邢艳玲,张玉环,廉信
(1.天津市津南区咸水沽医院,天津300350;2.天津市中医药研究院,天津300120;3.山东省桓台县人民医院,桓台250100)
变应性接触性皮炎(allergic contact dermatitis,ACD)是一种由T细胞介导的IV型变态反应,其发病机制相当复杂。近年来的研究表明,ACD属于Th1型疾病,趋化因子及其受体在ACD中具有重要作用[1]。雷公藤多苷属于非甾体类免疫抑制类药物,具有显著的抗炎、免疫抑制等作用,能够调整和改善机体的免疫功能,对细胞免疫和体液免疫均有较强的抑制作用[2],在临床工作中应用雷公藤多苷治疗ACD效果确切,但其具体机制尚未完全明确。γ干扰素诱导蛋白10(interferon-gamma-inducible protein-10,IP-10)、 嗜 酸 性 粒 细 胞 趋 化 因 子(Eosinophil chemoattractant chemokine,Eotaxin)都属于趋化性细胞因子,IP-10主要表达于Thl型细胞,Eotaxin主要表达于Th2型细胞。其与相应受体结合后主要参与效应T细胞的产生、迁移以及活化,来诱导Thl或Th2细胞免疫。本实验通过观察雷公藤多苷对ACD患者PBMC中趋化因子IP-10、Eotaxin mRNA表达的影响,进一步探讨雷公藤多苷治疗ACD的免疫机制,为临床治疗ACD提供理论依据。
1.1 资料
1.1.1 研究对象 30例ACD患者来自2010年3月—2012年10月天津市咸水沽医院皮肤科门诊,其中男11例,女19例,年龄范围18~72岁,平均年龄(38.47±15.61)岁。
1.1.2 主要仪器及药物 电泳仪购于美国Amersham公司;实时RT-PCR检测试剂盒购自TaKaRa公司,PCR扩增仪RG-3000购自澳大利亚Corbett公司;凝胶成像系统(英国UVItec公司);DEPC液、TRIzol购于Sigma公司;雷公藤多苷,称10 mg雷公藤多苷溶于1 mL二甲基亚砜(DMSO),加入9 mL的RPMI-1640培养液,然后取配好的上述液体0.5 mL,加入到9.5 mL的RPMI-1640培养液中,其浓度为50 mg/L,滤菌分装。
1.2 试验方法
1.2.1 外周血淋巴细胞的分离 取ACD患者外周血5 mL,肝素抗凝,加入等量的Hanks液混匀,移液管吸取稀释血液加于淋巴细胞分离液上,保持淋巴细胞分层液与血样品之间的界限清晰,2000 r/min离心20 min后,液体分为4层,吸取第二层白膜状的单个核细胞层液体,加入5倍量的Hanks液洗涤1次,1000 r/min离心10 min,离心后将沉淀的细胞用含10%胎牛血清(FBS)的RPMI 1640培养液配成单细胞悬液。
1.2.2 PBMC抑制率的测定 取上述细胞悬液分别加入不同浓度的雷公藤多苷(0,0.25,0.5,1.0,2.5,5.0,10.0 mg/L),培养48 h后,分别加入5 g/L的MTT 100 μL 培养 4 h 后加入 DMSO 100 μL,震荡 10 min后立即置酶标仪测吸光度A492 nm值,其中抑制率=[1-(实验组 A/对照组 A)]×100%。
1.2.3 外周血淋巴细胞的培养 取1.2.1中单细胞悬液加入24孔培养板,每孔0.5 mL,根据MTT试验结果,分别加入含有不同浓度雷公藤多苷的RPMI-1640 培养液,使其终浓度分别 5.0,1.0,0.5,0 mg/L,以加有单细胞悬液而不含有雷公藤多苷的培养液孔为对照组,培养48 h后进行检测。
1.2.4 细胞总RNA提取 采用细胞总RNA Trizol试剂提取RNA,严格按照试剂说明书进行提取,取少量在紫外分光光度计260 nm和280 nm下确定浓度和纯度,并在1.2%的琼脂糖凝胶中电泳,然后进行凝胶成像分析。
1.2.5 ACD患者外周血 PBMC中 IP-10、Eotaxin mRNA的检测 ①引物设计与合成:引物由大连宝生物工程有限公司设计并合成,GAPDH为内参基因 :IP-10:5′-GGCCATCAAGAATTTACTGAAAGC A-3′,5′-TCTGTGGGTCCATCCTTGGAA-3′;Eotaxin:5’-CTCTCCGTAGCAACCCTTTG-3′,5′-TATCCTTGGCCAGTTTGGTC-3′;GAPDH:5′-GCACCGTCAAGGCTAGAAC-3′,5′-TGGTGAAGACGCCAGTGG A-3′。②严格按照实时RT-PCR试剂盒所述方法对ACD患者PBMC中IP-10、Eotaxin mRNA的相对表达量进行测定。反应结束后确认Real Time PCR的扩增曲线和溶解曲线,再根据一定的阈值取其CT值,2△△CT法测定 IP-10、EotaxinmRNA 的相对表达量。
1.3 统计学方法 采用SPSS 11.5软件进行统计学分析,数据以均数±标准差()表示,组间比较采用方差分析进行统计,P<0.05有统计学意义。
