蚊类监测方法的研究进展

刘传鸽 罗 琳 胡龙飞

(1.云浮出入境检验检疫局 广东云浮 527300;2.中山大学公共卫生学院)

1 前言

蚊虫是一类重要的医学媒介，不仅吸血骚扰人的安宁，而且可以传播疾病，其携带的病原体多达265种［1］。全世界已知的蚊类超过3000种，我国已知的有395余种(亚种)［2］，对人类危害较大的有10多种。开展蚊类监测，不仅能为制定蚊类控制方案提供依据，而且还可为蚊媒传染病的流行趋势提供预测预警信息。目前，根据蚊类的孳生习性、栖息习性、产卵习性等生态学和行为学特征，在深入研究基础上，已发展起来多种监测方法，如人工叮咬法、人工小时法、紫外灯诱捕法、灭蚊磁场、诱蚊诱卵器法等，以及运用地理信息系统、卫星遥感技术对蚊类分布进行分析评价研究，将高科技元素融入监测器械等。本文根据监测对象不同，对成蚊和幼虫监测方法的研究进展进行简要综述。

2 蚊类监测方法

2.1 成蚊监测方法

通过对成蚊的监测，可以直接了解蚊虫的种类、密度、地理分布和季节消长规律，因此成蚊监测方法种类较多。常用的有人工叮咬法、人工小时法、帐诱法、紫外灯诱捕法、灭蚊磁场法等。

2.1.1 人工叮咬法

人工叮咬法是2或3人一组，暴露单侧小腿，用电动吸蚊器互相捕捉停留在身上的雌蚊，每次诱捕半小时或更长［3］，以雌蚊数/人·h表示成蚊密度。在实施的过程中，要满足定人、定时、定点的要求，以保证分析监测结果的可比性。

人工叮咬法利用雌蚊叮咬吸血的习性，是成蚊监测中最灵敏的方法，也是目前监测蚊媒刺叮节律(HBRs)最好的方法，可以评价感染率和蚊虫密度控制有效率等。使用的电动吸蚊器吸力较小，对蚊虫形态损伤不大，能够保持蚊虫细微结构如虫体鳞片的良好状态，易于进行形态学鉴定分类。调查发现，该法对嗜人血的蚊虫诱捕效果很好，灵敏性高，适用于白纹伊蚊、中华按蚊、骚扰阿蚊、致倦库蚊等的种群调查。

人工叮咬法的缺点是调查时易受不同个体对蚊虫的吸引力以及调查周围环境、气候、风力等因素的影响，而且在蚊媒传染病流行时使用此方法，调查者有因叮咬被感染的危险。

2.1.2 人工小时法

人工小时法是选择适当的蚊虫栖息场所，如人房、牛棚、猪圈作为调查点，以电动吸蚊器捕捉环境中的蚊虫，以1人1小时捕获的成蚊数作为成蚊密度［4］。在成蚊密度高的地区，可捕捉15min，所得蚊只数乘4，即为密度指数只/(人·h)。在调查时应定人、定点、定时。

人工小时法也是用电动吸蚊器捕捉成蚊，捕捉到的蚊虫易于进行形态学鉴定分类，是目前蚊类调查中最常用的方法。人工小时法可用于国境口岸的航空器、船舶等蚊类调查，特别适于捕捉停落的蚊虫，如三带喙库蚊、中华按蚊、致倦库蚊。

人工小时法缺点在于费力费时，受各种因素影响较大，如操作者熟练程度、监测时间等，并且在监测过程中调查者易受到蚊虫的叮咬，因此，在有蚊媒疾病流行的地区不宜采用。

2.1.3 帐诱法

帐诱法是在蚊虫孳生地附近，挂一锥形体蚊帐(规格：帐顶80cm×80cm，顶角到下沿角150cm，下沿两角相距150cm)，在观察场所设3个点，每点距离30－50m。将帐顶支平，四角拉开，下缘离地面30－40cm。人在帐内诱蚊入帐，或者以牛引诱，以电动吸蚊器捕捉，每次诱捕 15min 至 2h［3－4］。将捕获的成蚊进行鉴定分类，计算密度(只/帐)。帐诱法本质上也是人引诱法，因此适用于诱捕嗜血蚊虫，如致倦库蚊、白纹伊蚊、中华按蚊、骚扰阿蚊。可以根据欲诱捕蚊虫的嗜血习性，选择人诱或者动物诱。相比人工叮咬法，在调查的过程中，将蚊诱入帐内更易捕捉，但是也具备了人诱法的缺点。

