细柱五加叶中色素的超声辅助提取工艺及其体外实验研究

刘恒言，李芝，刘向前, ，戴玲，邹亲朋

(1. 湖南中医药大学 药学院，湖南 长沙，410208；2. 中南大学 制药工程系，湖南 长沙，410083)

色素是食品加工生产中必不可少的原料，主要分为人工合成色素和天然色素两大类。近二十年来由于合成色素的毒性不断被发现，特别是苏丹红等食品色素问题的出现，合成色素的使用日趋减少。与人工合成色素相比，天然色素来源于生物体，着色自然，安全性相对较高，加之其本身亦具有一定的营养和药用价值，已广泛应用于食品加工中[1]。然而，食品安全越来越受到全社会的关注，为了保证食品安全，在天然色素添加剂的研制开发、加工及与食品的配合应用过程中必须加强它的活性及毒性研究，保证其使用安全，如具有抗炎作用的姜黄素[2]、茶色素[3]等天然色素在使用时也存在安全隐患，都必须严格注意。天然色素的稳定性较差，为保持其生理活性，提取时一般应使用较为温和的工艺条件。超声波是一种弹性波，能产生并传递强大的能量，方向性好，穿透能力强，停留时间长，用于固液提取过程可使细胞周围和细胞内产生环流，从而提高细胞壁和细胞膜的通透性，有利于植物中有效成分的转移、扩散及提取[4]。采用传统的有机溶剂提取法需要耗费大量有机溶剂和时间才能提取完全，而超声波在溶剂中产生的强烈振动、空化效应、搅拌作用等可提高提取率，有效缩短提取时间，具有明显优势[5-7]。响应面分析方法是研究几种因素间交互作用的回归分析方法，克服了正交设计只能处理离散的水平值，而无法找出整个区域上因素的最佳组合和响应值的最优值的缺陷[8-10]。细柱五加(Acanthopanax gracilistylus W. W. Smith)是五加科(Araliaceae)五加属植物，主要分布于我国湖南、安徽、湖北等地，以根皮入药，历次《中国药典》均以“五加皮”收载，具有祛风除湿，强壮筋骨，活血去瘀，利水消肿的功效[11]。近年来国内外正全方位开发该属植物，包括根、茎、叶和果实等，研究发现该属植物中含有三萜类、黄酮类、多糖等多种生理活性物质[12-18]，被广泛的作为香料和医药品开发。然而在提取分离这些生理活性物质时，通常将石油醚萃取部位的色素丢弃。若能在提取活性物质的同时将色素提取分离，既能避免资源浪费，又能带来一定的经济利益。孙海涛等[19]对安全性高、色调柔合并具有一定营养、保健作用的刺五加浆果色素的超声提取工艺进行优化，不仅大幅度提高长白山野生刺五加的附加值，更解决其果渣浪费的问题；冯颖等[20-21]对无梗五加果色素进行提取及稳定性研究，旨为找出影响五加果色素稳定性的因素，采取相应的方法提高其稳定性，为五加果色素应用提供一定的合理建议和方法，加快五加果天然色素的市场应用。本文作者采用超声波提取法辅助提取细柱五加叶色素，以响应面法确定其最佳提取工艺；并采用MTT 法测定色素总提取物对RAW 264.7 细胞毒性作用以及对LPS诱导的RAW 264.7小鼠巨噬细胞株炎症模型反应中细胞上清液的NO 含量影响。以期为安全、综合利用五加科植物资源提供科学的实验依据。

1 实验

1.1 试药与仪器

试药有：细柱五加叶，2011 年8 月采于湖南长沙，经湖南中医药大学药学院刘向前鉴定为 A.gracilistylus W. W. Smith 的叶，经干燥，粉碎，过孔径365 μm 筛备用，标本存放于湖南中医药大学中药现代化实验室(标本号为110829)；95%乙醇、石油醚(天津恒兴化学试剂制造有限公司)，丙酮、氯仿(长沙湘科精细化工厂)，蒸馏水(实验室自制)，所有试剂均为分析纯；RAW 264.7 巨噬细胞株由韩国细胞株银行供应，DMEM 培养基、新生牛血清(FCS)(美国Invitrogen 公司)，青链霉素、胰酶、MTT 细胞毒性分析试剂盒(美国Life Technologies, Grand Island公司)，Griess试剂(美国Sigma 公司)。

