曾仁凤 何振华 张秀峰
肺纤维化(pulmonary fibrosis,PF)通常是慢性肺疾病最终的表现结果,是全球肺疾病发病率及死亡率的重要原因之一。肺纤维化是以多种原因引起的上皮细胞受损,修复障碍,上皮细胞活化、损伤,导致大量细胞因子释放、细胞外基质沉积、异常间质细胞活化和增生为特征的疾病。其病理特点主要为大量间质细胞(成纤维细胞、肌成纤维细胞)积聚及增殖,而这些间质细胞来源尚不清楚。最近研究报道,这些细胞是通过上皮细胞间质转化(epithlial to mesenchymal transition,EMT)而来的[1]。
EMT是细胞塑形的一种过程,上皮细胞失去极性,上皮细胞标志物丢失或下调,细胞骨架重建,细胞变成纺锤体形态,获得间质细胞标记物,并且细胞的黏附能力减弱、增殖和迁移能力增强。
EMT发生时,上皮细胞标志物丢失,并获得间质细胞标志物,代表上皮细胞的标志物主要有E-钙粘素(E-cadherin,E-cad),紧密连接蛋白 1(zonula occludens-1,ZO-1);代表间质细胞的标志物主要有α-平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)、波形蛋白(vimentin)、I型胶原蛋白(col type I)、纤维连接蛋白(fibronectin)、纤维状肌动蛋白(F-actin)。下面介绍3种肺纤维化中EMT的主要表型标志物。
2.1 E-cadherin E-cadherin,是典型的EMT上皮细胞标志物[2]。E-cad,分子量大小为120 KDa,广泛分布于胚胎和成熟组织上皮细胞中,位于同种上皮细胞侧面的中间连接处,是一类介导细胞之间互相黏附的钙依赖性跨膜糖蛋白,参与介导上皮型细胞—细胞间的黏附、胚胎发育以及正常组织中上皮细胞层的形成和维持,是细胞连接的重要分子。人类E-cad基因位于16 q 22.1 附近,由723~748个氨基酸组成,包括N端胞外区、高度疏水的跨膜区及C端胞内区。N端是Ca2+的结合位点,对Ca2+有高度敏感性,通过与Ca2+特异性结合而发挥黏附功能;胞内区通过连环素(catenin)与微丝、中间丝、肌动蛋白相连接,形成复合体,使E-cad被锚定于细胞骨架上,与相邻细胞形成稳定连接[3]。当组织受到损伤时,在修复过程中,上皮细胞间E-cad连环素复合物及其核心骨架蛋白发生酪氨酸磷酸化,破坏了该复合体结构的完整性,使得E-cad不能准确定位于膜上,胞浆内蛋白酶将其降解进入胞浆,丧失其黏附的能力,增加了上皮细胞增殖和迁移能力,从而促进上皮细胞的再生修复。
2.2 a-SMA a-SMA是一种间质细胞标志物,由血管平滑肌机细胞及肌上皮细胞表达。a-SMA是一种中等大小的蛋白质,由375个氨基酸组成,分子量为43 KDa。a-SMA被认为是肌成纤维细胞的一种标志物,而这些肌成纤维细胞来自于上皮细胞间质转化,并且与肺纤维化有关[4],a-SMA的表达与肺纤维化的进展是成正相关的。
2.3 Vimentin Vimentin是常见的EMT间质细胞标记物,来源于成纤维细胞、内皮细胞和白细胞等中胚层细胞。Vimentin是中间纤维家族中的一员,构成间质细胞中最主要的中间纤维,其重要功能是与微管、微丝共同形成一个细胞支架网络而维持细胞完整性。人的vimentin基因位于人类染色体10 p 13上,相对分子量大小约为57 KDa,总共编码466个氨基酸。Vimentin由头部的氨基端(N端)、尾部的羧基端(C端)和两端之间的螺旋杆状区3部分构成,不仅参与肿瘤分化、转移和增殖有着密切的关系,还在细胞的黏附、迁移、增殖、凋亡等生理功能中起重要作用。在炎症的修复过程中,多种细胞因子的参与下,上皮细胞间质转化发生时,波形蛋白的表达上调[5]。
EMT是目前肺纤维化发病机制的研究热点,在肺纤维化的形成中扮演了非常重要的角色。EMT是肺纤维化重要的病理过程[1,6]。EMT是上皮细胞失去极性,上皮细胞标志物丢失或下调,细胞骨架进行重建,细胞变成纺锤体形态,并获得间质细胞标记物的过程[7]。EMT分为3型,Ⅰ型EMT参与胚胎发育、器官形成,Ⅱ型EMT在肺纤维化中发挥作用,Ⅲ型EMT与肿瘤形成、进展有关[8]。很多研究证明EMT与肺纤维化有着密切的关系[5-6,9]。博来霉素诱导的肺纤维化小鼠的肺泡上皮细胞(alveolar epithelial cells,AECs)及气道上皮细胞(bronchial epithelial cells,BECs)发生了上皮细胞间充质转化[6],实验结果是上皮细胞标志物E-cad的表达下降,而间质细胞标志物a-SMA、F-actin的表达增加。在C^amara[9]的研究中,人的气道上皮细胞(human bronchial epithelial cells,HBECs))也发生了上皮细胞间质转化,导致E-cad的丢失,获得vimentin、a-SMA。同样,Milara等[5]的研究,无论是在体外实验的A 549细胞中,还是在体内实验的特发性肺纤维化患者中,都证明了上皮细胞间充质转化,伴随上皮细胞标志物ZO-1、E-cadherin的下调,间质细胞标志物α-SMA、vimentin、col type I的上调。这些研究表明EMT的发生促进了肺纤维化的形成。
