SIRT1-FoxO-自噬通路研究进展

2014-01-27 11:48黄秀兰
中国药理学通报 2014年7期
关键词:乙酰化磷酸化调节

徐 俊,黄秀兰

(中央民族大学中国少数民族传统医学国家民委-教育部重点实验室,北京 100081)

自噬是真核细胞内的蛋白质大分子、细胞器等在自噬溶酶体的作用下被降解的过程。生理情况下,自噬是细胞重塑、维持细胞内稳态的必要过程;而在炎症反应、氧化应激等病理情况下,细胞凋亡过程中伴有自噬过度激活,因此细胞内自噬活性的调控尤其重要[1-2]。FoxO(forkhead box-containing protein,O subfamily)转录因子是一类关键的自噬调控因子,以FoxO1、FoxO3的作用最为广泛。FoxO可通过激活细胞自噬活性,在心脏、血管、骨骼肌、肝脏、脑组织等多种器官或组织中,参与调节细胞增殖、代谢、存活等过程。FoxO的转录激活能力受其乙酰化/去乙酰化、磷酸化/去磷酸化过程的特异性调节[3]。沉默信息调节因子Sir2(silent information regulator 2)基因家族是一类NAD+依赖型去乙酰化酶,作为其重要成员的SIRT1对FoxO的去乙酰化调节,在细胞自噬调控中具有重要作用,大量研究表明,SIRT1-FoxO-自噬通路对糖尿病、衰老、肥胖、肿瘤、心血管疾病等具有重要影响。本文将阐释FoxO的转录调控机制,进而综述SIRT1-FoxO通路调控自噬,对多种组织、器官中病理生理过程的调节。

1 FoxO的转录调节机制

FoxO1和FoxO3是叉头蛋白转录因子大家族(Foxes)O亚家族的重要成员,广泛表达于心脏、血管内皮、脂肪、肝脏、脑、骨骼肌等多种器官与组织。FoxO蛋白质结构可分为“叉头区”(FH)、核定位信号(NLS)、核输出信号(NES)、转录激活区(TA或TAD)。FoxO中的乙酰化位点、磷酸化位点等转录后修饰位点,对其DNA结合活性和亚细胞定位等具有重要影响。

1.1 FoxO的乙酰化/去乙酰化调节其转录活性CBP、p300等细胞核蛋白具有组蛋白乙酰转移酶(HAT)活性,可对FoxO蛋白结构中DNA结合区域的赖氨酸残基乙酰化,导致FoxO的转录激活能力降低。氧化应激时,FoxO被CBP、p300等乙酰化增多,乙酰化的FoxO(Ac-FoxO)在细胞核内积累,并与核小体结合,以屏蔽其转录调节活性[4],而细胞核中的SIRT1可能通过对Ac-FoxO去乙酰化而激活FoxO的转录调节活性,这与β细胞中被CBP/p300乙酰化形成的Ac-FoxO可由SIRT1去乙酰化而激活的事实相符[5]。

1.2 FoxO的磷酸化/去磷酸化决定其亚细胞定位FoxO蛋白磷酸化调控其自身的亚细胞定位,磷酸化主要由蛋白激酶B(PKB或Akt)完成。当FoxO被PKB磷酸化后,FoxO与细胞核内的分子伴侣14-3-3蛋白质结合,通过FoxO蛋白质结构中核定位信号(NLS)的调节,将FoxO1输出到细胞质中,从而无法发挥其转录调节的功能。尽管14-3-3蛋白质大多存在于细胞质中,但与FoxO的结合主要发生在细胞核内[6]。FoxO定位于细胞核内,主要发生在氧化应激、遗传毒性应激等条件下,磷酸化的FoxO受到JNK、哺乳动物St20-样激酶的作用,去磷酸化而进入细胞核[5],这表明氧化应激等条件下诱导的FoxO细胞核定位可能与JNK依赖的磷酸化过程和细胞质隔离14-3-3蛋白质有关。