仪器有：KQ-250DE 型数控超声波清洗器(昆山市超声波仪器有限公司)；循环水式真空泵、RE-201D型旋转蒸发仪(巩义市予华仪器责任有限公司)；FA-2104 电子分析天平(上海恒平科学仪器有限公司)；UV-1750 型紫外可见分光光度计(日本岛津公司)；超净工作台(美国LABCONCO 公司)；Eppendorf离心机、低温离心机(德国Beckman 公司)；二氧化碳培养箱、-70 ℃超低温冰箱(美国Thermo 公司)，Olympus 显微镜(日本理光)，96 孔板(美国Corning公司)。

1.2 实验方法

1.2.1 提取溶剂的选择

取干燥细柱五加叶约20 g，精密称定，分别以料液比1:10 (g:mL)加入氯仿、丙酮、石油醚、95%乙醇、80%丙酮溶液，在温度45 ℃，超声功率180 W，频率40 kHz 的条件下连续提取3 次，每次15 min，抽滤、浓缩至浸膏、95%乙醇溶解定容至1 000 mL，精密吸取20 mL 再稀释至100 mL(避光条件下进行)。

1.2.2 单因素实验

取干燥细柱五加叶约20 g，精密称定，以95%乙醇作为提取溶剂，按照各种不同条件(液料比、超声波功率、提取次数、温度、提取时间)进行超声波提取，抽滤，滤渣经95%乙醇多次洗涤后合并滤液，浓缩得醇提浸膏，石油醚萃取，浓缩得石油醚浸膏(避光条件下进行)。

(1) 料液比。料液比分别为1:6，1:8，1:10，1:12和1:14，超声功率为160 W、频率为40 kHz、温度为45 ℃的条件下提取3 次，每次20 min，比较不同料液比对色素提取率的影响。

(2) 超声时间。在料液比为1:10、超声功率为160 W、频率为40 kHz、温度为45 ℃的条件下分别以提取时间10，15，20，25 和30 min 提取3 次，比较提取时间对色素提取率的影响。

(3) 提取次数。在料液比为1:10、超声功率为160 W、频率为40 kHz、温度为45 ℃的条件下分别提取1，2，3，4 和5 次，每次20 min，比较提取次数对色素提取率的影响。

(4) 超声功率。在料液比为1:10、超声功率分别为80，100，120，140 和160 W，频率为40 kHz、温度为45 ℃条件下提取3 次，每次20 min，比较超声功率对色素提取率的影响。

(5) 超声温度。在料液比为1:10、超声功率为160 W，频率为40 kHz，温度分别为40，45，50，60 和70 ℃的条件下提取3 次，每次20 min，比较提取温度对色素提取率的影响。

1.2.3 细柱五加叶提取液中的色素浓度测定和提取率计算

从1.2.2 中得到的浸膏用95%乙醇溶解并定容至1 000 mL，然后从中吸取20 mL，以95%乙醇定容至100 mL，最后以叶绿体色素为标准，95%乙醇溶液为参比液，运用修正的Arnon 法[22-24]可见分光光度法测定其在指定波长处(波长665，649 和470 nm)的吸收度，通过计算得出溶液的色素含量及细柱五加叶色素的提取率。细柱五加叶色素提取液的色素质量浓度和提取率按下式计算：

式中：ρa，ρb和ρx+c分别为叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素的质量浓度，μg/mL；Y 为细柱五加叶色素提取率，%，；M 为细柱五加叶粉末质量，g。

2 结果与分析

2.1 单因素实验

2.1.1 提取溶剂的选择

图1 所示为不同溶剂对细柱五加叶色素的超声提取的影响。由图1 可知：不同溶剂对细柱五加叶色素的提取率由高到低依次为：95%乙醇、80%丙酮、丙酮、氯仿、石油醚。95%乙醇较其他溶剂提取率高，安全、危害性小，价格便宜且易于生产。综合经济、环境、安全、效率等多方面考虑，本实验选取95%乙醇作为细柱五加叶色素超声提取的提取溶剂。

2.1.2 提取次数对色素提取率的影响

图2 所示为提取次数对细柱五加叶色素的提取率的影响。由图2 可知：在相同条件下提取3 次的提取率最高，次数增多且出现提取率下降的趋势，说明随着提取次数的增多，色素分子可能在提取处理过程中被氧化破坏，导致产率下降。所以在相同条件下对细柱五加叶色素的超声提取以提取3 次最合适。

