于丽颖+成乐琴
摘要:以水解前后大豆异黄酮糖苷含量变化计算水解率为评价指标,采用单因素和正交试验法对水解的工艺条件进行优化。结果表明,柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元最佳工艺为:反应温度127℃,反应时间为1.8h,柠檬酸水溶液浓度为1.6mol/L,水解率达到90%以上。
关键词:大豆异黄酮糖苷;大豆异黄酮苷元;水解;柠檬酸;正交试验
中图分类号:O629.13文献标志码:A 文章编号:1002-1302(2014)11-0294-03
大豆异黄酮的健康功效多种多样,可以预防多种疾病和改善骨健康状况[1]。大豆中天然存在的异黄酮包括大豆异黄酮糖苷和大豆异黄酮苷元2类,其中,大豆异黄酮糖苷占到了总异黄酮含量的80%~95%,糖苷型大豆异黄酮由于分子较大,食用后不能被人体直接吸收,一般是在体内消化酶作用下转化为苷元被人体吸收,因此大豆异黄酮的生物活性主要是苷元,而不是糖苷,但目前各种类型保健品大豆异黄酮主要成分是糖苷,资料显示,体内消化酶一般水解率在20%~40%,产品功效较低[2-3]。另外,每个人肠道消化酶不太一样,即使食用同样的大豆异黄酮,个体间效果相差很大。因此体外水解工艺开发就具有实际意义。
目前,大豆异黄酮糖苷转化苷元的方法最常用的是酸催化法、碱催化法、酶催化法[4-6]。酸水解法是大豆异黄酮糖苷水解中使用最多的一种方法。酸水解通常用盐酸、硫酸作催化剂,强酸条件下水解会影响大豆异黄酮苷元的稳定性。糖苷键具有缩醛结构,对碱较稳定,异黄酮糖苷键具有酯苷性质,可用碱水解为大豆异黄酮苷元和葡萄糖,碱催化产物苷元容易降解,应用受到很大限制。酶水解法具有水解条件温和,产物稳定性好,纯度高等特点,但酶生产成本很高,而且酶不容易重复利用。工业生产中还需要进一步寻找廉价又高效能够水解大豆异黄酮的β-葡萄糖苷酶,并进一步研究低成本酶固化技术。
柠檬酸是人体内部循环的重要中间产物,易被人体吸收,因此作为性能优异的食品添加剂和功能性食品广泛应用于食品、化妆品、医疗和保健品等领域。用柠檬酸做催化剂来催化大豆异黄酮糖苷的水解,避免目前工业上采用酸、碱等水解方法对设备的腐蚀,水解产物无需分离直接用于功能性食品,能够将无效或低效成分大豆异黄酮糖苷变为有效和高效成分大豆异黄酮苷元,增强了大豆异黄酮的生物活性,弥补了现有大豆异黄酮转化苷元工艺中选用盐酸催化、碱催化和酶催化等技术缺陷,因此是一条应用价值较高工艺路线。
1材料与方法
1.1材料与试剂
大豆异黄酮糖苷标样:大豆苷,黄豆黄苷、染料木苷(天津马克生物有限公司公司),含量超过98%。糖苷型大豆异黄酮提取物(西安金绿生物工程公司),含量为91.3%。甲醇为色谱纯,柠檬酸(AR),乙醚(AR)。
1.2主要仪器
高效液相色谱仪(大连依利特分析仪器有限公司);分析天平(北京医用天平厂);CS101-3型电热鼓风干燥箱(重庆实验设备厂);KQ-250VDE型双频数控超声清洗器(昆山市超声仪器有限公司)。
1.3试验步骤
称取大豆异黄酮糖苷50mg置于50mL圆底烧瓶中,加入一定浓度柠檬酸水溶液10mL,超声水浴1h,超声频率45kHz,水浴温度75℃。反应液转移到高压釜中,反应温度为110~130℃,反应时间为0.5~2h,反应结束后,冷却反应液至室温。取一定量反应液用饱和碳酸钠水溶液中和至pH值=7,用乙酸乙酯萃取,取酯层,在硅胶板上点样,放入展开剂(乙酸乙酯∶三氯甲烷∶甲醇=5∶5∶2)中展开,紫外灯下观察水解程度;另取一定量反应液用甲醇稀释到100mg/L,过0.45μm滤膜后上机,用HPLC定性和定量检测反应液中糖苷的含量。
1.4高效液相色谱法(HPLC)测定糖苷及其苷元的含量
1.4.1色谱条件
色谱柱:ShimadzuVP-ODSC18柱,150mm×4.6mm,5μm;流动相:A为0.4%磷酸水溶液,B为甲醇;梯度洗脱程序:0~10min,30%~35%B;10~20min,35%~40%B;20~30min,40%~55%B;30~40min,55%~65%B;流速:1mL/min;检测波长为:260nm,测定温度为30℃;进样量:20μL。
