徐 晓 欧阳卫泽 郑美蓉,2
(1 九江学院临床医学院/附属医院; 2 九江学院基础医学院 江西九江 332000)
弥漫性大B 细胞淋巴瘤(diffuse large B -cell lymphoma,DLBCL)是最常见的一类非霍奇金淋巴瘤,在临床特征、形态学表现、免疫表型和分子遗传学等方面具有异质性[1]。MicroRNA 是近来发现的一类调节基因表达的非编码RNA。成熟miRNA 大约19 -25nt (核苷酸),由70 -100nt(核苷酸)pre-miRNA 剪切而来,成熟miRNA 通过和靶基因mRNA 碱基配对引导沉默复合体(RNA - induced silencing complex,RISC)降解mRNA 或阻碍其翻译,在转录后水平调控靶基因的表达[2]。miR -15a、miR -16 -1 属于MicroRNA的两个成员。2002年,Calin 等发现miR -15a和miR-16 -1 定位于人染色体13q14.3的区域内,而这一区域在50%的慢性淋巴细胞白血病(CLL)病人中缺失[2]。Cimmino 等研究发现miR-15a 和miR -16 -1 两者5’末端的前九个核苷酸与BCL2cDNA 第3287 至3279 之间的碱基互补。在慢性淋巴细胞白血病,miR-15a 和miR-16 -1都能直接与BCL2mRNA的3’UTR 作用,在转录后水平负向调控BCL -2的表达[3]。BCL -2 蛋白的表达与DLBCL的不良预后有关,miR -15a 和miR-16 -1 是否与DLBCL 中BCL-2 蛋白表达有关,现将笔者研究结果报告如下。
收集九江学院附属医院病理科2005 ~2010年DLBCL 石蜡标本30≥,随机选取反应性增生的淋巴结10≥作为对照。收集患者临床病理资料,所有组织标本均经10%的福尔马林固定,石蜡包埋。所有组织切片均由两名高级职称病理医师复审并确诊,按照2008年WHO 造血与淋巴组织肿瘤病理学标准进行形态学和免疫表型分型[1]。
应用miRNeasy FFPE Kit (QIAGEN 公司)试剂盒提取石蜡组织中的总RNA。cDNA 合成反应体系:100mmol/L dNTPs 0.2μL,1.5μL 逆转录酶,逆转录Buffer1.5μL,RNA 酶抑制剂0.2μL,无RNA 酶水4.5μL,3μL 引物和5μLRNA 样本,扩增条件如下:16℃30min,42℃30min,85℃5min,将miR-15a 和miR -16 -1 逆转录为cDNA,-20℃保存。miR -15a 和miR -16 -1 逆转录引物序列、Real -time 引物序列和Taqman 探针序列见表1[4]。
表1 miR-15a 和miR-16 -1 引物序列
反应体系总体积为30μL,含cDNA1.35μL,引物及探针Mix (20 ×,ABI 公司)1μL,TaqMan通用混合物(2 ×,ABI 公司)20μL,无核酸酶水7.65μL。在荧光定量PCR 仪上进行实时定量PCR检测,每个样本重复3 次,扩增条件为94℃5min,94℃15s、60℃40s,40个循环,软件分析其Ct值。用U6 作为内参,结果以相对CT 值表示。
采用MaxVision 两步法检测DLBCL 中Ki-67、Bcl-2的表达情况。两种抗体均购自福州迈新生物技术有限公司。采用PBS 缓冲液代替一抗作为阴性对照。结果判定:Ki -67 阳性表达率<50%记为(-),≥50%记为(+)。Bcl -2 阳性肿瘤细胞百分率≥30% 记为 (+ ), <30% 记为(-)。
采用SPSS13.0 统计软件包进行统计学处理,计量资料采用均数±标准误(x ± s)表示,miR-15a 和miR-16 -1 在两组之间表达的比较采用t检验。
DLBCL 组及反应性增生淋巴结组miR -15a表达分别为2.81 ~22.65 (5.45 ±0.79)和3.12~28.17 (8.31 ±0.85);两组miR-16 -1 表达分别为1.78 ~24.57 (4.56 ±0.87)和2.56 ~29.43(7.47 ±1.02),miR -15a 和miR -16 -1 在肿瘤组织中较正常组织低表达(p<0.05)。所有DLBCL 病例通过CD10、Bcl -6、MUM -1 免疫标记进行分类,免疫组化结果显示11≥(36.7%)为GC 型DLBCL,19≥(63.3%)为非GC 型DLBCL。miR-15a 和miR -16 -1 表达量在GC 型DLBCL 和非GC 型DLBCL 组之间差异无统计学意义(详见表2)。