2.1.4 灯诱法

灯诱法是根据成蚊对某些光线有一定的趋向性，利用一定波长的紫外线诱捕成蚊，Centers for Disease Control(CDC)Light Traps是目前常用的一种监测方法。该法是在紫外灯管的下方安装抽风马达，其下端连接集蚊笼，将诱来的成蚊收集在笼中。诱蚊灯一般悬挂于蚊虫孳生地如猪场、牛棚、居民点周围的空地上，离地1－1.5m，傍晚开启电源，诱捕2－4h或一夜，后将集蚊笼取下，送回实验室分类计算密度(只∕灯)。

灯诱法的优点为结果相对稳定客观，受人为因素影响小，节省人力，适宜于诱捕三带喙库蚊、中华按蚊等夜间活动的蚊种。在蚊密度高的监测点，短时间可诱捕到大量的蚊，如在进行蚊类携带病原体监测时，需要大量的成蚊，特别适宜采用此法。灯诱法适宜于国境口岸机场、码头、堆场等开阔地方监测蚊类密度，也可用于灭蚊。灯诱法的缺点为诱蚊品种单一、易受环境气候等外在因素影响，不适宜于诱捕伊蚊(伊蚊对紫外线不敏感);诱捕到的成蚊鳞片损伤较大，形态鉴别困难。

关于是否可以将灯诱法用来监测成蚊的HBRs，目前研究较少。Christen 等［5］将 CDC light traps和人工小时法监测阿拉伯按蚊HBRs进行比较，证明CDC light traps监测的HBRs是室内人工小时法的1.91倍，95%置信区间为 1.16－2.28。因此认为在蚊媒控制力度大和蚊媒密度很低的地区，CDC light traps可以用来监测阿拉伯按蚊的HBRs。但灯诱法是否可以用于监测蚊种的HBRs以及监测哪类蚊种的HBRs有待进一步研究。

2.1.5 灭蚊磁场

灭蚊磁场(Mosquito Magnet，MM)的工作原理是采用仿生设计，通过各种手段引诱嗜血蚊虫，最大特点在于采用对流技术并以CO2为主要诱饵吸引蚊虫，在产生CO2流的基础上还可添加辛烯醇、乳酸等信息化学物质以更好地引诱蚊虫［6］。灭蚊磁场主要有4种型号，分别为灭蚊磁场P型、F型、L型和X型。灭蚊磁场适用于口岸、机场、车站、居民区、公园、高尔夫球场、学校、医院、军队、驻地、渡假村等户外场所［7］。

灭蚊磁场可以诱捕到白纹伊蚊、中华按蚊、骚扰阿蚊、致倦库蚊等多种蚊虫。国内蔡松武等［8］观察灭蚊磁场诱捕蚊虫效果，结果在监测时段内共诱捕蚊虫1596只，其中致乏库蚊、白纹伊蚊、中华按蚊分别占 91.1%、4.9%、2.2%;蚊虫雌雄比为 9.2∶1。证明了灭蚊磁场对多种蚊虫有良好的连续诱捕效果，是监测蚊虫密度较理想的工具。

灭蚊磁场在监测不同蚊种方面差异很大，有报道利用灭蚊磁场监测按蚊时，诱捕到的An.triannulatus数量是人诱到的3.3倍，诱捕到的An.darlingi仅是人诱到的28%，认为灭蚊磁场可以充当备用方法来监测按蚊［9］。Hiwat等报道灭蚊磁场在诱捕An.aquasalis上与人诱法相差很大，效率很低［10］。笔者将灭蚊磁场放置在蕉林，诱捕到白纹伊蚊量占总诱捕蚊数的58.08%，因此认为在以白纹伊蚊为传播媒介疾病流行时，在白纹伊蚊高密度地区，灭蚊磁场可以代替人工小时法诱捕白纹伊蚊。

