何平
肢体缺血-再灌注(LIR)不仅可以造成缺血组织严重损伤,而且可致心肌损伤。本试验观察LIR所致心肌损伤的影响,并探讨其可能机制。
1.1 材料 标本:健康雄性Wistar大鼠,体重210~260 g,由本院动物中心提供。自由进食、饮水,自然光照,室温(25.2±2.0)℃,分笼常规喂养。
1.2 试剂 丙二醛(MDA)试剂盒,黄嘌呤氧化酶活力(XOD)试剂盒,超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒(南京建成生物制品公司)。
1.3 方法
1.3.1 动物分组 动物随机分为2组,每组10只。①IR组:按模型操作。②对照组(Control组):橡皮带松弛环绕肢体,不阻断血流,其余操作同IR组。
1.3.2 模型制备及标本采集:Wistar大鼠试验开始前需禁食12 h,允许自由饮水。采用我科室常规方法[1]复制大鼠LIR模型:经乙醚浅麻醉下,用适度松紧的橡皮带环绕结扎大鼠双后肢根部以阻断血流4 h,松解橡皮带再恢复血流灌注2 h。各组动物在再灌注2 h时穿刺腹主动脉取血并提取组织标本,血液经3 500 r/min离心15 min,所得血浆标本分装在干净的Eppendorf管中,-70℃保存备用。同时立即开胸取出心脏,迅速纵向剖开左心室,冷磷酸盐缓冲液(PBS)充分冲洗,用滤纸吸干表面水分,液氮速冻,-70℃储藏备用。此外,每组随机取5份新鲜心脏标本,于心尖部位横断面切取组织块(长约0.5 cm)迅速投入10%甲醛溶液中固定,次日更换固定液,石蜡包埋后备用。
1.3.3 观测指标
1.3.3.1 10%心肌组织匀浆的制备:应用扭力天平称取已冻存的心肌组织200 mg,在蜡板上用眼科剪将其细细剪碎,移入装有2 ml冷0.9%氯化钠溶液的匀浆管中,冰浴条件下电动匀浆3 min。匀浆液经3 500 r/min离心15 min后,收集上清液,测定所需要的心肌组织各项生化指标。
1.3.3.2 心肌组织MDA的测定:①测定原理:MDA是过氧化脂质降解的产物,它可与硫代巴比妥酸(TBA)缩合形成一种红色物质,此物质在532 nm处有最大吸收峰,通过对此物质的测定,可推算出MDA的含量。②测定方法:旋涡混匀器混匀,试管口用保鲜薄膜扎紧并用针头刺一小孔,95℃水浴(或用锅开盖煮沸)40 min,取出后流水冷却,然后3 500~4 000 r/min,离心10 min。用移液器吸取上清,532 nm处、1 cm光径、蒸馏水调零测各管吸光度值。见表1。③计算公式:组织MDA(nmol/mgprot)=×标准品浓度(10nmol/ml)÷组织中蛋白含量(mgprot/ml)。见表1。
表1 心肌组织MDA测定方法
1.3.3.4 心肌组织SOD的测定:①测定原理:黄嘌呤及黄嘌呤氧化酶反应系统可产生超氧阴离子自由基,此物质可氧化羟胺形成亚硝酸盐,在显色剂的作用下显示紫红色,用可见光分光光度计可测其吸光度值。SOD是自由基清除酶,被测样品中含有的SOD对超氧阴离子自由基有专一性的抑制作用,可使形成的亚硝酸盐减少,紫红色显色物含量减少,比色时测定管的吸光度值低于对照管。通过公式计算可求出被测样品的SOD活力。②测定方法:混匀,室温放置10 min,550 nm处,1 cm光径,蒸馏水调零,比色读取吸光度值(OD)。见表3。③SOD活力计算:单位定义:每毫克组织蛋白在1 ml反应液中SOD抑制率达50%时所对应的SOD量为一个SOD活力单位(U)。=计算公式:组织SOD(U/mgprot)=50% ×组织中蛋白含量(mgprot/ml)。见表3。
表2 心肌组织XOD测定方法
表3 心肌组织SOD测定方法
1.4 统计学分析应用SPSS 11.5统计软件,计量资料以±s表示,采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
IR组动物心肌组织MDA、XOD、SOD水平与Control组比较,差异有统计学意义(P<0.05)。见表4。
表4 2组心肌组织观察指标水平比较n=10,±s
表4 2组心肌组织观察指标水平比较n=10,±s
注:与 Control组比较,*P <0.01
组别 MDA(nmol/mgprot) XOD(U/gprot) SOD(U/mgprot)Control组5.0 ±0.4 68 ±10 19.9 ±1.0 IR 组 7.7 ±0.8* 83 ±5* 12.5 ±1.6*
组织、器官的IR除可造成组织、器官本身严重的病理改变外,伴随着机体内环境的破坏,代谢的紊乱,损伤还可由局部波及远端脏器。LIR在引起缺血肢体损伤的同时,也可继发其他远隔组织器官的病理变化[2],严重时引起多器官功能障碍综合征[3](MODS),心肌的损伤便是MODS的重要表现之一。