表2 DLBCL 中miR-15a、miR-16 -1的表达与各参数之间的关系(CT 值,x±s)
30≥DLBCL 中有13≥表达bcl - 2 (占43.3%,图1),17≥Ki-67≥50% (占56.7%,图2)。miR-15a、miR-16 -1 表达水平与bcl-2蛋白表达、高增殖指数(Ki -67≥50%)呈负相关。
图1 DLBCL,Bcl-2 在肿瘤细胞膜和胞质阳性表达(EnVision 法 ×400)
图2 DLBCL,Ki-67 在肿瘤细胞核阳性表达(EnVision 法 ×400)
miRNA的主要功能是调节生物体内在与机体生长、发育、疾病发生过程有关基因的表达。越来越多的证据表明,miRNA 在造血细胞分化发育、免疫细胞功能调节和肿瘤发生方面发挥着重要的作用[2]。国外多项研究表明,MicroRNA 可以作为原癌基因或抑癌基因影响肿瘤的形成。本研究表明miR-15a 和miR-16 -1 在DLBCL 组较反应性增生的淋巴结组表达下降,与Eis 等[5]的研究结果相同。miR-15a 和miR -16 -1 在DLBCL 中表达的下降是否影响肿瘤的形成?Cimmino 等研究发现miR-15a 和miR-16 -1 两者5’末端的前9个核苷酸与BCL2cDNA 第3287 至3279 之间的碱基互补。在慢性淋巴细胞白血病,miR -15a 和miR-16 -1 都能直接与BCL2mRNA的3’UTR 作用,在转录后水平负向调控Bcl-2的表达[3]。
然而在滤泡性B 细胞淋巴瘤(FL)和弥漫性大B 细胞淋巴瘤(DLBCL),BCL2 基因的易位(如滤泡性淋巴瘤的标志t (14;18))将BCL2 基因置于IgH 基因启动子下游,理论上会产生BCL2蛋白的高表达[6]。在DLBCL,20 -30%病例出现BCL2 基因易位,BCL2 基因易位与BCL2 蛋白的表达是否相关,多种报道不一致[7,8]。而miR -15a 和miR-16 -1 是否影响DLBCL 中BCL2 蛋白的表达,未有相关研究报道。本研究通过荧光定量PCR 检测30≥弥漫性大B 细胞淋巴瘤中miR-15a 和miR-16 -1的表达量,免疫组化检测BCL-2 和Ki-67 蛋白的表达,发现miR -15a、miR-16 -1 表达水平与BCL-2 蛋白表达、高增殖指数(Ki-67≥50%)呈负相关,因而推测BCL-2可能是miR -15a 和miR -16 -1 发挥作用的靶基因。bcl-2 基因是一种细胞凋亡相关基因,其表达和调控是影响细胞凋亡的关键因素之一,在细胞凋亡信号转导途径中发挥着重要的作用。miR-15a 和miR-16 -1 是一种肿瘤抑制基因,其表达水平的下调可能对bcl -2 基因的靶向抑制作用减少,BCL-2 基因表达增加,参与DLBCL 形成的凋亡抑制途径。但miR -15a 和miR -16 -1 在DLBCL 是否还参与其他信号通路的调节以及具体机制,还需进一步研究。
[1]张继新,吕晓涛,高颖,等. microRNA -21 在弥漫大B 细胞淋巴瘤中的表达及意义[J].临床与实验病理学杂志,2010,26 (2) : 163.
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[6]Roehle A,Hoeleg KP,Repsilber D,et al. MicroRNA signatures characterize diffuse large B -cell lymphomas and follicular lymphomas [J]. British Journal of Haematology,2008,142 (5):732.
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