灭蚊磁场的诱蚊效与诱蚊剂有很大关系，Masa等人利用MM－X来检测不同的化学引诱剂的组合，证明提高引诱剂的引诱效果，MM－X诱捕按蚊的能力大大提升，与人诱效果没有差异［11］。

与其他监测手段相比，灭蚊磁场监测效率高，无需外接电源，独特的防水设计可以全天候工作，移动方便，工作时间长，在实际的蚊类监测中有着良好的应用前景。

2.1.6 The Ifakara Tent Trap

为了能有效的诱捕到传疟按蚊，Nicodemus等［12］人在传统帐诱法基础上进行了一系列改进，发明了一种新的帐诱监测方法，称为the Ifakara Tent Trap(ITT)。共有3个型号，分别为ITT－A、ITT－B和ITT－C。

ITT－A和ITT－B都是采用呈正方形的帐篷，上面有6个漏斗型的入口供蚊子飞入，外宽内窄，蚊子一旦飞进后，就不能飞出。在入口和引诱者之间有一张水平放置的纱帐，将两者隔离开，从而防止蚊虫叮咬引诱者。纱帐中部有一条拉链，可以供引诱者出入。ITT－A与ITT－B的区别在于ITT－A的蚊入口是正方形的，B的蚊入口是圆形的。

将ITT－A、ITT－B、CDC Light trap(LTs)和人工小时法相比较，在诱捕冈比亚按蚊和阿拉伯按蚊时，发现ITT－B和人工小时法的相关性最好(r2=0.73，P ＜ 0.001) ，LTs和人工小时法的相关性次之(r2=0.19，P=0.006)。证明在蚊高密度地区，ITT－B是唯一与人工小时法结果稳定的方法，并且其诱捕的灵敏性随着蚊密度的降低而升高。

但是ITT－B诱捕到的成蚊中吸血蚊虫比率较高，即诱捕者在监测中暴露受到蚊虫叮咬，为了降低监测者的暴露，在ITT－B的方法上改进和提高，提出了ITT－C［13］。C与B区别：一是将帐篷中横放于中间的屏障分割成两个小隔间，使引诱蚊子进入的开口刚好在这个小隔间内，这样引诱者就可以在帐篷内站立起来，活动范围加大，从而避免B在屏障上设拉链供引诱者进入，缩短引诱者暴露时间;二是在每个引诱的隔间悬挂密致的布料，从而使引诱者赶走叮咬的蚊子，用绳子固定帐内的布料，避免隔间下垂使引诱者受到成蚊的叮咬。将ITT－C和ITT－B进行野外试验比较，在监测阿拉伯按蚊、致倦库蚊和曼蚊时，C的灵敏性几乎是B的2 倍，95% 置信区间分别为 1.92(1.52-2.42)、1.90(1.48-2.43)和 2.30(1.54-3.30)。但 C诱捕到的冈比亚按蚊中吸血蚊虫的比率却比B下降了73%，证实C可以降低监测过程中人员的暴露。

Nicodemus等将ITT－B与人工叮咬法监测按蚊HBRs结果进行比较，观察ITT能否真实反映室内外按蚊的HBRs，但是尚未获得肯定结论［14］。目前认为在坦桑尼亚首都达累斯萨拉姆地区，ITT是唯一的廉价安全灵敏的监测方法，用于监测嗜人蚊虫密度。

2.1.7 BG－Sentinel trap

The BG－Sentinel trap是在BioGents发展起来的一种监测方法［15］。该诱蚊器轻便可以折叠(高40cm，直径为36cm)，顶部是个纱制的盖子，盖子上面用来盛放人工合成模拟人类皮肤气味的引诱剂，风扇安装在诱蚊剂下面，这样引诱剂的气味就可以被风吹出。引诱而来的蚊子被向下的气流吸进去，下面是集蚊袋［16］。本质上，该仪器就是是一个倒置的Centers for Disease Control and Prevention(CDC)gravid traps。

