IL28B基因多态性检测的质粒标准品构建

2014-03-23 02:20王从阳
生物学杂志 2014年4期
关键词:条带菌落基因型

王从阳

(华侨大学生物医学学院, 福建 泉州 362021)

丙型肝炎(Hepatitis C infection)是一种感染性疾病,严重危害着人类的健康,并且其流行趋势呈世界性分布。跟据WHO统计的数据,在全球范围内大约有1.7亿丙型肝炎病毒(Hepatitis C infection,HCV)感染者[1-2]。在中国,大约有3800万HCV感染者,其感染率约为3.2%,每年新发丙型肝炎病例约3.5万例[3]。

研究表明[4-5],丙型肝炎的治疗方式与治疗效果与病毒基因型密切相关,基因型1和基因型4的患者使用聚乙二醇干扰素、利巴韦林(PegIFN/RBV)联合治疗48周;基因型2和基因型3的患者使用聚乙二醇干扰素、利巴韦林(PegIFN/RBV)联合治疗24周。另有研究表明[2],除了病毒方面的因素(基因型、HCV RNA水平)外,患者自身的因素也能对抗病毒治疗效果进行预测,其中IL28B多态性是一个重要的预测因子[6-7]。

IL28B基因位于第19号染色体短臂(19q13),编码干扰素λ(IFN-λ-3)参与抗病毒免疫反应,IL28B能刺激干扰素释放,增加细胞毒性T淋巴细胞的数量。可以由病毒感染等诱导产生并且在人上皮细胞等细胞中产生[7]。IL28B基因有多种SNPs,像SNP rs12979860,SNP rs8099917,SNP rs12980275,还有最新发现的SNP rs469415590[8]。而通过全基因组相关性研究(GWAS)发现,位于其附近的SNP rs12980275多态性与聚乙二醇干扰素、利巴韦林联合治疗的效果具有显著相关性[9]。目前研究者将不同的IL28B相关的SNP基因型称为保护性和非保护性基因型[10],保护性SNP基因型携带者治疗后获得SVR的几率高于非保护性基因携带者,对于rs12980275来说,A/A为保护性,G/A或者G/G为非保护性基因型,其中,A/A与1型HCV RVR[11]和SVR[12]密切相关,但对2或3型HCV患者并没有预测价值。在汉族人群中, HCV的自发清除与SNP rs12980275 A/A基因型也有很大关系[13]。同时,SNP rs12980275 的A/A基因型对HBeAg阳性的慢性乙肝患者来说也是保护基因型[14]。

IL28B基因多态性是目前为止GWAS发现用于个性化临床治疗的最好典范之一[2, 9, 15-16]。因此,为了获取可靠的检测结果,构建IL28b基因rs12980275位点的质粒标准品非常必要。

1 材料与方法

1.1 材料

外周血样本16份。按照IL28B基因组DNA序列,利用Primer Primier 5.0和Oligo 6软件设计、评价引物,目的片段大小为334 bp,由上海生工生物工程有限公司合成,引物序列:F为5′-GGTGTTTGCTACATTGTTCGGCA-3′,R为5′-TTGGGCAACAAGAGCGAAACT-3′。 pGM-T载体、大肠埃希菌DH5α;琼脂糖凝胶DNA片段回收纯化试剂盒、质粒DNA提取试剂盒购自北京天根生化科技有限公司。外周血DNA提取试剂盒购自美国Promega公司。

1.2 方法

1.2.1 DNA提取与扩增

外周血DNA的提取采用Wizard®基因组DNA纯化试剂盒。DNA提取后,用F和R引物进行PCR反应,反应体系为:mix 25 μL,上下游引物各1.0 μL,ddH2O 21 μL,总体积50 μL。反应条件:95℃ 5 min;95℃ 30 s、60℃ 30 s、72℃ 30 s,共35个循环;72℃ 10 min。然后进行琼脂糖凝胶电泳回收。

