至少有14个caspase家族成员参与了凋亡的过程。它们大致被分为三大类凋亡启动因子、凋亡执行因子和炎症介导因子,构成了级联放大效应。凋亡启动因子在级联反应的上游,包括caspase-2、-8、-9、10等,能在其他蛋白的辅助下发生自我活化并识别和激活下游的caspase。如caspase-8几乎能激活所有凋亡级联反应下游的caspase而诱发凋亡,在起始者中处于核心地位[5]。凋亡执行因子在级联反应的下游,包括caspase-3、-6、-7等,作用于其特异性底物并导致细胞凋亡。如caspase-3,是caspase家族中最重要的凋亡执行者之一,在caspases家族蛋白中,Caspase-3是凋亡级联反应下游最关键的凋亡蛋白酶[6]。炎症介导因子包括caspase-1、-4、-5和-11,介导炎症反应并在死亡受体介导的细胞凋亡途径中起辅助作用。具体过程是caspase在促凋亡因子刺激下被活化,继而对底物进行特异性的水解及剪切,通过切断与周围细胞的联络、重组细胞骨架、关闭DNA复制、修复和破坏DNA及核结构等方式来参与凋亡的早期启动,并将激活的信号传递下去形成一个caspase级联反应[7]。最终启动凋亡相关的基因转录、促进生物大分子的合成,使细胞发生凋亡所特有的形态以及生化变化。

2.3 Bcl-2蛋白家族Bcl-2家族蛋白主要由抗凋亡蛋白(如Bcl-2、Bcl-xL、Bcl-w等)和促凋亡蛋白(如Bax、Bad、Bak、Bid和Bcl-xs等)组成,且这两者之间的相互作用是决定细胞凋亡的关键因素[8]。Bcl-2家族蛋白是细胞凋亡过程中的关键调节因子,能够调整线粒体膜的完整性,以及控制促凋亡的细胞内膜蛋白的释放。具有抗凋亡作用的Bcl-2蛋白具有抑制线粒体外膜的通透性和线粒体促凋亡物质的释放;相反,促凋亡的Bcl-2蛋白则促进线粒体外膜的通透性和线粒体促凋亡物质的释放。研究表明Bcl-2和Bax的比例可能在心肌细胞凋亡率方面有重要作用,如在压力负荷型大鼠模型中,左室肥厚的模型中心肌细胞凋亡率明显高于心室功能衰竭的大鼠,其机制可能与Bax表达增加使Bcl-2/Bax比例降低有关。

2.4 抑癌基因p53蛋白 p53基因是位于17号染色体短臂上的一个单拷贝基因,包含11个外显子和10个内含子。其mRNA长2.5kb,编码一个含有393个氨基酸的蛋白质,分子量为53kD。p53是一个细胞内压力的感受器,内源性凋亡途径的关键激活因子。当细胞受损时,p53可抑制细胞生长或诱导细胞凋亡,对细胞凋亡过程起着重要调控作用。P53通过转录激活Bcl-2家族中促凋亡的成员,抑制Bcl-2蛋白,从而启动凋亡的发生。另外p53的靶标还包括Bax、Noxa、Puma和Bid等。P53调控凋亡的一个主要影响因子,是名为Puma的BH3蛋白。Toth等[9]研究发现在缺血时PLJMA的表达上调,而且在PUMA缺失的小鼠中,心肌梗死面积减小50%。

2.5 细胞色素C(Cyt-c)线粒体是调控细胞凋亡的中心 细胞色素C是线粒体释放的最重要的促凋亡因子之一,是线粒体凋亡途径的标志事件。在细胞凋亡过程中细胞色素C释放进入胞质,参与哺乳动物细胞凋亡信号转导。缺氧可致心肌细胞线粒体细胞色素C大量释放胞质中,caspase-9基因表达增高并进一步导致caspase-3激活,引发凋亡。细胞凋亡时,线粒体的通透性发生改变,膜电位下降,与此同时,细胞色素C会从线粒体膜上被释放到胞浆中。释放到细胞质的Cyt-c在脱氧腺苷三磷酸(dATP)存在的情况下,与凋亡蛋白酶活化因子(Apaf-1)结合,形成多聚体,促使caspase前体蛋白与其结合为凋亡小体,其中主要是与caspase-9前体蛋白结合,从而激活caspase-9,被激活的caspase-9又 能 激 活caspase-3,进 而 导 致 细 胞 发 生 凋亡[10]。

2.6 凋亡抑制蛋白(ARC) ARC是目前发现的唯一一个心脏特异表达的抗凋亡蛋白,可能是心脏发育过程中天然获得的具有心脏保护作用的蛋白。此蛋白可抑制多种因素诱导的心肌细胞凋亡,如缺氧、缺血/再灌注损伤、机械张力等。ARC发挥抗凋亡的作用是通过酪蛋白激酶CK2对其进行磷酸化而实现的[11]。ARC是心肌细胞中带有caspase富集功能域的凋亡抑制因子,ARC蛋白通过抑制心肌细胞的凋亡对心脏发挥保护作用,具有强大的抗凋亡作用,其不仅能够抑制Fas/caspase-8及TNF-R1受体活化诱导的细胞凋亡,并且通过与Bax的相互作用,抑制Bax活化的细胞凋亡线粒体通路,这表明ARC可同时抑制内源及外源性细胞凋亡途径。在ARC基因敲除小鼠缺血再灌注损伤实验中,ARC敲除小鼠心肌凋亡数量明显增加了2.5倍,体内Bax活性明显增高,证实内源性ARC是通过抑制Bax活性来发挥其心肌保护作用[12]。心力衰竭等心脏损伤过程中ARC蛋白的表达下调,促进心肌细胞凋亡的发生,这可能是心力衰竭发生的机制之一。