但是原装的诱蚊器的诱捕率很低，利用老鼠对白纹伊蚊有很强的引诱作用，以老鼠来代替人工合成的引诱剂进行实验，在相同的时间内，经改进BG－Sentinel trap诱蚊量大大增加。Wolfgang等［17］将BG－Sentinel trap和Mosquito Magnet－X(MM－X)trap的监测效果进行比较，发现当使用不同的引诱剂时，两者诱捕到的蚊虫数量有很大差别。仅以foot odour为引诱剂时，BG－Sentinel trap诱捕到的蚊虫数量是MM－X Trap的3倍左右(P=0.002)，添加CO2(500mL/min)之后，MM－X诱捕到的蚊数量增加268%，而BG－Sentinel trap诱捕到的蚊数量仅增加了34%。但是BG－Sentinel trap构造简单，容易操作。Hiwat等报道用BG－Sentinel trap可以诱捕到大量的库蚊［10］

2.1.8 孕蚊诱捕法

目前国际上使用较多的是CDC gravid traps，其底部的塑料容器里盛放引诱剂，上方2.5cm处有一电风扇，风扇转动产生向下的气流，引诱雌蚊进入收集袋［18］。White SL 等［19］采用 CDC gravid traps引诱到9种蚊，诱捕到最多的是致倦库蚊，其次有埃及伊蚊、白纹伊蚊等。CDC gravid traps的引诱效果与引诱剂有很大关系，常见的引诱剂为植物的浸润液，如爬根草、橡树叶、刺槐叶等。

此外尚有孕蚊粘捕器［20］和 The double sticky trap(DST)［21］，孕蚊粘捕法主要是根据伊蚊产卵在容器内壁上的习性，在产卵容器内壁上涂以粘胶，当蚊虫产卵时，接触粘胶被黏附，通过计数容器内黏附的雌蚊数量，对蚊种群数量进行监测。Marini［22］等使用黏性诱蚊器在意大利罗马进行了白纹伊蚊的标记－释放－捕获实验，诱捕率为4.3%，大部分诱捕到的白纹伊蚊都是处于孕期。

我国张令要［23］参照澳大利亚的埃及伊蚊等热带容器孳生型蚊虫孕蚊粘捕器制作并加以改进，成功研制出一种针对白纹伊蚊等容器孳生型蚊虫种群监测的新型孕蚊粘捕器，并设计了两种孕蚊粘捕器：第一种粘捕器的桶盖中央孔径为7cm。在实际应用过程中，降雨较大时粘胶常被雨水打湿，影响粘捕效果。因此为减少雨水影响，以及防止进入粘捕器内而未被粘附的蚊虫逃逸，结合诱蝇笼结构原理，设计出了倒锥形出口的第二种孕蚊粘捕器，锥孔上底孔径为7cm，下底孔径为1cm。张令要对其进行深入研究，观察不同的植物浸液对白纹伊蚊诱卵效果以及不同生境中孕蚊粘捕器的诱蚊效果，并且首次在国内将孕蚊粘捕法应用于白纹伊蚊种群的监测［24］。

孕蚊粘捕法粘胶上的蚊种，借助普通放大镜(10x)即可鉴定，计数简便，在现场就可以判断所粘附蚊虫的种类，迅速快捷，省时省力，适合于当今突发性传染病现场控制工作的应急需要。

2.2 蚊幼虫监测方法

常用的蚊幼虫监测方法有勺捞计数法、集卵器法、诱蚊诱卵器法等。因为伊蚊幼虫多在水底活动，不易得到代表性样本，所以一般密度调查不计幼虫数，而检查孳生阳性率，常用的有房屋指数、容器指数、布雷图指数等。