图1 不同溶剂对细柱五加叶色素的超声提取的影响Fig.1 Effect of solvent on extraction rate of pigments

图2 提取次数对细柱五加叶色素的提取率的影响Fig.2 Effect of extracting times on extraction rate of pigments

2.1.3 提取时间对色素提取率的影响

图3 所示为提取时间对细柱五加叶色素的提取率的影响。由图3 可知：细柱五加叶色素的超声提取率与提取时间成正比，提取时间越长，色素的提取率就越高，说明提取时间也是色素提取的一个重要影响因素。但提取时间在15 min 以下时提取率随时间增加的幅度大，在15 min 以上时增幅明显减小，25 min 以后提取率基本不变。主要原因是超声波提取时间过短，不能有效地破坏细柱五加叶的细胞壁和细胞膜使色素有效的溶出，而在长时间的超声作用下色素有可能会因氧化而逐渐分解，造成损失。所以超声提取时间以20 min 为宜。

图3 提取时间对细柱五加叶色素的提取率的影响Fig.3 Effect of extracting time on extraction rate of pigments

2.1.4 料液比对色素的提取率的影响

图4 所示为料液比对细柱五加叶色素的提取率的影响。由图4 可知：料液比对细柱五加叶色素提取率的影响不大，在料液比为1:10 时细柱五加叶色素的提取率最高，证明此时细柱五加叶色素已被全部提取出来。理论上此时随着料液比增大，溶解出的色素量应该不变，细柱五加叶色素的提取率也应为恒值，但在整个提取过程中料液比越大，色素与光、氧气、热等致使其变性的因素接触的机会也越大，使得损失也越大，所以色素提取率在料液比大于1:10时有下降趋势。因此，以料液比1:10 时超声提取细柱五加叶的色素最合适。

图4 料液比对细柱五加叶色素的提取率的影响Fig.4 Effect of ratio of solid to liquid on extraction rate of pigments

2.1.5 超声功率对色素提取率的影响

图5 所示为超声功率对细柱五加叶色素的提取率的影响。由图5 可知：超声波功率在120 W 时细柱五加叶色素的超声提取率最高，超声功率在120 W 以下时色素的提取率随超声功率的增加而增加，在140 W以上时则随超声功率的增加而减小。原因可能是当超声波功率太低时，超声波的空化作用和局部高温太弱，不能有效破坏细柱五加叶细胞壁和细胞膜使色素提取不完全：但功率太高时超声波可能会造成色素的降解，使细柱五加叶色素含量下降，进而使其提取率下降。说明超声功率也是影响细柱五加叶色素提取率的因素之一，而相同条件下超声功率120 W 时提取细柱五加叶色素最适合。

2.1.6 提取温度对色素的提取率的影响

图5 超声功率对细柱五加叶色素的提取率的影响Fig.5 Effect of power on extraction rate of pigments

图6 提取温度对细柱五加叶色素的提取率的影响Fig.6 Effect of temperature on extraction rate of pigments

图6 所示为提取温度对细柱五加叶色素的提取率的影响。由图6 可知：提取温度为30～60 ℃时，色素提取率随着温度升高，而逐渐上升；在60 ℃时其提取率达到最高。其原因可能是细柱五加叶的色素主要存在于叶绿体和液泡中，随温度升高溶剂的渗透力也不断升高，溶剂更易透过细胞膜和细胞壁。虽然，一般情况下物质的溶解度随温度的升高而增加的，但有研究表明提取温度过高可能使色素结构发生改变，温度越高，越容易变性，而在50～70 ℃时较为稳定[25]。这说明提取温度是色素提取的重要影响因素之一。从图6 可见：提取温度为60 ℃时超声提取细柱五加叶色素最适合，提取温度过高则可能引起叶绿素的分解或变性，从而导致提取率的下降。

2.2 响应面优化细柱五加叶色素超声提取工艺参数

2.2.1 响应面分析水平的选取

根据Box-Benhnken 的中心组合试验设计原理，结合单因素试验结果，分别选择提取时间(X1)、超声功率(X2)和提取温度(X3)作为自变量，以细柱五加叶色素的提取率(Y)作为响应值，设计三因素三水平响应面试验，因素和水平取值见表l。