2.7 β3肾上腺能受体(β3AR) β3AR是存在心血管系统一种受体亚型,与心力衰竭关系密切。研究显示β3AR通过促进氧化应激,触发炎性反应,引发钙超载等诱发细胞凋亡。研究表明,心肌缺血损伤后,心肌细胞内钙离子超载,使得心肌收缩功能异常,最终导致细胞凋亡[13,14],而β3AR在心衰过程中通过调节钙离子流介导负性肌力作用。心力衰竭时β3AR上调激活心室肌细胞内 NO合成酶,β3AR、NO、eNOS、钙通道通路是β3AR加重心力衰竭的主要途径[15]。

3 结 语

目前从细胞凋亡角度主要基于死亡受体通路、线粒体通路、内质网通路三条途径研究心力衰竭的发病机制,目前发现了诸多凋亡相关因子,如Fas/FasL、Caspases家族蛋白、Bcl-2蛋白家族、抑癌基因p53蛋白、细胞色素C、凋亡抑制蛋白ARC、β3AR等。衰竭心脏中存在心肌细胞凋亡,心肌细胞凋亡是慢性心衰发病机制的重要部分。

研发抑制心肌细胞凋亡的新药,阻断、干预凋亡的各环节,为慢性心衰的预防和治疗提供新的途径和切入点。

[1] Consili C,Gatta L,Iellamo F,etal.Severity of left ventricular dysfunction in heart failure patients affects the degree of serumin duced cardiomyocyte apoptosis.Importance of inflammatory re sponse and metabolism[J].Int J Cardiol,2013,167(6):2859-2866.

[2] Boffa GM,Zaninotto M,Sartor R,etal.Interleukin-6and tumor necrosis factor-alpha as biochemical markers of heart failure:A-head-to-head clinical comparison with B-type natriuretic peptide[J].J Cardiovasc Med,2009,10(10):758-764.

[3] Wesche-Soldato DE,Chung CS,Gregory GH,etal.CD8+T cell promote inflammation and apoptosis in the liver after sepsis:Role of Fas-FasL[J].Am J Pathol,2007,171(1):87-96.

[4] Lee P,Sata M,Lefer DJ,etal.Fas pathway is a critical mediator of cardiac myocyte death and MI during ischemia-reperfusion in vivo[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2003,284(2):H456-463.

[5] Vaishnav M,MacFarlane M,Dickens M.Disassembly of the JIP1/JNK molecular scaffold by caspase-3-mediated cleavage of JIP1during apoptosis[J].Exp Cell Res,2011,317(7):1028-1039.

[6] Li Q,Guo YL,Li X,etal.The interference of picrosideⅡon the expres sions of Caspase-3and PARP following cerebral ischemia reperfusion injury in rats[J].Chin Pharmacol Bull,2010,26(3):342-345.

[7] Martinez M,Deif RD,Pappas D,etal.Early detection of apoptos is in living cells by fluorescence correlation spectroscopy[J].An-alytical and Bioanalytitical Chemistry,2010,396:1177-1185.

[8] Kumar P,Coltas I K,Kumar B,etal.Bcl-2prctects endothe-lial cells against gamma-radiation via a Raf -MEK -ERK -survivin signaling pathway that is independent of cytochrome C re-lease[J].Cancer Res,2007,67:1193-1202.

[9] Toth A,Nickson P,Qin LL,etal.Differential regulation of cardiomyocyte survival and hypertrophy by mdm2,an E3ubiqutin ligase[J].J Biol Chem,2006,281(6):3679-3689.

[10] Kim J,Parrish AB,Kurokawa M,etal.Ras-mediated phosphorylation and 14-3-3εbinding of Apaf-1suppresses cytochrome cinduced apoptosis[J].EMBO J,2012,31(5):1279-1292.

[11] Zhang YQ,Herman B.ARC protects rat cardiomyocytes against oxidative stress through inhibition of caspase-2mediated mitochondrial pathway[J].J Cell Biochem,2006,99(2):575-588.

[12] Donath S,Li P,Willenbockel C,etal.Apoptosis repressor with caspase recruitment domain is required for cardioprotection in reponse to biomechanical and ischemic stress[J].Circulation,2006,113(9):1203-1212.

[13] Aurora AB,Mahmoud AI,Luo X,etal.MicroRNA-214protects the mouse heart from ischemic injury by controlling Ca2+overload and cell death[J].J Clin Invest,2012,122(4):1222-1232.

[14] Dorn GW.Apoptotic and non-apoptotic programmed cardiomyocyte death in ventricular remodelling[J].Cardiovasc Res,2009,81(3):465-473.

[15] Moniotte S,Belge C,Sekkali B,etal.Sepsis is associated with an upregulation of functional beta3adrenoceptors in the myocardium[J].Eur J Heart Fail,2007,9(12):1163-1171.

猜你喜欢
心肌细胞线粒体家族
线粒体质量控制在缺血性脑卒中的作用研究进展
线粒体自噬在纤维化疾病中作用的研究进展
左归降糖舒心方对糖尿病心肌病MKR鼠心肌细胞损伤和凋亡的影响
活血解毒方对缺氧/复氧所致心肌细胞凋亡的影响
棘皮动物线粒体基因组研究进展
线粒体自噬与帕金森病的研究进展
心肌细胞增殖能力研究进展
HK家族崛起
《小偷家族》
冠心舒通胶囊对心肌细胞Ca2+ -CaM-CaMPK Ⅱ δ信号系统的影响