1.3 FoxO的乙酰化/去乙酰化、磷酸化/去磷酸化过程的相互调节FoxO蛋白乙酰化/去乙酰化、磷酸化/去磷酸化分别调控其转录活性和亚细胞定位,同时具有相互调节的作用。有文献报道,Sir2激活可使FoxO蛋白叉头区域的带正电的赖氨酸发生去乙酰化,减弱FoxO对靶DNA的结合作用,降低靶DNA的转录活性,同时,PKB对FoxO的磷酸化作用可使FoxO对Sir2的去乙酰化作用更加敏感,可见FoxO的乙酰化/去乙酰化、磷酸化/去磷酸化过程起到相互调节的作用[7]。

2 SIRT1-FoxO-自噬通路对疾病的影响

自噬被抑制后导致变性蛋白质和失能细胞器等清除延迟及异常蓄积,可能诱发糖尿病、衰老、肥胖、肿瘤、心血管疾病等多种代谢性疾病[2]。SIRT1对FoxO的去乙酰化调节作用,对自噬水平的调节具有重要意义。研究发现,SIRT1-FoxO-自噬通路对糖尿病、肥胖、肿瘤、心血管疾病、衰老等病理生理过程,具有重要调控作用。

2.1 SIRT1-FoxO-自噬通路对糖尿病的影响自噬相关基因vps34、Atg12和Gabarapl1的表达影响自噬程度,SIRT1-FoxO可通过调节自噬相关基因的表达水平,对糖尿病产生影响。在胰岛素抵抗或高胰岛素血症的小鼠肝脏中,自噬相关基因vps34、Atg12和Gabarapl1的表达水平较低,而使用链脲霉素诱导胰岛素缺乏时,表达水平提高。由于这3种自噬相关基因的表达依赖于FoxO1转录因子,表明胰岛素可能通过抑制FoxO1的表达抑制自噬。进一步研究表明,胰岛素可能是通过诱导mTOR,经Akt/S6K通路调节FoxO1活性抑制自噬[2]。水飞蓟素可翻转链脲霉素诱导的SIRT1表达降低的现象,通过促进SIRT1的表达,进而调控自噬,修复受损胰岛β细胞,表明自噬参与调节胰岛β细胞量缺失和代谢紊乱[8]。持续性高血糖时,大鼠胰腺肿瘤β(INS-1)细胞的Ac-FoxO与SIRT1结合率较高,而使用SIRT1抑制剂时,可提高该条件下INS-1细胞凋亡。SIRT1-FoxO通路对高糖条件下INS-1细胞存活的调控作用,与SIRT1-FoxO通过调控自噬调节细胞存活相一致[9]。

2.2 SIRT1-FoxO-自噬通路对衰老的影响氧化应激、炎症反应是导致衰老的重要因素,SIRT1-FoxO-自噬通路通过调节氧化应激和炎症反应,参与对衰老的调节,该过程与调节AMPK信号有关。在内皮细胞(ECs)中,采用化学诱导增强SIRT1活性或敲除p300,可逆转高糖条件下FoxO1的DNA结合能力减弱、抗氧化靶基因表达降低的状况,表明高血糖症促进衰老的过程与下调SIRT1,并通过p300、FoxO1有关通路减少线粒体抗氧化酶有关[10]。当p300乙酰化并激活PPAR-γ时,PPAR-γ可与SIRT1的促进剂相结合,减少SIRT1表达[11];同时,p300对FoxO1乙酰化有助于FoxO1被Akt磷酸化,并从细胞核内随14-3-3蛋白质一起输出至细胞质[12]。此外,AMPK诱导激活 FoxO/DAF-16、Nrf2/SKN-1和SIRT信号通路,可促进细胞抵抗应激,且AMPK可通过抑制NF-κB信号抑制炎症反应[13]。ROS可直接或间接的降低SIRT1的酶活性,而SIRT1能够通过FoxO途径,刺激抗氧化物的表达,同时 SIRT1活性降低能够增强 NF-κB信号。SIRT1和ROS的信号串扰,可引起自噬信号的降低、并减少炎症反应的发生[14]。

