施 维,戚 菁,申娴娟,吴信华,鞠少卿,刘才旺
(南通大学附属医院外科综合实验室,江苏226001)
·论著与基础研究·
两种游离DNA检测方法的比较研究*
施 维**,戚 菁,申娴娟,吴信华,鞠少卿,刘才旺
(南通大学附属医院外科综合实验室,江苏226001)
目的:对比评价人血清游离DNA的分支DNA(bDNA)检测和实时荧光定量聚合酶链反应(RT-qPCR)检测方法。方法:收集44例人血清标本,分别运用bDNA技术和荧光定量PCR检测其游离DNA浓度,对2种方法检测结果做分析比较。同时采用bDNA技术分别检测其中10例血清和血浆游离DNA含量。结果:bDNA技术的检测结果和荧光定量PCR具有较高的相关性(r=0.7077,P<0.0001);血清较血浆具有较高的游离DNA的水平。结论:bDNA操作简便且结果可信,适用于人群大规模筛查游离DNA水平。
游离DNA;分支DNA;实时荧光定量聚合酶链反应;化学发光免疫分析仪
游离DNA又称循环DNA,是指一种无细胞状态的胞外DNA,存在于血浆或血清、脑脊液及滑膜液等体液中。目前研究提示游离DNA在肿瘤发生的早期就可出现含量上升,是一种非侵袭性的潜在应用价值的肿瘤标志物[1-2]。目前国内外广泛采用实时荧光定量聚合酶链反应(real-time fluorescence quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR)方法检测游离DNA[3]。但此方法准确性和精确性很大程度上依赖于前期样本DNA的提取与纯化步骤。与之相反,分支DNA(branched DNA,bDNA)技术选择人类基因组中短串联重复序列(Alu repeats)作为靶序列,可以直接测定血清样本中游离DNA的含量[4]。但鉴于该技术是新近开展,本研究运用bDNA技术和传统RT-qPCR同时检测游离DNA浓度,对两种方法检测结果加以分析比较。
1.1 标本来源 44例血清标本来自本院检验科,其中女32例,男12例,年龄16~72岁。同时从44例血液标本中随机抽取10例,收集其血浆标本。
1.2 方法
1.2.1 血清(血浆)游离DNA含量bDNA检测:按照试剂盒说明制备工作探针工作液WPS(QuantiGene 2.0 Reagent System试剂盒,美国Panomics公司)。随后将DNA标准品用TE缓冲液(Tris+EDTA缓冲液)进行倍比稀释成0、6.25、12.5、25、50、100、200和400 ng/mL,样本用双蒸水1∶20稀释。稀释样本95℃加热5min,冰水即刻冷却。在96孔微孔板中,每孔加入90μL WPS和10 μLDNA稀释样本,锡铂纸封闭微孔板。55℃杂交1h,300μL洗涤液洗涤,402g离心1 min除去残留的洗涤液。1∶1 000稀释前放大体、放大体和标记探针,微孔板每孔加入前放大体、放大体和标记探针工作液各100 μL。锡铂纸封闭微孔板55℃孵育30 min(标记探针50℃孵育)。洗涤微孔板后,每孔添加100 μL底物工作液,锡铂纸封闭微孔板。室温孵育5 min,在化学发光免疫分析仪读每孔数值。以标准品浓度和相对发光单位的读数值绘制标准曲线,根据标准曲线计算每孔游离DNA的浓度,将结果×20求得每个样本的DNA的含量。
1.2.2 血清游离DNA荧光定量PCR含量检测:(1)血清游离DNA的提取:血清DNA抽提和纯化严格按照DNA提取试剂盒的操作步骤说明书进行(QIAmp DNA Mini Kit试剂盒,德国QIAGEN公司)。所有标本均采用同一批号的试剂盒抽提DNA,抽提产物放置20℃保存备用。(2)RT-qPCR检测血清游离DNA含量:PCR引物参照文献[5]的设计,采用重复序列Alu为目的片段,进行PCR扩增。上游引物序列为5'-CCTGAGGTCAGGAGTTCGAG-3',下游引物序列为5'-CCCGAGTAGCTGGGATTACA-3',由上海生工公司合成。PCR反应体系为:模板DNA 5 μL,2× FastStart Universal SYBR Green Master(Rox)(罗氏)10 μL,上、下游引物各0.2 μL,加无菌双蒸水补充至20 μL。反应条件为:95℃变性2 min,然后95℃退火15 s,64℃延伸1 min进行40次循环。用ABI 7500荧光定量PCR仪实时进行监测,并绘出各样本溶解曲线验证特异性。实验采用绝对定量的方法,即将浓度为222 μg/mL的人类基因组DNA标准品进行10倍梯度稀释(6个稀释梯度)。并将未知样品和梯度稀释的标准品在同一荧光PCR实验中进行反应,由标准品得到的Ct值构建标准曲线,通过标准曲线推算出待测标本的血清游离DNA含量。
1.3 统计学处理 用GraphPad Prism V5.0统计软件进行统计学分析,双变量相关分析用Spearman相关检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2.1 bDNA技术标准曲线的绘制 以人类基因组DNA标准品作倍比稀释,得到浓度为400 ng/mL、200 ng/mL、100 ng/mL、50 ng/mL、25 ng/mL、12.5 ng/ mL、6.25 ng/mL、0 ng/mL(作空白对照)的实验标准品。每个浓度测3孔,其相对发光单位取平均值。以标准品的浓度和平均相对发光单位绘制标准曲线,求得相关系数r2=0.9928,回归直线方程y=122.11x。2.2 RT-qPCR技术标准曲线的绘制 将浓度为222 μg/mL的人类基因组DNA标准品10倍梯度稀释(22 200 ng/mL~0.222 ng/mL)后,根据标准品实验得到的Ct值绘制标准曲线。回归直线方程y= -3.27x+21.56,r2=0.998,PCR扩增效率为102.21%。2.3 两种检测方法样本测定结果比较 分别运用bDNA技术和RT-qPCR法检测44份血清标本的游离DNA含量。其中运用bDNA技术,检测44份血清标本的游离DNA浓度中位数为252.2(123.9~481.4)ng/mL,RT-qPCR法检测的游离DNA浓度中位数为65.5(38.0~131.6)ng/mL。Spearman相关性分析显示,两种方法检测的血清游离DNA水平呈正相关(r= 0.7077,P<0.0001),见图1。
图1 两种方法检测的血清游离DNA比较
2.4 bDNA技术检测血清及血浆标本 采用bDNA技术分别检测10例血清及其对应的血浆标本中游离DNA的浓度。其结果如图2所示。
图2 bDNA技术检测血清和血浆标本中游离DNA浓度
本研究同时采用新型的bDNA方法及经典的RT-qPCR法,测定人血清游离DNA水平。之前众多针对游离DNA的研究,大多采用RT-qPCR的方法,其准确性和精确性很大程度上依赖于前期样本DNA的提取与纯化步骤。而bDNA技术选择人类基因组中,短串联重复序列作为靶序列,直接测定血清样本中游离DNA的含量。避免了样本预处理的繁琐操作,在达到较高灵敏度的同时又具有较好的重复性[6]。在本实验中,由2种检测方法建立的标准曲线可看出,bDNA技术和RT-qPCR法测定血清游离DNA均具有较好的线性。在同时检测44例血清标本时,2种方法检测结果呈现较高的相关性(r=0.7077)。因此本研究所采用的bDNA,针对Alu序列检测血清游离DNA的方法,具有较高的准确性和可信度。并且bDNA操作简便,适用于人群大规模筛查游离DNA水平。