2.2.1 勺捞计数法

选择各种蚊幼孳生的场所，用金属制的标准捞勺或水网，于幼虫孳生的水体，随机采集水样，如有各龄幼虫或蛹，用粗口吸管吸入广口瓶内，每5至10步取样一次，每一水体总数不得少于50勺［4］。记录日期、地点和生境，送实验室鉴定，计算幼虫密度。

勺捞法通过在自然水体中采集幼虫，可以采集到多种蚊幼虫，尤其是成蚊不食人血、数量少的蚊种，如华丽巨蚊、褐尾库蚊，这些蚊种的成蚊由于不吸人血，使用人工小时法很难采集到，在自然水体中捕捞幼虫反而相对容易。勺捞法是进行蚊类种群调查的必需方法，可以应用于国境口岸内蚊类种群调查，以获得更加全面真实的蚊类种群资料。

勺捞法也可用于幼虫密度的监测，但是有很大局限性，自然水体中幼虫的密度受很多因素的影响，如水温、水生植物、天敌等［25］，在监测过程中，某一方面因素的改变都可以使幼虫密度发生变化，致使监测出的幼虫密度意义不大。如在调查中发现，7月份时调查地点自然水体中蚊幼虫的密度并不大，但是同时期同地点的成蚊密度依然很高。

2.2.2 集卵器法

集卵器是一种提供蚊虫人工产卵环境以收集虫卵的技术，针对不同蚊种的集卵器设计有很大不同，库蚊诱卵器一般体积较大［26］，伊蚊诱卵器体积较小。在澳大利亚，几乎所有口岸都将使用集卵器作为一种标准监测方法，香港特别行政区食品环境卫生署自2000年使用伊蚊诱卵器监测登革热媒介密度，取得明显效果［27］。

常用的集卵器为塑料制黑色杯型容器或者黑色玻璃瓶，内盛放清水200－500mL，并放入木棍、树枝或者特制的叶状物，引诱成蚊产卵，定期观察收集幼虫［28］。各地的诱卵器虽然大致相同，但在具体的制作方面仍有很大差别。

集卵器法可以应用于国境口岸码头、机场、堆场等生境。集卵器可以进行监测，也可以用来控制蚊虫密度，倾倒阻断卵发育为成蚊，从而降低成蚊密度［29］。缺点为将捕获的幼虫进行鉴定时，需要花费1周以上时间和一定的实验室饲养条件。

2.2.3 诱蚊诱卵器法

林立丰等［30］研制了一种新型的具有诱卵和诱蚊效果的伊蚊诱蚊诱卵器，包括透明的瓶体和固定于瓶体上的黑色瓶盖，该瓶盖有3个向内突出上宽下窄的圆锥管，便于蚊虫进入瓶内，该瓶体的瓶底向上突出1个半椭圆形的凸起，用于放置白色滤纸供伊蚊产卵，并在实验室和现场证明有良好的诱蚊诱卵效果［31］。该法是利用伊蚊喜欢孳生在小型清澈容器中原理而设计。

诱蚊诱卵器使用方法，将诱蚊诱卵器内盛放20mL过夜自来水，或者自然环境中清澈的水，但是在夏季，地面温度较高，水易被蒸发干，可适量增加。内置粗糙的白色滤纸，将诱蚊诱卵器放置在绿化带、树下等生境处，在摆放诱蚊诱卵器的过程中，最好选择隐蔽可以固定的位置，防止倾倒，倾倒的诱蚊诱卵器尚未发现诱到白纹伊蚊。2个诱蚊诱卵器之间相距≥10m，连续放置，第7天收回。检查回收的诱蚊诱卵器并收集白纹伊蚊虫卵，计算诱蚊诱卵器阳性率和诱蚊诱卵器密度。

诱蚊诱卵器对白纹伊蚊的引诱力强，灵敏度高，数据较其他指数敏感，特别是在蚊虫密度较低的情况下［29］。在调查中，我们在云浮新港的码头上采用人工小时法没有捕获白纹伊蚊，但是采用诱蚊诱卵器法，可以诱捕到白纹伊蚊，证实诱蚊诱卵器灵敏性较高。诱蚊诱卵器优点为可直观鉴别捕获的蚊虫种类，具有快速、直观、可定量分析的特点，也可以将捕获蚊虫进行病毒检测;操作简便易行，群众易于接受和配合，可以不进居民房间而在周围环境布点，也可以在公园、单位等野外环境进行监测。该法特别适用于国境口岸码头、堆场、机场、绿化带，通过监测环境中伊蚊的有无，从而为是否采取控制措施提供依据。