2.3 SIRT1-FoxO-自噬通路对肥胖的影响PPAR-γ是脂肪组织中表达水平较高的转录因子,在脂质分化、代谢过程中具有重要作用,SIRT1-FoxO-自噬通路对肥胖的影响与调节PPAR-γ有关。FoxO1与PPAR-γ结合并抑制其转录活性,而FoxO1去乙酰化是抑制FoxO1与PPAR-γ结合的关键步骤。在3T3-L1脂肪细胞中,石榴酸可明显下调PPAR-γ蛋白水平,上调 SIRT1,激活 AMPK信号,同时促进 Akt对FOXO1和FOXO3a的磷酸化作用,表明石榴酸抑制脂肪细胞分化和脂质积累可能与调节PPAR-γ水平、SIRT1乙酰化作用及FOXO1和FOXO3a磷酸化水平有关[15]。在脂肪组织的形成过程中,SIRT2可能具有与SIRT1相似的功能。3T3-L1脂肪细胞中SIRT2表达可促进脂质分解、抑制脂质生成,该过程是通过调节FoxO1的乙酰化/去乙酰化过程完成的。SIRT2表达可升高FoxO1的去乙酰化水平,促进FoxO1与PPAR-γ的结合,抑制PPAR-γ的转录活性,进而抑制脂质生成。提示SIRT2可通过调控FoxO1乙酰化水平,抑制 PPAR-γ,参与调控脂肪生成[16]。

2.4 SIRT1-FoxO-自噬通路对肿瘤的影响SIRT1-FoxO-自噬通路对肿瘤具有重要调控作用。SIRT1参与肿瘤的发生发展和肿瘤的化学治疗作用的双向过程,尤其在抗药性肿瘤中,SIRT1明显过表达,且与调节FoxO3a相关。化学治疗时,SIRT1可去乙酰化FoxO3a,调节相关基因表达,抑制肿瘤细胞增殖,促进肿瘤细胞死亡[17]。而通过自噬通路抑制肿瘤细胞活性,FoxO具有不可或缺的重要作用。氧化应激时,FoxO1被激活,FoxO1与Atg7、E1样蛋白结合能力升高,影响肿瘤细胞自噬[18]。非折叠蛋白反应(UPR)转录因子XBP-1u可促进FoxO1降解,对肿瘤细胞的自噬产生调控作用。细胞外蛋白激酶ERK1/2对XBP-1u蛋白Ser61和Ser176磷酸化,可提高XBP-1u和FoxO1的相互反应能力,增加20S蛋白酶体对FoxO1的降解。敲除XBP-1u可使FoxO1维持较高水平,持续激活自噬,降低肿瘤细胞活力,表明肿瘤细胞中XBP-1u抑制自噬活性与FoxO1密切相关[19-20]。此外,丝/苏氨酸激酶LKB1作为一个关键的肿瘤抑制因子,可通过自噬通路,下调mTOR活性,抑制肿瘤发生,而LKB1可能同时受到SIRT1-FoxO-自噬通路的调节。敲除FoxO3基因,抑制FoxO3表达,可明显降低LKB1活性,减少AMPK磷酸化,表明FoxO3参与肿瘤抑制因子LKB1的转录调节过程[21]。