表1 响应面试验因素与水平Table 1 Factors and levels of experiment of RSM

2.2.2 响应面分析试验设计方案

以提取时间(X1)、超声功率(X2)和提取温度(X3)为自变量，以细柱五加叶色素的提取率为响应值(Y)，进行响应面分析实验。实验方案及实验结果见表2。

2.2.3 多元二次响应面回归模型的建立与分析

对细柱五加叶色素提取时间(X1)，超声功率(X2)，提取温度(X3)进行了三因素三水平响应面分析试验。利用Design Expert 8.0 软件对表2 数据进行二次多元回归拟合，得到细柱五加叶色素提取率预测值(Y)对编码自变量X1、X2、X3的二次多项回归方程：

对上述回归模型进行方差分析(见表3)，结果表明该回归模型极显著(P=0.000 1＜0.01)。回归模型的决定系数R=0.994 6，校正决定系数RAdj=0.987 7，RPred=0.960 3，失拟项P=0.515 9＞0.05 不显著，信噪比为31.028 远大于4，说明该回归模型与实验数据拟合程度很高，其响应值的变化有99.46%来源于所选变量，即提取温度、提取时间、超声功率。因此，回归方程能很好地描述各因素与响应值之间的关系，可以用该模型分析和预测超声波提取细柱五加叶色素的工艺优化。

在回归方程中各变量对响应值影响的显著性，由F 检验来判定，概率P 越小，则相应变量的显著程度越高。回归模型中的一次项和二次项均为极显著，交互项X1X3极显著，表明各影响因素对提取率的影响并不是简单的线性关系，3 个因素中对色素提取率影响作用大小顺序为：提取温度，超声时间，超声功率。

2.2.4 细柱五加叶色素超声提取条件分析与优化

多元回归方程的三维图及其等高线见图7～9，通过动态图即可对任何两因素之间交互影响的效应进行分析和评价，并从中确定最佳的水平范围。响应面是响应值对各实验因索所构成的三维空间曲面图，因素对实验结果影响越大，表现为曲面越陡峭。等高线的形状则可以反映两两因素之间交互作用的显著程度，圆形表示两因素交互作用不显著，而椭圆形则与之相反。

由图7～9 的三维图和等高线可以看出：超声时间与提取温度、超声时间与超声功率对色素提取率有着显著的交互作用，而提取温度和超声功率对提取率的交互作用不如前者显著，各因素与细柱五加叶色素提取率的关系均清晰可见。根据Box-Behnken 实验所得的结果和二次多项回归方程，利用Design Expert 8.0软件获得了提取率最高时的最佳超声波辅助提取条件：超声时间为26.7 min，提取温度63.4 ℃，超声功率为128 W。在此优化条件下，细柱五加叶色素提取率理论值为0.3737%。考虑到实际操作的情况，在超声时间为27 min，提取温度64 ℃，超声功率为130 W的条件下，进行了5 次重复验证实验，5 次实验的提取率分别为0.369 7%，0.370 5%，0.371 3%，0.370 8%和0.371 6%，验证实验提取率的平均值为0.370 8%，与理论预测值误差仅为0.029%，说明采用响应面法得到的工艺参数较为可信，利用超声波法提取细柱五加叶色素具有一定的可行性与应用价值。

表2 响应面分析方案及试验结果Table 2 Design and results of RSM

表3 响应面二次回归方差分析Table 3 Analysis of variance for regression model

图7 提取时间与超声功率交互作用对色素提取率影响的响应面和等高线Fig.7 Response surface and contours of interrelated influence of time and power to extraction rate of pigments

图8 提取时间与温度交互作用对色素提取率影响的响应面和等高线Fig.8 Response surface and contours of interrelated influence of time and temperature to extraction rate of pigments

图9 超声功率与温度交互作用对色素提取率影响的响应面和等高线Fig.9 Response surface and contours of interrelated influence of power and temperature to extraction rate of pigments

3 体外抗炎活性

取上述细柱五加叶色素总提取物，测定其对RAW 264.7 细胞毒性作用和对LPS 诱导的RAW 264.7 小鼠巨噬细胞中NO 分泌量的影响。

3.1 细胞培养及处理

将冻存的细胞株解冻后，用含10%新生牛血清和1%青链霉素的DMEM 培养基于5%CO2饱和湿度的37 ℃条件下恒温培养箱培养，2～3 d 换一次液，细胞铺满培养瓶约80%面积时，小心吸取培养基，PBS 洗涤，加入胰酶消化，按1:5 左右的比例加培养液吹散传代，继续培养。