另外在检测游离DNA水平时,常会出现一些类似的实验采用不同来源的样本(血清/血浆)进行分析而造成结果差异现象[3,7]。本研究通过检测10例人血清和血浆中游离DNA的浓度,得到和以往的实验相一致的结果,即血清样本中的游离DNA水平高于血浆中的水平[8]。这可能是由于血小板中的线粒体DNA和白细胞中的染色体DNA,在血液凝结时释放出来。据此我们认为,无论血清或血浆,均可作为检测游离DNA的实验标本,在临床应用中应建立不同的参考区间。
[1]Schw arzenbach H,Hoon DS,Pantel K.Cell-free nucleic acids as biomarkers in cancer patients[J].Nat Rev Cancer,2011,11(6):426-437.
[2]Chan KC,Lo YM.Circulating tumour-derived nucleic acids in cancer patients:potential applications as tumour markers [J].Br J Cancer,2007,96(5):681-685.
[3]Xue X,Teare MD,Holen I,et al.Optimizing the yield and utility of circulating cell-free DNA from plasma and serum [J].Clin Chim Acta,2009,404(2):100-104.
[4]Qi J,Qian C,Shi W,et al.Alu-based cell-free DNA:a potential complementary biomarker for diagnosis of colorectal cancer[J].Clin Biochem,2013,46(1/2):64-69.
[5]Umetani N,Kim J,Hiramatsu S,et al.Increased integrity of free circulating DNA in sera of patients with colorectal or periampullary cancer:direct quantitative PCR for ALU repeats[J].Clin Chem,2006,52(6):1062-1069.
[6]Jing RR,Wang HM,Cui M,et al.A sensitive method to quantify human cell-free circulating DNA in blood:relevance to myocardial infarction screening[J].Clin Biochem,2011,44(13):1074-1079.
[7]Board RE,Williams VS,Knight L,et al.Isolation and extraction of circulating tumor DNA from patients with small cell lung cancer[J].Ann N Y Acad Sci,2008,1137:98-107.
[8]Chen JA,Meister S,Urbonaviciute V,et al.Sensitive detection of plasma/serum DNA in patients with systemic lupus erythematosus[J].Autoimmunity,2007,40(4):307-310.
Comparative study of two methods for detection of cell-free DNA
SHI Wei,Qi Jing,SHEN Xianjuan,WU Xinhua,JU Shaoqin,LIU Caiwang
(Comprehensive Surgical Laboratory,the Affiliated Hospital of Nantong University,Jiangsu 226001)
Objective:Compare two methods to detect the concentrations of serum cell-free DNA by using branched DNA assay(bDNA)and real-time fluorescence quantitative real-time polymerase chain reaction(RT-qPCR).Methods:44 samples of serum cell-free DNA were measured by both bDNA based on Alu sequence and qPCR.The correlation between the two methods was analyzed by a Spearman rank test.Detection of cell-free DNA in human plasma and serum was analyzed by bDNA.Results:It was demonstrated in the present study that the bDNA method was highly correlated with realtime PCR(r=0.7077,P<0.0001).Cell-free DNA concentrations were higher in serum than in plasma.Conclusion:bDNA assay had advantages of lower time and labor compared to the qPCR method that is applicable to screening consideration.
cell-free DNA;branched DNA assay;real-time fluorescence quantitative polymerase chain reaction
Q523
A
2014-10-09
1006-2440(2014)06-0579-03
南通市科技项目(HS2016056);南通大学校级自然科研项目(11Z014)。
**[作者简介]施维,男,汉族,江苏南通人,生于1976年6月,硕士,研究实习员。研究方向:分子诊断。 通信作者:刘才旺,副主任技师,E-mail:lcw558@126.com