2.5 SIRT1-FoxO-自噬通路对亨廷顿病的影响亨廷顿蛋白(Htt)氨基末端第17位氨基酸残基产生突变时,CAG过度重复编码形成的多聚谷氨酰胺(Poly Q),是引起亨廷顿病的重要原因。自噬水平升高,可增加对突变亨廷顿蛋白(mHtt)的清除,减轻mHtt的细胞毒性,改善亨廷顿病病情。在神经元中,XBP-1缺失可诱导FoxO1表达,增强自噬,清除mHtt[22]。SIRT1过表达,可降低 Poly Q毒性扩散对新杆状线虫神经元的损伤,该过程需要FoxO及其伴侣β-连环蛋白的参与。敲除小鼠β-连环蛋白基因后,亨廷顿蛋白发生突变的纹状体细胞更容易死亡,而SIRT1过表达可逆转此现象,表明β-连环蛋白、SIRT1-FoxO可能对神经元具有保护作用[23]。人成神经细胞瘤SH-SY5Y细胞经抗肿瘤试剂β-拉帕醌(β-lapachone)处理后,SIRT1活性明显提高,FoxO1核转位增加,自噬水平明显升高,使mHtt的细胞毒性明显降低,自噬抑制剂3-甲基腺嘌呤(3MA)可抑制该过程,表明提高SIRT1活性,减少poly Q蛋白聚合物并降低其细胞毒性的过程,是在FoxO1的参与下,调节自噬水平完成的[24]。

2.6 SIRT1-FoxO-自噬通路对心血管疾病的影响错误折叠、丧失功能的蛋白质和破损、衰老的细胞器(如线粒体、内质网等)是引起心肌肥大、缺血性心肌病、动脉粥样硬化等多种心血管疾病的重要病理生理机制,自噬在维持心肌结构和功能方面具有重要作用。葡萄糖剥夺可减小大鼠乳鼠心肌细胞体积、诱导自噬相关基因LC3、Gabarapl1和Atg12的表达,FoxO1、FoxO3转位于细胞核内,并与Gabarapl1和Atg12的启动子序列相结合增多。进一步研究发现,饥饿或缺血/再灌注(I/R)在诱导大鼠自噬时,FoxO1磷酸化水平同时升高,细胞核内FoxO1的转录活性增加,表明FoxO1可能通过调节自噬发挥调控心肌细胞大小的作用[25]。缺血或营养剥夺可通过SIRT1-FoxO激活自噬,以维持心脏功能,而在缺血后再灌注过程中,自噬相关蛋白Beclin1水平大幅上调,导致过度自噬,引起心肌细胞死亡[26]。GTP结合蛋白Rab7在自噬体与内含体/溶酶体的融合过程中具有重要作用。葡萄糖缺乏时,SIRT1对FoxO1的去乙酰化增强,提高Rab7的表达,在介导自噬中也具有一定作用,表明 SIRT1诱导的FoxO1去乙酰化和Rab7上调,可能在介导饥饿条件下心肌细胞自噬过程中具有重要功能[27]。

2.7 SIRT1-FoxO-自噬通路对肌肉萎缩的影响SIRT1-FoxO对Ⅱ型骨骼肌萎缩的影响,可能与降低自噬活性,减少骨骼肌细胞损失有关。尽管在肝脏、心脏等多种组织、器官中已证实,营养剥夺可提高SIRT1活性,进而去乙酰化并激活FoxO,通过增强自噬,清除毒性蛋白质、功能失调的细胞器甚至细胞,维持细胞内稳态、调节细胞数量。但有趣的是,对成年雄性CD1小鼠营养剥夺后,Ⅱ型骨骼肌胫骨前肌中SIRT1水平明显降低,肌肉迅速萎缩;而在正常肌肉中,SIRT1过表达则可通过抑制FoxO1和FoxO3表达,减轻肌肉萎缩,甚至导致肌肉肥大,该过程与阻断肌肉泛素连接酶atrogin1、MuRF1及多种自噬相关基因Atg的激活,降低蛋白水解反应有关[28]。在II型骨骼肌中发现的这一现象与其他组织、器官的情况截然相反,提示在不同组织、器官中或不同疾病的病理生理过程中,SIRT1-FoxO-自噬通路可能具有不同的功能。