2.1 PBMC抑制率的测定 不同浓度的雷公藤多苷对PBMC生长均成不同浓度的抑制,并且呈浓度依赖性。随着雷公藤多苷剂量的增加,对PBMC的生长抑制率显著上升,其半数细胞的抑制剂量(ID50)值约为 10 mg/L。
2.2 雷公藤多苷高、中、低3个浓度组体外培养的ACD患者PBMC中IP-10 mRNA表达明显低于对照组,差异均有统计学意义(P<0.01);雷公藤多苷含药血清3个浓度组之间比较,IP-10 mRNA表达差异均无统计学意义(P>0.05);雷公藤多苷含药血清3个浓度组之间及与对照组比较,体外培养的ACD患者PBMC中Eotaxin mRNA的表达差异均无统计学意义(P>0.05),见表1。雷公藤多苷含药血清可以明显抑制体外培养的ACD患者PBMC中IP-10 mRNA表达,但与浓度高低无明显关系。雷公藤多苷含药血清对体外培养的ACD患者PBMC中Eotaxin mRNA的表达无影响。
2.3 雷公藤多苷与 IP-10 mRNA、Eotaxin mRNA△CT值的相关性分析 不同浓度的雷公藤多苷(0、0.5,1.0,5.0 mg/L)与 IP-10 mRNA △CT 值存在正相关,相关系数r=0.653(P<0.01),而与 Eotaxin mRNA△CT值无明显相关关系(P>0.05)。
IP-10具有强大的招募中性粒细胞、促进细胞因子分泌及抑制部分肿瘤生长等多种生物学作用。研究表明,在类风湿关节炎中,趋化因子在炎症细胞向滑膜组织迁移及活化过程中发挥了关键作用,IP-10可与表达在T细胞表面的趋化因子受体CXCR3结合促进其活化并向CD4+Th1细胞方向分化,从而促进炎症反应[3]。Kong等[4]曾报道在系统性红斑狼疮患者中IP-10水平升高,IP-10水平与疾病的活动度相关,甚至在抗dsDNA抗体、C3表达较低的时候,IP-10可作为一种监测疾病活动的敏感指标。因此推测认为IP-10可能通过特异性选择作用于表面CXCR3活性的Th1细胞,在炎症触发过程中起重要作用,并且可能参与SLE免疫异常和发病过程。IP-10和Mig在银屑病患者的皮损中表达持续上调[5],在活动期斑块型银屑病的角质形成细胞和真皮浸润细胞可测到IP-10,有效治疗后IP-10表达减少[6]。免疫动物产生的针对IP-10的自身特异性抗体可抑制白细胞的迁移,改变自身免疫T细胞的体外Th1/Th2平衡,并能通过过继性的转移抑制疾病的发生[7]。这表明IP-10在T细胞的极化和功能发挥中起着不可替代的作用。
表1 雷公藤多苷对ACD患者PBMC IP-10 mRNA表达的影响
哮喘小鼠气道上皮Eotaxin蛋白及肺组织mRNA的表达明显高于正常对照组,哮喘小鼠气道上皮Eotaxin的表达与Eos计数明显正相关,进一步证实了Eotaxin在哮喘气道黏膜炎症中起调控作用[8]。特应性皮炎皮损中嗜酸粒细胞的沉积与Eotaxin和CCR3的mRNA和蛋白表达水平显著相关,且血中嗜酸粒细胞的增加和皮损中Eotaxin的表达相关[9],特应性皮炎发病中Th2细胞亚群占优势已受到广泛认可。有研究表明,Eotaxin在小鼠ACD模型的炎症皮肤中及TNF-γ和IL-4的诱导下,可以表达大量的Eotaxin mRNA[10],由此说明Eotaxin在T细胞介导的免疫性疾病的发病中起着重要作用。雷公藤多苷作用于儿童过敏性紫癜时,能抑制CD4+T细胞功能,改善CD8+细胞功能,下调CD4+/CD8+比值而发挥临床效应[11]。而在治疗银屑病时,雷公藤多苷却能使患者外周血中降低的CD3+、CD4+及CD4+/CD8+比值升高并恢复正常[12],同时,雷公藤可通过上调IL-10,下调 TNF-α、IL-2、IFN-γ、IL-8 等促炎症因子的表达,抑制Th1反应的启动,使免疫状态由Th1向Th2漂移[13]。有研究认为,雷公藤抑制Th1,Th2细胞因子产生的作用无特异性[14]。近年来,也有研究表明,雷公藤可能通过抑制趋化因子及受体的表达而抑制炎症的发生[15]。
在本试验中,雷公藤多苷含药血清高、中、低3个浓度组体外培养的ACD患者PBMC中IP-10 mRNA的表达明显低于对照组,差异均有统计学意义(P<0.05);雷公藤多苷含药血清3个浓度组之间比较,IP-10mRNA表达差异均无统计学意义(P>0.05);雷公藤多苷含药血清3个浓度组之间及与对照组比较,体外培养的ACD患者PBMC中Eotaxin mRNA的表达差异均无统计学意义(P>0.05)。雷公藤多苷含药血清可以明显抑制体外培养的ACD患者PBMC中IP-10 mRNA的表达,但与浓度高低无明显关系。而其对体外培养的ACD患者PBMC中Eotaxin mRNA的表达影响不明显。故推测雷公藤多苷治疗ACD的机制之一可能是通过调节IP-10、Eotaxin等趋化性细胞因子水平,改变细胞因子的表达,促进Th1/Th2平衡来实现的。
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