3.1 心外因素造成心肌组织损伤的实验依据 研究表明,机体经受严重创伤、严重感染、缺血再灌注损伤等剧烈应激反应时,心脏可能发生可逆转或不可逆转的损伤性变化[4]。姚季生等[5]经尾静脉给大鼠注射去甲肾上腺素,发现心肌有多灶性坏死且病灶内心肌深嗜伊红性改变,部分肌原纤维断裂溶解等病理改变。在下肢IR中,心、肺是最易受累的远位靶器官[6]。有文献报道,LIR引起的氧化应激反应可造成肺水肿甚至呼吸功能障碍[7]。遭受一段时间缺血损伤的肢体,恢复血液灌流后不仅发生局部骨骼肌的再灌注损伤(reperfusion injury,RI),机体还可能出现血压进行性降低的全身应,称为止血带休克(tourniquet shock,ToS)。Jesse等[8]对止血带引发休克进行研究时发现,止血带使用3 h以上休克发生的可能性极大。任会荣等[9]建立肢体束缚应激动物模型,也观察到心肌线粒体膜明显的损伤变化。骨骼肌细胞缺血一定时间后恢复血流灌注,细胞损伤胞浆内容物释放入血,血液性状及成分明显异常[10]。心脏是接受下肢血液回流的第一站。再灌注血液经下腔静脉到右心房再灌流全心,缺血期生成的毒性代谢产物及再灌注期形成的大量炎性介质,会随着再灌注血流到达心脏并进一步播散到全身。心脏需氧量大,能量代谢过程复杂,下肢的IR可经多种机制影响心肌的代谢和功能活动,造成心肌组织损伤。
3.2 氧自由基的损伤作用 氧自由基化学性质较为活泼,可破坏机体正常氧化/还原的动态平衡,形成严重的氧化应激(oxidative stress)状态,对生物大分子(核酸、蛋白质、脂质)造成过氧化性损伤,影响正常的生命活动。LIR过程中体内有大量的自由基产生,这可作为缺血再灌注造成远位器官损伤的主要机制。其中氧自由基(OFR)可通过级联反应损伤心肌细胞膜及心脏血管内皮细胞。MDA性质稳定,是OFR攻击膜性成分多不饱和脂肪酸的终产物,它还可以进一步引起蛋白质、磷脂和核酸的交联而加重组织损伤。组织MDA水平可作为反映自由基损伤程度的指标[11]。XOD是生成OFR的催化酶,其在催化次黄嘌呤及黄嘌呤代谢的过程中,有大量超氧阴离子(O2产生。SOD是一种金属蛋白,可以歧化O2生成 H2O2并可进一步清除 H2O2,是体内主要的酶性自由基清除剂。MDA、XOD、SOD可作为机体脂质过氧化损伤程度的间接指标。实验结果显示:与Control组比较,在经受LIR的2组心肌组织中SOD含量降低(P<0.01),而XOD和MDA含量均明显增加(P<0.01),提示心肌组织中自由基产生过多,心脏及整个机体处于氧化应激状态。SOD含量的降低与缺血缺氧使其生成不足[12]和清除自由基时消耗过多有直接关系。氧自由基相关指标说明了LIR造成心肌损伤。
综上所述,大鼠LIR可引起心肌损伤。机体的氧化应激状态可能是LIR继发心脏损伤的主要机制之一。
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3 Yassin MM,Harkin DW,Barros D,et al.Lower limb ischemia-reperfusion injury triggers a systemic inflammatory response and multiple organ dysfunction.World J Surg,2002,26:115-21.
4 Wu YN,Yu H,Zhu XH,et al.Noninvasive delayed limb ischemic preconditioning attenuates myocardial ischemia-reperfusion injury in rats by a mitochondrial K(ATP)channel-dependent mechanism.Physiol Res.2010 Nov 29.[Epub ahead of print].
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7 Boutros C,Zegdi R,Lila N,et al.Carbon monoxide can prevent acute lung injury observed after ischemia reperfusion of the lower extremities.J Surg Res,2007,143:437-442.
8 Jesse L Bollman,Eunice VF.Changes in phosphate of muscle duringtourniquet shock.Am J physio,1944,142:290.
9 任会荣.束缚应激致大鼠心肌损伤的线粒体膜机制探讨.航天医学与医学工程,2003,16:32-35.
10 刘水平,刘秀琴.严重挤压伤大鼠早期心脏损伤的某些发病机制的探讨.中国应用生理学杂志,2002,18:676-678.
11 杨进城,王志伟,李朝龙,等.大鼠肝肠缺血再灌注对远隔器官损伤作用的实验研究.第一军医大学学报,2004,24:35.
12 倪江东,傅荫宇,李贺君.骨骼肌缺血再灌注损伤及其保护的实验研究.湖南医学,1998,15:92-93.