根据糖苷和苷元化学性质的不同,从色谱柱中流出的先后顺序不同,经紫外检测器测定,通过与标准品比较,以保留时间定性,峰面积定量,外标法计算。
大豆异黄酮糖苷水解率=水解前后大豆异黄酮糖苷含量之差/水解前大豆异黄酮糖苷含量×100%。
1.4.2标准曲线的绘制
精确称取一定量大豆异黄酮糖苷标准品于100mL的容量瓶中,用甲醇超声溶解30min,再用甲醇定容至刻度线,摇匀,分别精确吸取上述标准溶液1、2、3、4、5mL,用甲醇定容至25mL,配制成10、20、30、40、50μg/mL的系列标准溶液,摇匀,备用。
用HPLC法分别测定配制的系列标准溶液,进样量20μL,每个浓度平行测定3次。以峰面积平均值为纵坐标,浓度为横坐标,峰面积A对浓度C(μg/mL)进行回归分析,得到线性方程。
回归方程分别为:
大豆苷:A=78.576C+39.121,r=0.9999;
黄豆黄苷:A=69.321C+33.867,r=0.9998;
染料木苷:A=99.671C+35.586,r=0.9999。
式中:A为大豆异黄酮的峰面积:C为大豆异黄酮的浓度,μg/mL,线性范围是10~50μg/mL。
2结果与分析
2.1单因素试验
2.1.1不同反应温度对大豆异黄酮水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,柠檬酸催化剂浓度为1.6mol/L,溶剂用量为10mL,反应时间为2h,改变反应温度,探索不同反应温度对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表1)表明,随着温度增加,水解率逐渐增加。当反应温度为125℃,水解率达到90.5%,一般大豆异黄酮糖苷在人体消化酶作用下,水解率为20%左右,大豆异黄酮糖苷水解率达到90%更具有实际意义。因此,在单因素水解反应试验中,适宜温度为125℃。为了进一步考察反应温度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择反应温度分别为123、125、127℃进行正交试验。endprint
2.1.2不同柠檬酸水溶液浓度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,反应温度为125℃,反应时间为2h,溶剂用量为10mL,改变催化剂柠檬酸水溶液的浓度,探索催化剂浓度对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表2)表明,随催化剂柠檬酸水溶液浓度的增加,水解率逐渐增加;当柠檬酸浓度为1.6mol/L时,水解率为90.5%。再增加酸浓度,水解率有所降低,可能的原因,柠檬酸为有机弱酸,适宜的浓度酸性较强,浓度过大会抑制其电离,从而减弱酸性,所以适宜的柠檬酸浓度为1.6mol/L。为了进一步考察催化剂浓度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择柠檬酸浓度分别为1.4、1.6、1.8mol/L进行正交试验。
2.1.3不同反应时间对大豆异黄酮糖苷水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,催化剂浓度为1.8mol/L,反应温度为125℃,溶剂用量为10mL,改变反应时间,探索不同反应时间对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表3)表明,随反应时间增加,水解率也逐渐增加;当反应时间为1.6h,水解率接近90%,延长时间,水解率变化不大。为了进一步考察反应时间对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择反应时间分别为1.4、1.6、1.8h进行正交试验。