3 展望

SIRT1-FoxO-自噬通路广泛存在与肝脏、脂肪、脑、心脏等多种组织、器官中,可能为糖尿病、肥胖、神经退行性疾病、心血管疾病等多种疾病提供新的防治策略。目前研究发现,SIRT1可通过两种途径调节自噬:一是通过去乙酰化自噬相关基因Atg5、Atg7和Atg8的表达产物,直接影响自噬;二是细胞核内的SIRT1通过激活FoxO诱导自噬。FoxO影响自噬是一个复杂的过程,如乙酰化的FoxO1还可在细胞质内与Atg7相结合调节自噬,而SIRT1-FoxO-自噬的过程与细胞质内FoxO1调节自噬的过程有所区别,因为自噬条件下,FoxO和SIRT1可能同时受到JNK介导的应激信号的调控[29]。SIRT1-FoxO-自噬通路在II型骨骼肌中的作用可能有所不同。

除SIRT1外,Sir2基因家族其他成员可能对FoxO及其下游的自噬信号具有调控作用。氧化应激时,SIRT2可使FoxO1去乙酰化,并促进FoxO1与Atg7、E1样蛋白结合,增加肿瘤细胞自噬[19]。在心血管系统中,SIRT1、SIRT3、SIRT7均有表达,分别定位于细胞核、线粒体、核仁,但对FoxO-自噬通路的调节作用主要与SIRT1有关[30],表明Sir2基因家族对FoxO-自噬信号存在复杂的调节作用。

参考文献:

[1]Zhou J,LiaoW,Yang J,et al.FOXO3 induces FOXO1-dependent autophagy by activating the AKT1 signaling pathway[J].Autophagy,2012,8:1712-23.

[2]Liu H Y,Han J,Cao SY,etal.Hepatic autophagy is suppressed in the presence of insulin resistance and hyperinsulinemia:inhibition of FoxO1-dependent expression of key autophagy genes by insulin[J].JBiol Chem,2009,284:31484-92.

[3]Ferdous A,Battiprolu PK,Ni YG,etal.FoxO,autophagy,and cardiac remodeling[J].JCardiovasc Transl Res,2010,3:355-64.

[4]Watroba M,Maslinska D,Maslinski S.Current overview of functions of FoxO proteins,with special regards to cellular homeostasis,cell response to stress,aswell as inflammation and aging[J].Adv Med Sci,2012,57:183-95.

[5]Glauser D A,SchlegelW.The emerging role of FOXO transcription factors in pancreatic beta cells[J].JEndocrinol,2007,193:195-207.

[6] Huang H,Tindall D J.Dynamic FoxO transcription factors[J].J Cell Sci,2007,120:2479-87.

[7]MatsuzakiH,Daitoku H,Hatta M,etal.Acetylation of Foxo1 alters its DNA-binding ability and sensitivity to phosphorylation[J].Proc Natl Acad Sci USA,2005,102:11278-83.

[8]Wang Q,Liu M,Liu W W,et al.In vivorecovery effect of silibinin treatment on streptozotocin-induced diabetic mice is associated with themodulations of Sirt-1 expression and autophagy in pancreatic beta-cell[J].JAsian Nat Prod Res,2012,14:413-23.

[9]Kim M,Chung H,Yoon C,etal.Increase of INS-1 cell apoptosis under glucose fluctuation and the involvementof FOXO-SIRT pathway[J].Diabetes Res Clin Pract,2012,98:132-9.

[10]Mortuza R,Chen S,Feng B,et al.High glucose induced alteration of SIRTs in endothelial cells causes rapid aging in a p300 and FOXO regulated pathway[J].PLoSOne,2013,8:e54514.

[11]Han L,Zhou R,Niu J,et al.SIRT1 is regulated by a PPAR{gamma}-SIRT1 negative feedback loop associated with senescence[J].Nucleic Acids Res,2010,38:7458-71.