诱蚊诱卵器的缺点为不同地区间伊蚊成蚊密度不可比，轮胎和其他自然孳生地可以干扰有蚊诱卵器的效果，环境卫生条件对诱蚊诱卵器监测结果影响较大，在环境卫生条件差的地区监测结果不能客观反映所在区域伊蚊实际密度［32］。我们在调查中白纹伊蚊自然容器平均容器指数为13.36%，同时期的诱蚊诱卵器阳性率为11.67%差异无统计学意义，说明在当地使用诱蚊诱卵器监测白纹伊蚊是可行的。但是诱卵指数变化与白纹伊蚊密度变化的高峰期并不一致，采用人工小时法所获的白纹伊蚊密度高峰期为5－8月份，诱卵指数高峰期则包括9月份，提示当蚊密度达到一定水平时，诱卵指数就难以反映实际蚊虫密度的变化，如果用诱蚊诱卵器监测白纹伊蚊幼虫季节消长仍需要提高其引诱能力。

关于伊蚊的诱蚊诱卵器研究设计的较多，但是以引诱按蚊为目的的诱蚊诱卵器却很少，因为人们对按蚊的产卵习性知之甚少。Caroline等［33］人对此进行了探索，根据反光物体的表面可以引诱成蚊停落研制出一种按蚊诱蚊诱卵器。该按蚊诱蚊诱卵器由一张如A4(297×210mm)纸型大小的醋酸纤维板组成，表面贴有一层胶水薄膜。将该诱蚊诱卵器固定在水面上，胶水面向上。下午放置，早上收取，将诱到的成蚊和卵送往实验室进行鉴定分类。我们在调查中，也发现洗手间内镜子上停落的成蚊多于周围的墙壁。

3 展望

目前蚊类监测方法种类较多，除上述外尚有一些其他监测方法，如黑箱法［34］，Pit shelters，Odourbaited entry trap［35］等。每种方法都有其优势和局限性，因此应根据监测蚊种和目的的不同选择适宜的方法。蚊类监测方法的发展依赖于两方面的发展，一方面依赖于对蚊类孳生习性、栖息习性和产卵习性的了解，只有在此基础上才能使监测方法更有针对性。目前对伊蚊的生态学特征研究较多，对库蚊和按蚊研究较少。另一方面将高科技元素融入蚊类的监测器械。研发高效生态系统诱蚊法［36］，研制廉价高效的引诱剂，模拟人体环境引诱蚊虫，使采集过程自动化、高效化、智能化，将是蚊类监测方法的发展方向。

［1］徐云庆，赵纯中，史蕾，等.国境口岸医学媒介生物研究进展［J］.中国国境卫生检疫杂志，2009，32(5)：379.

［2］瞿逢伊.我国蚊虫种质资源现状及其共享利用［J］.中国寄生虫学与寄生虫病志，2006，12(24)：s13－s16.

［3］王晓中，宋锋林，樊德海，等.蚊虫监测技术概述［J］.口岸卫生控制，2009，14(3)：46 －47.

［4］胡龙飞，闫清丽，符玉飞.医学媒介生物监测实用手册［M］.广州：华南理工大学出版社，2007：47.

［5］Christen M，Laura C，Douglas.Centers for Disease Control Light Traps for Monitoring Anopheles arabiensis Human Biting Rates in an Area with Low Vector Density and High Insecticide－Treated Bed Net Use［J］.The American Society of Tropical Medicine and Hygiene，2010，83(4)：838 －842.

［6］曾潇，李学云，陈剑雄.灭蚊磁场在口岸蚊类监测中的应用前景［J］.中国国境卫生检疫杂志，2009，32(2)：124－125.