1.2.2 PCR产物的克隆

PCR产物的回收:在紫外灯下将PCR产物回收,切出含有目的DNA片段(334 bp)的琼脂糖凝胶,操作过程中要求尽量切除不含目的DNA部分的凝胶,然后按琼脂糖凝胶DNA片段回收纯化试剂盒说明进行回收。

PCR产物的克隆: T载体在冰上融化,连接反应液为pGM-T Vector 1 μL、10×T4 DNA Ligation Buffer 1 μL、T4 DNA Ligase 1 μL、PCR产物4 μL,总体积10 μL,于16℃连接过夜,目的基因IL28B rs12980275片段克隆至pGM-T Vector上,然后进行转化实验,至大肠埃希菌DH5α中,在含有氨苄的LB培养基上涂布,37℃下倒置培养12~16 h,形成单菌落。挑选白色菌落,用菌落PCR鉴定。并按质粒DNA纯化试剂盒提取质粒DNA。用紫外分光光度计测定质粒纯度及浓度,质粒DNA的OD260/OD280为1.6~1.8。送上海生工生物工程有限公司测序,采用Blast分析结果。

1.2.3 重组质粒标准品的制备

将重组质粒标准品原液稀释成0.01~10 ng/μL 4个梯度的标准品,然后进行PCR扩增并送上海生工生物工程有限公司测序。量取同体积同浓度的野生纯合质粒和突变纯合质粒混匀,进行PCR扩增后并送上海生工生物工程有限公司测序。

2 结果与分析

2.1 序列下载及突变位点确定

IL28B基因位于19号染色体,SNP rs12980275则位于IL28B基因下游2.4 kb处,该位点碱基野生型为A,突变型为G。

2.2 引物验证

将设计好的引物进行Blast比对,特异性良好。以16个gDNA样本为模板,通过PCR扩增,获得IL28B基因rs12980275片段的序列、大小约334 bp,经琼脂糖凝胶电泳检测,结果与期望值一致,如图1。目的条带清晰单一,说明所设计引物适用。

M—DL500 DNA Marker; 1-16—样本序列号; “-”—空白对照(检测到条带位于marker条带的300 bp和400 bp之间)。

图1引物验证电泳图

Fig 1 Primers tested by electrophoresis

2.3 标准品制备的DNA样本筛选

将扩增成功的16管PCR产物送上海生物工程技术服务有限公司测序。对各个序列进行比较,选出IL28B rs12980275位点为碱基AA和GG的样本作为标准品制备DNA样本。

从16个样本的测序结果发现,AA型样本有12个,AG型样本3个,GG型样本1个(见图2)。

(箭头指示位置为SNP rs12980275位点)

2.4 连接转化结果

利用天根pGM-T克隆试剂盒,连接转化IL28B rs12980275位点为碱基AA和GG的对应PCR产物片段,得到相应的转化平板(如图3)。

(白色菌落为转化成功菌落)

图4 菌落PCR电泳图

1-3—AA型菌落; 4-6—GG型菌落; “-”—空白对照; M—DL500 DNA Marker(检测到条带位于marker条带的300 bp和400 bp之间)。

用灭菌的牙签挑取白色菌斑,以引物F和R进行菌落PCR实验,AA和GG两种基因型的转化平板上各挑取3个菌落,并做好对应标记。菌落PCR电泳结果如图4,片段长度334 bp左右,证实片段连接正确。

2.5 质粒标准品构建结果

将经菌落PCR检测为阳性的AA型菌落1和GG型菌落4接种到10 mL LB(含有100 μg/mL的氨苄青霉素)培养基,37℃摇床振荡培养过夜,保存菌种后提取质粒,琼脂糖凝胶电泳检测提取结果(图5)。