2.2正交试验
根据单因素试验结果,大豆异黄酮糖苷水解苷元主要影响因素包括催化剂浓度、反应时间和反应温度,根据正交试验影响因素构建正交试验表进一步确立水解反应的最佳工艺条件。
2.2.1因素及水平的考察
在单因素试验的基础上,采用正交试验方法,优化大豆异黄酮糖苷水解苷元的工艺。以水
解率为考察指标,选择反应时间(1.4、1.6、1.8h)、反应温度(123、125、127℃)、柠檬酸浓度(1.4、1.6、1.8mol/L)、作为考察因素,按3因素3水平进行正交试验设计L9(43),见表4,在此条件下对大豆异黄酮糖苷按“1.3”节方法进行水解,按“1.4”节方法,用HPLC定性和定量检测反应液糖苷及其苷元的含量,计算水解率,确定大豆异黄酮糖苷水解苷元的最佳工艺。
2.2.2正交试验结果
正交试验结果见表5。从表5的极差分析结果可知,3因素对水解率的影响程度依次为B>A>C,3因素的最佳水平组合为A3B3C2,即柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元的最佳工艺条件为:反应温度127℃,反应时间为1.8h,柠檬酸水溶液浓度为1.6mol/L,水解率达到90%以上。表6的方差分析结果表明,水解温度和水解时间对大豆异黄酮糖苷的水解效果具有显著影响。
2.3最佳工艺验证试验
为了考察上述优选工艺的稳定性,按该工艺条件重复提取3次,测得大豆异黄酮糖苷的水解率分别为92.8%、91.3%、92.5%,平均为92.2%,表明本试验优选的工艺稳定可靠。
3结论
在单因素试验基础上,通过正交试验优化柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元的工艺条件,以大豆异黄酮糖苷的水解率作为评价指标,得出各因素对水解效果影响的主次顺序依次为反应温度>反应时间>柠檬酸水溶液浓度。通过极差分析可知,反应温度对水解率影响显著。大豆异黄酮糖苷水解的最佳工艺条件为反应温度127℃,反应时间1.8h,催化剂柠檬酸水溶液浓度1.6mol/L,在此条件下所得的大豆异黄酮糖苷水解率达到90%以上。
本研究成功探索出一条简便、清洁、成本较低,水解产物无需后处理直接用于功能性食品的绿色合成工艺路线,弥补了现有工艺中的技术缺陷,因此实用性较高。
参考文献:
[1]KuoLC,LeeKT.Cloning,Expression,andcharacterizationoftwobeta-glucosidasesfromisoflavoneglycoside-hydrolyzingBacillussubtilis(natto)[J].JournalofAgriculturalandFoodChemistry,2008,56(1):119-125.
[2]KawakamiY,TsurugasakiW,NakamuraS,etal.Comparisonofregulativefunctionsbetweendietarysoyisoflavonesaglyconeandglucosideonlipidmetabolisminratsfedcholesterol[J].TheJournalofNutritionalBiochemistry,2005,16(4):205-212.
[3]SetchellKR,CassidyA.Dietaryisofravones:biologicaleffectsandrelevancetohumanhealthy[J].JournalofNutrition,1999,129:758-767.
[4]高荣海,郑艳,刘长江.大豆异黄酮糖苷酸法水解工艺的研究[J].粮食加工,2008,33(1):54-57.
[5]孙艳梅,张永忠,许晶,等.黑曲霉β-葡萄糖苷酶水解大豆异黄酮糖苷研究[J].东北农业大学学报,2007,38(1):9-12.