4.1 TGF-β/smad通路 转化生长因子β(TGF-β)是一种多功能的细胞因子,通过影响细胞的增生、分化、凋亡、细胞外基质生成来调节组织的形态发生及分化,被誉为是诱导纵多组织(包括肺组织)纤维化的总开关。在正常的哺乳动物上皮细胞中,TGF-β是肺纤维化中上皮细胞间质转化的主要诱导者,包括肾小管上皮细胞、角膜上皮细胞和肺泡上皮细胞[7]。在Kasai等[10]的研究中,使用TGF-β处理的A 549细胞,相差显微镜检查发现肺泡上皮细胞发生了形态学的改变,并且检测到成纤维细胞表型标志物vimentin的表达上升,上皮细胞标志物E-cad表达下调,同时致纤维化因子Ⅰ型、Ⅲ型胶原蛋白及结缔组织生长因子(CTGF)的表达升高。这个研究证明了TGF-β能够诱导肺泡上皮细胞发生EMT,而且此项研究还证明了TGF-β诱导EMT是通过活化了的Smad 2。另外,还有研究证明Smad 3也参与了EMT[7]。
TGF-β/Smad信号通路是参与肺纤维化EMT的重要转导途径。Smad是肺纤维化EMT信号通路中TGF-β的下游底物。TGF-β家族细胞受体是跨膜丝氨酸/苏氨酸激酶受体,TGF-β与其胞膜上的受体结合磷酸化进入胞浆,将信号传递给胞浆内的Smad 2与Smad 3,磷酸化的Smad 2与Smad 3再与Smad4结合形成复合体,激活胞核内的核转录因子,从而启动一系列的反应,促进纤维化的形成。
核转录因子包括Snail家族、ZEB家族和helix-loophelix(HLH)家族[11]。Snail属锌指转录因子,其成员包括Snail 1、Snail 2(又称Slug)和Snail 3。在肺纤维化中,主要是Snail1 参与,Smad与Snail1启动子结合,然后进行转录,Snail1通过识别E-cad,并且与E-cad启动子部位的E-box结合,从而抑制E-cad的表达。在Kim等[12]的研究中,TGF-β介导的A 549细胞不尽发生了EMT,还发现Snail1的高表达导致E-cad的丢失。这就表明Snail1与EMT有着密切关系。ZEB包括ZEB1和ZEB 2,ZEB蛋白诱导及调节下游的E-cad,使其表达减少,并且促进细胞的迁移。HLH包括蛋白E 12、E 47、Twist、Id等,也参与了EMT。
4.2 非Smad通路 TGF-β介导的EMT的途径纵多,主要是依赖Smad的信号通路,也是当前研究最热门的信号转导途径,还有其他非Smad的信号通路,包括RhoA/Rock、MAPK、PI3 K/AKt、Wnt等信号通路。
4.2.1 RhoA/Rock 在貂的肺上皮细胞和小鼠乳腺上皮细胞中,小G蛋白RhoA及其下游的Rock被证明参与了TGF-β介导的EMT,对EMT过程中细胞骨架的重排扮演了非常重要的角色[13]。
4.2.2 MAPK TGF-β可以激活MAPK,激活的MAPK影响细胞的紧密连接,细胞骨架重排,促进细胞的迁移,导致上皮细胞向间质细胞转变[11]。
4.2.3 PI3 K/AKt TGF-β通过酪氨酸激酶受体快速激活PI3激酶,是通过Akt激酶活化mTOR/S6激酶1,导致蛋白的合成增加及细胞的增生,参与EMT,抑制间质细胞表型标志物E-cad的表达下降[3]。
4.2.4 Wnt Wnt蛋白本身不能诱导EMT,典型的Wnt信号通路是被β-catenin调节的。β-catenin是细胞紧密连接的一部分,连接细胞骨架间的E-cad。如果Wnt信号被活化,将抑制GSK-3 β,导致胞质中的β-catenin大量累积[11]。激活Wnt信号,抑制GSK-3 β,可以下调E-cad的表达,从而调节EMT[14]。
肺纤维化呈进行性发展,是呼吸系统最严重慢性疾病之一,最终导致呼吸衰竭而亡。目前肺纤维发病机制尚不清楚,缺乏有效的治疗手段。TGF-β介导的EMT在肺纤维化形成机制中扮演了非常重要的角色,因此加强对EMT的科学研究,为肺纤维化的治疗提供新靶点。
[1]Kim KK,Kugler MC,Wolters PJ,et al.Alveolar epithelial cell mesenchymal transition develops in vivo during pulmonary fibrosis and is regulated by the extracellular matrix[J].PNAS,2006,103(35):13180-13185.