1—AA型质粒; 2—GG型质粒; M—DL500 DNA Marker

图5质粒提取电泳图

Fig 5 Result of plasmid electrophoresis

将提取的质粒送上海生工测序,结果如图6和图7,碱基序列正确。与GenBank进行BLAST比较,结果(图8)表明:插入片段全长为334 bp,与GenBank号为AC011445.6的序列100%一致。

(箭头指示位置为SNP rs12980275位点)

图6 AA型质粒标准品测序报告

Fig 6 Result of sequence detected by standard plasmid sample 6AA

(箭头指示位置为SNP rs12980275位点)

图7 GG型质粒标准品测序报告

Fig 7 Result of sequence detected by standard plasmid sample 7GG

2.6 质粒标准品稀释试验以及混合试验结果

将质粒标准品稀释成0.01~10 ng/μL 4个梯度进行PCR扩增,结果如图9,质粒浓度0.01 ng/μL时,扩增条带不明显;质粒浓度达0.1 ng/μL甚至更高时,可得到单一的清晰条带。送样测序结果也显示,质粒浓度达0.1 ng/μL时,才可成功获取清晰的测序图谱。0.1 ng/μL 的质粒在-20℃冻存6个月试验结果稳定。

(红色标记位置为SNP rs12980275位点)

图8 AA型(左)和GG型(右)序列Blast比对结果

Fig 8 Comparison of type AA with type GG by Blast N

M—DL500 DNA Marker; “-”—空白对照; 1-4—0.01~10ng/μL(检测到条带位于marker条带的300 bp和400 bp之间)。

图9质粒稀释PCR电泳图

Fig 9 Result of diluted PCR electrophoresis

量取同体积的0.1 ng/μL野生纯合质粒和突变纯合质粒,混匀,进行PCR扩增测序,成功得到rs12980275位点杂合突变的序列图谱(图10)。

(箭头指示位置为SNP rs12980275位点)

图10 AA型和GG型质粒标准品1∶1混合的测序报告

Fig 10 Sequence detected by the mixture of standard plasmid samples of type AA and type GG with a ratio of 1∶1

3 讨论

在本研究中,先将PCR产物克隆到载体上,然后抽提质粒,最后成功构建了检测IL28B rs12980275位点突变的标准品,该标准品具有纯度高、易于保存、分型准确等优点,可长期用于检测。该标准品在-20℃条件下具有良好的稳定性。经过毛细管电泳测序,证明该标准品为IL28B基因上包含rs12980275位点序列的特异性产物。对不同浓度的质粒模板进行扩增测序的实验结果分析,质粒浓度达0.1 ng/μL时,PCR扩增即可得到单一的清晰条带,-20℃冻存6个月试验结果稳定。同体积的0.1 ng/μL野生纯合质粒和0.1 ng/μL突变纯合质粒混匀,PCR扩增送测序可得到清晰的rs12980275杂合突变序列图谱。

鉴于IL-28b基因多态性可预测丙型肝炎患者抗病毒治疗效果等的临床价值[17],各国已开始重视该基因的检测[15]。本研究中IL28B rs12980275位点AA(野生型)、GG(纯合突变)和AG(杂合突变)3种质粒标准品的成功构建,对以后该试剂盒研发工作的开展是一项有力保障。

参考文献:

[1]Hoofnagle J H. Course and outcome of hepatitis C[J]. Hepatology, 2002, 36(5B):21-29.

[2]Ge D L, Fellay J, Thompson A J, et al. Genetic variation in IL28B predicts hepatitis C treatment-induced viral clearance[J]. Nature, 2009, 461(7262):399-401.

[3]Tanaka M, Katayama F, Kato H, et al. Hepatitis B and C virus infection and hepatocellular carcinoma in China: a review of epidemiology and control measures[J]. Journal of Epidemiology, 2011, 21(6):401-416.

[4]解 莹, 谢 晨. 丙型肝炎病毒基因分型的研究进展[J]. 大连医科大学学报, 2010, 32(4): 470-474.