[6]王林山.大豆异黄酮的研究进展[J].中国食物与营养,2004(11):18-21.endprint
2.1.2不同柠檬酸水溶液浓度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,反应温度为125℃,反应时间为2h,溶剂用量为10mL,改变催化剂柠檬酸水溶液的浓度,探索催化剂浓度对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表2)表明,随催化剂柠檬酸水溶液浓度的增加,水解率逐渐增加;当柠檬酸浓度为1.6mol/L时,水解率为90.5%。再增加酸浓度,水解率有所降低,可能的原因,柠檬酸为有机弱酸,适宜的浓度酸性较强,浓度过大会抑制其电离,从而减弱酸性,所以适宜的柠檬酸浓度为1.6mol/L。为了进一步考察催化剂浓度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择柠檬酸浓度分别为1.4、1.6、1.8mol/L进行正交试验。
2.1.3不同反应时间对大豆异黄酮糖苷水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,催化剂浓度为1.8mol/L,反应温度为125℃,溶剂用量为10mL,改变反应时间,探索不同反应时间对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表3)表明,随反应时间增加,水解率也逐渐增加;当反应时间为1.6h,水解率接近90%,延长时间,水解率变化不大。为了进一步考察反应时间对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择反应时间分别为1.4、1.6、1.8h进行正交试验。
2.2正交试验
根据单因素试验结果,大豆异黄酮糖苷水解苷元主要影响因素包括催化剂浓度、反应时间和反应温度,根据正交试验影响因素构建正交试验表进一步确立水解反应的最佳工艺条件。
2.2.1因素及水平的考察
在单因素试验的基础上,采用正交试验方法,优化大豆异黄酮糖苷水解苷元的工艺。以水
解率为考察指标,选择反应时间(1.4、1.6、1.8h)、反应温度(123、125、127℃)、柠檬酸浓度(1.4、1.6、1.8mol/L)、作为考察因素,按3因素3水平进行正交试验设计L9(43),见表4,在此条件下对大豆异黄酮糖苷按“1.3”节方法进行水解,按“1.4”节方法,用HPLC定性和定量检测反应液糖苷及其苷元的含量,计算水解率,确定大豆异黄酮糖苷水解苷元的最佳工艺。
2.2.2正交试验结果
正交试验结果见表5。从表5的极差分析结果可知,3因素对水解率的影响程度依次为B>A>C,3因素的最佳水平组合为A3B3C2,即柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元的最佳工艺条件为:反应温度127℃,反应时间为1.8h,柠檬酸水溶液浓度为1.6mol/L,水解率达到90%以上。表6的方差分析结果表明,水解温度和水解时间对大豆异黄酮糖苷的水解效果具有显著影响。
2.3最佳工艺验证试验
为了考察上述优选工艺的稳定性,按该工艺条件重复提取3次,测得大豆异黄酮糖苷的水解率分别为92.8%、91.3%、92.5%,平均为92.2%,表明本试验优选的工艺稳定可靠。
3结论
在单因素试验基础上,通过正交试验优化柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元的工艺条件,以大豆异黄酮糖苷的水解率作为评价指标,得出各因素对水解效果影响的主次顺序依次为反应温度>反应时间>柠檬酸水溶液浓度。通过极差分析可知,反应温度对水解率影响显著。大豆异黄酮糖苷水解的最佳工艺条件为反应温度127℃,反应时间1.8h,催化剂柠檬酸水溶液浓度1.6mol/L,在此条件下所得的大豆异黄酮糖苷水解率达到90%以上。
本研究成功探索出一条简便、清洁、成本较低,水解产物无需后处理直接用于功能性食品的绿色合成工艺路线,弥补了现有工艺中的技术缺陷,因此实用性较高。
参考文献:
[1]KuoLC,LeeKT.Cloning,Expression,andcharacterizationoftwobeta-glucosidasesfromisoflavoneglycoside-hydrolyzingBacillussubtilis(natto)[J].JournalofAgriculturalandFoodChemistry,2008,56(1):119-125.
[2]KawakamiY,TsurugasakiW,NakamuraS,etal.Comparisonofregulativefunctionsbetweendietarysoyisoflavonesaglyconeandglucosideonlipidmetabolisminratsfedcholesterol[J].TheJournalofNutritionalBiochemistry,2005,16(4):205-212.
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[4]高荣海,郑艳,刘长江.大豆异黄酮糖苷酸法水解工艺的研究[J].粮食加工,2008,33(1):54-57.
[5]孙艳梅,张永忠,许晶,等.黑曲霉β-葡萄糖苷酶水解大豆异黄酮糖苷研究[J].东北农业大学学报,2007,38(1):9-12.