[2]Kalluri R,Neilson EG.Epithelial-mesenchymal transition and its implications for fibrosis[J].J Clin Invest,2003,112(12):1776-1784.
[3]Pettitt J.The cadherin superfamily[J].WormBook,2005,12(29):1-9.
[4]Masszi A,Di Ciano C,Sirokmány G,et al.Central role for Rho in TGF-β 1-induced a-smooth muscle actin expression during epithelialmesenchymal transition[J].Am J Physiol Renal Physiol,2003,284(5):911-924.
[5]Milara J,Navarro R,Juan G,et al.Sphingosine-1-phosphate is increased in patients with idiopathic pulmonary fibrosis and mediates epithelial to mesenchymal transition[J].Thorax,2012,67(2):147-156.
[6]Wu Z,Yang LL,Cai L,et al.Detection of epithelial to mesenchymal transition in airways of a bleomycin induced pulmonary fibrosis model derived from an a-smooth muscle actin-Cre transgenic mouse[J].Respir,Res,2007,8:1.
[7]Willis BC,Borok Z.TGF-β-induced EMT:mechanisms and implications for fibrotic lung disease[J].Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2007,293(3):525-534.
[8]Lee K,Nelson CM.New insights into the regulation of epithelial!mesenchymal transition and tissue fibrosis[J].Int Rev Cell Mol Biol,2012,294:171-221.
[9]C^amara J,Jarai G.Epithelial-mesenchymal transition in primary human bronchial epithelial cells is Smad dependent and enhanced by fibronectin and TNF-a[J].Fibrogenesis Tissue Repair,2010,3:2.
[10]Kasai H,Allen JT,Mason RM,et al.TGF-β 1 induces human alveolar epithelial to mesenchymal cell transition (EMT)[J].Respir Res,2005.6:56.
[11]Xu J,Lamouille S,Derynck R.TGF-β-induced epithelial to mesenchymal transition[J].Cell Research,2009,19:156-172.
[12]Kim JH,Jang YS,Eom KS,et al.Transforming growth factor beta 1 induces epithelial to-mesenchymal transition of A 549 cells[J].J Korean Med Sci,2007,22(5):898-904.
[13]Bhowmick NA,Ghiassi M,Bakin A,0 et al.Transforming growth factor-β 1 mediates epithelial to mesenchymal transdifferentiation through a RhoA-dependent mechanism[J].Mol Biol Cell,2001,12(1):27-36.
[14]陈娟,王昌明.转化生长因子β诱导上皮细胞-间质细胞转分化与肺纤维化关系的研究现状与展望[J].国际呼吸杂志,2012,32(12):929-932.