3.1.1 MTT 法初筛色素总提取物的细胞毒性

按MTT 细胞毒性检测试剂盒操作。取生长状态良好的RAW 264.7 细胞用胰酶消化后，加入含10%FCS 的DMEM 培养基配成1×106个/mL 单细胞悬液，接种于96 孔板中，每孔约1×104个细胞，5%CO2饱和湿度的37 ℃条件下恒温培养箱培养4 h，然后换上新鲜培养基100 μL，按梯度浓度将色素总提取物分别加入96 孔板中(复孔，n=3)，使个目标化合物的最终浓度分别为10，20 和40 μg/mL，并设立空白对照。24 h 后，每孔加入10 μL MTT 溶液(5 mg/mL)，在细胞培养箱内继续孵育4 h，然后每孔加入100 μL DMSO溶解液，在细胞培养箱内再继续孵育，直至在普通光学显微镜下观察发现DMSO 全部溶解，终止培养，震荡反应10 min。选择570 nm 波长比色，在酶联免疫检测仪上测定各孔吸光度值[26]。以上实验重复三次，实验数据以均数±标准差表示。采用SPSS 17.0 统计软件对实验结果进行单因素方差分析比较，P＜0.05 为有统计学意义。

3.1.2 抗炎活性试验

取生长状态良好的RAW 264.7 细胞用胰酶消化后，加入含10%FCS 的DMEM 培养基配成2.5×105个/mL 单细胞悬液，接种于96 孔板中，每孔约5×104个细胞，5%CO2饱和湿度的37 ℃条件下恒温培养箱培养4 h，按梯度浓度将色素总提取物分别加入96 孔板中(复孔，n=3)，使个目标化合物的最终浓度分别为10，20 和40 μg/mL，并设立空白对照。1 h 后，每孔加入10 μL LPS 溶液(0.5 μg/mL)，在细胞培养箱内继续孵育24 h，然后收集各组细胞培养上清液100 μL，加入Griess 试剂，室温避光孵育10 min，在540 nm下测量其吸光度，检测NO 浓度[27-28]。以上实验重复3 次，实验数据以均数±标准差表示。采用SPSS 17.0统计软件对实验结果进行单因素方差分析比较，P＜0.05 为有统计学意义。

3.2 活性试验结果分析

3.2.1 对细胞存活率的影响

如图10(a)所示，0～40 μg/mL 质量浓度的色素总提取物处理RAW 264.7 细胞24 h 后，与空白对照组和LPS 模型组相比，细胞存活率具有显著差异(P＜0.05)，说明在0～40 μg/mL 质量浓度范围内色素总提取物RAW 264.7 细胞具有一定的细胞毒性作用。

3.2.2 对NO 浓度的影响

如图10(b)所示，LPS 诱导RAW 264.7 产生大量的NO，LPS 模型组细胞上清液中NO 浓度与空白对照组比较显著提高(P＜0.05)，说明体外炎症模型建立成功。色素总提取物在10，20 和40 μg/mL 剂量时对NO 分泌的抑制率分别为-4.00%，6.13%和38.39%，从不同程度上抑制了细胞上清液中NO 的分泌，并呈现出剂量依赖性。

图10 色素质量浓度对细胞存活率和NO 浓度的影响Fig.10 Influence of pigments mass concentration on cell viability and NO concentration

4 结论

(1) 将单因素试验和响应面法结合对超声波提取细柱五加叶色素工艺条件进行优化，根据实际实验情况，获得的最佳提取工艺为：在以95%乙醇为提取溶剂、料液比1:10、超声功率130 W、提取温度64 ℃、提取时间27 min 的条件下提取3 次，细柱五加叶色素的提取率约为0.370 8%。超声波作为一种辅助提取手段，可有效地缩短提取时间，减少环境污染，降低能耗及减少色素损失，从而能有效地节约生产成本，是中药提取工程上值得采取的一种经济性技术手段。

(2) 采用响应面分析法研究细柱五加叶色素超声提取工艺参数，求得的回归方程精度高；可以准确找到整个区域上因素的最佳组合和响应值的最优值，是比较理想的优化实验方案的方法之一。

(3) 通过体外炎症模型实验发现细柱五加叶色素从不同程度上抑制了细胞上清液中NO 的分泌，并呈现出剂量依赖性；另外，细胞毒性实验发现细柱五加叶色素总提取物在一定的剂量范围内对细胞具有毒性作用，该结果也提示天然色素在使用时须考虑其安全范围。

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