[6]王林山.大豆异黄酮的研究进展[J].中国食物与营养,2004(11):18-21.endprint
2.1.2不同柠檬酸水溶液浓度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,反应温度为125℃,反应时间为2h,溶剂用量为10mL,改变催化剂柠檬酸水溶液的浓度,探索催化剂浓度对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表2)表明,随催化剂柠檬酸水溶液浓度的增加,水解率逐渐增加;当柠檬酸浓度为1.6mol/L时,水解率为90.5%。再增加酸浓度,水解率有所降低,可能的原因,柠檬酸为有机弱酸,适宜的浓度酸性较强,浓度过大会抑制其电离,从而减弱酸性,所以适宜的柠檬酸浓度为1.6mol/L。为了进一步考察催化剂浓度对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择柠檬酸浓度分别为1.4、1.6、1.8mol/L进行正交试验。
2.1.3不同反应时间对大豆异黄酮糖苷水解率的影响
固定大豆异黄酮糖苷的量为50mg,催化剂浓度为1.8mol/L,反应温度为125℃,溶剂用量为10mL,改变反应时间,探索不同反应时间对大豆异黄酮糖苷水解苷元水解率的影响。试验结果(表3)表明,随反应时间增加,水解率也逐渐增加;当反应时间为1.6h,水解率接近90%,延长时间,水解率变化不大。为了进一步考察反应时间对大豆异黄酮糖苷水解率的影响,选择反应时间分别为1.4、1.6、1.8h进行正交试验。
2.2正交试验
根据单因素试验结果,大豆异黄酮糖苷水解苷元主要影响因素包括催化剂浓度、反应时间和反应温度,根据正交试验影响因素构建正交试验表进一步确立水解反应的最佳工艺条件。
2.2.1因素及水平的考察
在单因素试验的基础上,采用正交试验方法,优化大豆异黄酮糖苷水解苷元的工艺。以水
解率为考察指标,选择反应时间(1.4、1.6、1.8h)、反应温度(123、125、127℃)、柠檬酸浓度(1.4、1.6、1.8mol/L)、作为考察因素,按3因素3水平进行正交试验设计L9(43),见表4,在此条件下对大豆异黄酮糖苷按“1.3”节方法进行水解,按“1.4”节方法,用HPLC定性和定量检测反应液糖苷及其苷元的含量,计算水解率,确定大豆异黄酮糖苷水解苷元的最佳工艺。
2.2.2正交试验结果
正交试验结果见表5。从表5的极差分析结果可知,3因素对水解率的影响程度依次为B>A>C,3因素的最佳水平组合为A3B3C2,即柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元的最佳工艺条件为:反应温度127℃,反应时间为1.8h,柠檬酸水溶液浓度为1.6mol/L,水解率达到90%以上。表6的方差分析结果表明,水解温度和水解时间对大豆异黄酮糖苷的水解效果具有显著影响。
2.3最佳工艺验证试验
为了考察上述优选工艺的稳定性,按该工艺条件重复提取3次,测得大豆异黄酮糖苷的水解率分别为92.8%、91.3%、92.5%,平均为92.2%,表明本试验优选的工艺稳定可靠。
3结论
在单因素试验基础上,通过正交试验优化柠檬酸催化大豆异黄酮糖苷水解苷元的工艺条件,以大豆异黄酮糖苷的水解率作为评价指标,得出各因素对水解效果影响的主次顺序依次为反应温度>反应时间>柠檬酸水溶液浓度。通过极差分析可知,反应温度对水解率影响显著。大豆异黄酮糖苷水解的最佳工艺条件为反应温度127℃,反应时间1.8h,催化剂柠檬酸水溶液浓度1.6mol/L,在此条件下所得的大豆异黄酮糖苷水解率达到90%以上。
本研究成功探索出一条简便、清洁、成本较低,水解产物无需后处理直接用于功能性食品的绿色合成工艺路线,弥补了现有工艺中的技术缺陷,因此实用性较高。
参考文献:
[1]KuoLC,LeeKT.Cloning,Expression,andcharacterizationoftwobeta-glucosidasesfromisoflavoneglycoside-hydrolyzingBacillussubtilis(natto)[J].JournalofAgriculturalandFoodChemistry,2008,56(1):119-125.
[2]KawakamiY,TsurugasakiW,NakamuraS,etal.Comparisonofregulativefunctionsbetweendietarysoyisoflavonesaglyconeandglucosideonlipidmetabolisminratsfedcholesterol[J].TheJournalofNutritionalBiochemistry,2005,16(4):205-212.
[3]SetchellKR,CassidyA.Dietaryisofravones:biologicaleffectsandrelevancetohumanhealthy[J].JournalofNutrition,1999,129:758-767.
[4]高荣海,郑艳,刘长江.大豆异黄酮糖苷酸法水解工艺的研究[J].粮食加工,2008,33(1):54-57.
[5]孙艳梅,张永忠,许晶,等.黑曲霉β-葡萄糖苷酶水解大豆异黄酮糖苷研究[J].东北农业大学学报,2007,38(1):9-12.
[6]王林山.大豆异黄酮的研究进展[J].中国食物与营养,2004(11):18-21.endprint