[12]Nasrin N,Kaushik VK,Fortier E,et al.JNK1 phosphorylates SIRT1 and promotes its enzymatic activity[J].PLoSOne,2009,4:e8414.

[13]Salminen A, Kaarniranta K.AMP-activated protein kinase(AMPK)controls the aging process via an integrated signaling network[J].Ageing Res Rev,2012,11:230-41.

[14]Salminen A,Kaarniranta K,Kauppinen A.Crosstalk between oxidative stress and SIRT1:Impact on the aging process[J].Int J Mol Sci,2013,14:3834-59.

[15]LaiCS,TsaiM L,Badmaev V,etal.Xanthigen suppresses preadipocyte differentiation and adipogenesis through down-regulation of PPARgamma and C/EBPs and modulation of SIRT-1,AMPK,and FoxO pathways[J].J Agric Food Chem,2012,60:1094-101.

[16]Wang F,Tong Q.SIRT2 suppresses adipocyte differentiation by deacetylating FOXO1 and enhancing FOXO1's repressive interaction with PPARgamma[J].Mol Biol Cell,2009,20:801-8.

[17]Olmos Y,Brosens JJ,Lam EW.Interplay between SIRT proteins and tumour suppressor transcription factors in chemotherapeutic resistance of cancer[J].Drug Resist Updat,2011,14:35-44.

[18]Zhao Y,Yang J,Liao W,et al.Cytosolic FoxO1 is essential for the induction of autophagy and tumour suppressor activity[J].Nat Cell Biol,2010,12:665-75.

[19]Zhao Y,Li X,CaiM Y,et al.XBP-1u suppresses autophagy by promoting the degradation of FoxO1 in cancer cells[J].Cell Res,2013,23:491-507.

[20]Vidal R L,Hetz C.Unspliced XBP1 controls autophagy through FoxO1[J].Cell Res,2013,23:463-4.

[21]Lutzner N,De-Castro Arce J,Rosl F.Gene expression of the tumour suppressor LKB1 is mediated by Sp1,NF-Y and FOXO transcription factors[J].PLoSOne,2012,7:e32590.

[22]Vidal R L,Figueroa A,Court FA,etal.Targeting the UPR transcription factor XBP1 protects against Huntington's disease through the regulation of FoxO1 and autophagy[J].Hum Mol Genet,2012,21:2245-62.

[23]Parker JA,Vazquez-Manrique R P,Tourette C,etal.Integration of beta-catenin,sirtuin,and FOXO signaling protects from mutant huntingtin toxicity[J].JNeurosci,2012,32:12630-40.

[24]Shin B H,Lim Y,Oh H J,et al.Pharmacological activation of Sirt1 ameliorates polyglutamine-induced toxicity through the regulation of autophagy[J].PLoSOne,2013,8:e64953.

[25]Sengupta A,Molkentin JD,Yutzey K E.FoxO transcription factors promote autophagy in cardiomyocytes[J].J Biol Chem,2009,284:28319-31.

[26]Sciarretta S,Hariharan N,Monden Y,et al.Is autophagy in response to ischemia and reperfusion protective or detrimental for the heart[J]?Pediatr Cardiol,2011,32:275-81.

[27]Hariharan N,Maejima Y,Nakae J,et al.Deacetylation of FoxO by Sirt1 plays an essential role inmediating starvation-induced autophagy in cardiacmyocytes[J].Circ Res,2010,107:1470-82.

[28]Lee D,Goldberg A L.SIRT1 by blocking the activities of FoxO1 and 3 inhibitsmuscle atrophy and promotesmuscle growth[J].J Biol Chem,2013,18;288(42):30515-26.

[29]Ng F,Tang B L.Sirtuins′modulation of autophagy[J].J Cell Physiol,2013,228:2262-70.

[30]Nakagawa T,Guarente L.Sirtuins at a glance[J].J Cell Sci,2011,124:833-8.

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