[5]McHutchison J G, Lawitz E J, Shiffman M L, et al. Peginterferon alfa-2b or alfa-2a with ribavirin for treatment of hepatitis C infection[J]. New England Journal of Medicine, 2009, 361(6):580-593.

[6]Manns M P, McHutchison J G, Gordon S C, et al. Peginterferon alfa-2b plus ribavirin compared with interferon alfa-2b plus ribavirin for initial treatment of chronic hepatitis C: a randomised trial[J]. The Lancet, 2001, 358(9286):958-965.

[7]Sheppard P, Kindsvogel W, Xu W, et al. IL-28, IL-29 and their class II cytokine receptor IL-28R[J]. Nature Immunology, 2002, 4(1):63-68.

[8]Prokunina-Olsson L, Muchmore B, Tang W, et al. A variant upstream of IFNL3 (IL28B) creating a new interferon gene IFNL4 is associated with impaired clearance of hepatitis C virus[J]. Nature Genetics, 2013, 45(2):164-171.

[9]Tanaka Y, Nishida N, Sugiyama M, et al. Genome-wide association of IL28B with response to pegylated interferon-α and ribavirin therapy for chronic hepatitis C[J]. Nature Genetics, 2009, 41(10):1105-1109.

[10]Ahlenstiel G, Booth D R, George J. IL28B in hepatitis C virus infection: translating pharmacogenomics into clinical practice[J]. Journal of Gastroenterology, 2010, 45(9):903-910.

[11]Fattovich G, Covolo L, Bibert S, et al. IL28B polymorphisms, IP-10 and viral load predict virological response to therapy in chronic hepatitis C[J]. Alimentary Pharmacology & Therapeutics, 2011, 33(10):1162-1172.

[12]Venegas M, Villanueva RA, González K, et al. IL28B polymorphisms associated with therapy response in Chilean chronic hepatitis C patients[J]. World Journal of Gastroenterology: WJG, 2011, 17(31):3636.

[13]Rao H Y, Sun D G, Jiang D, et al. IL28B genetic variants and gender are associated with spontaneous clearance of hepatitis C virus infection[J]. Journal of Viral Hepatitis, 2012, 19(3):173-181.

[14]Sonneveld M J, Wong V W, Woltman A M, et al. Polymorphisms near IL28B and serologic response to peginterferon in HBeAg-positive patients with chronic hepatitis B[J]. Gastroenterology, 2012, 142(3):513-520. e1.

[15]孙艳丽,李金明. IL-28b 基因多态性检测与慢性乙型肝炎和慢性丙型肝炎的个体化治疗[J]. 分子诊断与治疗杂志, 2012,4(5): 289-294.

[16]Suppiah V, Moldovan M, Ahlenstiel G, et al. IL28B is associated with response to chronic hepatitis C interferon-α and ribavirin therapy[J]. Nature Genetics, 2009, 41(10):1100-1104.

[17]Ionitae-Radu F, Racanu A, Cheiab B. IL28B polymorphism-predictive factor of HCV infected genotype 1 individuals to treatment response and management of therapy[J]. Romanian Journal of Internal Medicine(Revue Roumaine de m Decine Interne), 2011, 49(2):99.

猜你喜欢
条带菌落基因型
不同emm基因型化脓性链球菌的菌落形态
食品微生物检验中菌落总数测定的注意事项
基于条带模式GEOSAR-TOPS模式UAVSAR的双基成像算法
SPC在压缩干粮菌落总数监测过程中的应用
基于 Savitzky-Golay 加权拟合的红外图像非均匀性条带校正方法
基于细菌菌落优化算法含分布式电源的无功优化
西安地区育龄妇女MTHFRC677T基因型分布研究
BAMBI基因敲除小鼠的繁育、基因型鉴定
一种基于MATLAB的声呐条带图像自动拼接算法
甘蔗黄叶病毒基因型研究进展