［7］周连志，贝荣辉，洪松鑫，等.盐田口岸灭蚊磁场监测规程［J］.中国国境卫生检疫杂志，2009，32：55.

［8］蔡松武，何涌波，孙小康，等.灭蚊磁场诱捕蚊虫效果研究［J］.中华卫生杀虫药械，2005，11(3)：167 －168.

［9］Nanci Akemi Missawa，Ana Lúcia Maria Ribeiro，Giovana Belem Moreira Lima Maciel，et al.Comparison of capture methods for the diagnosis of adult anopheline populations from State of Mato Grosso，Brazil［J］.Revista da Sociedade Brasileira de Mdicina Tropical，2011，44(5)：555 －560.

［10］Hélène Hiwat，Rob Andriessen，Marjolein de Rijk.Carbon dioxide baited trap cathes do not correlate with human landing collections of Anopheles aquasalis in Suriname［J］.Mem Inst Oswaldo Cruz，2011，106(3)：360 －364.

［11］Musa Jawara，Taiwo S Awolola，Margaret Pinder，et al.Field Testing of Differrent Chenmical Combinations as Odour Baits for Trapping Wild Mosquitoes in The Gambia［J］.Plos ONE，2011，6(5)：1967.

［12］Nicodemus J Govella，Prosper P Chaki，Yvonne Geissbuhler，et al.A new tent trap for sampling exophagic and endophagic members of the Anopheles gambiae complex［J］.Malaria Journal，2009，8：157.

［13］Nicodem J Govella，Jason D Moore，Gerry F Killeen，et al.An Exposure－Free Tool for Monitoring Adult Malaria Mosquito Populations.Am.J［J］.Trop Med Hyg，2010，83(3)：596－600.

［14］Nicodem J Govella，Prosper P Chaki，John M Mpangile，et al.Monitoring mosquitoes in urban Dar es Salannm：Evaluation of resting boxes，window exit traps，CDC light traps，Ifakara tent traps and human landing catches［J］.Parasites and Vectors，2011，4：40.

［15］Rafael Maciel－ de－Freitas，Alvaro Eduardo Eiras，Ricardo Lourenco－de－Oliveira.Field evaluation of effectiveness of the BG－Sentinel，a new trap for capturing adult Aedes aegypti(Diptera：Culicidae)［J］.Mem Inst Oswaldo Cruz，Rio de Janeiro，2006，101(3)：321 －325.

［16］R Lacroix，H Delatte，T Hue，et al.Adaptation of the BG －Sentinel trap to capture male and female Aedes albopictus mosquitoes［J］.Medical and Veterinary Entomology，2009，23：160 －162.

［17］Wolfgang H Schmied，Willem Takken，Gerry F Killeen，et al.Evaluation of two counterflow traps for testing behaviour－mediating compounds for the malaria vector Anopheles gambiaes under semi－ field conditions in Tanzania［J］.Malaria Journal，2008，7：230.

［18］CPT Lee P McPhatter，Cara H Olsen，COL Mustapha Debboun.Comparison of the Attractiveness of Organic Infusions to the Standard CDC Gravid Mosquito Trap［J］.The Army Medical Department Jouranl，2009，7：92 －96.

［19］White S L，Ward M P，Budke C M.A comparison of gravid and under－house CO2－baited CDC light traps for mosquito species of public health importance in Houston，Texas［J］.J Med Entomol，2009，46(6)：1494 －1497.

［20］L Facchinelli，L Valerio，M Pombi，et al.Deveplopment of a novel sticky trap for container breeding mosquitoes and evaluation of its sampling properties to monitor urban populations of Aedes albopictus［J］.Medical and Veterinary Entomology，2007，21：183－195.

［21］Chadee D D，Ritchie S A.Eifficacy of sticky and standard ovitraps for Aedes aegypti in Trinidad，West Indies［J］.The society for Vector Ecology，2010，35(2)：395 －400.

［22］F Marini，B Caputo，M Pombi，et al.Study of Aedes albopictus dispersal in Rome，Italy，using sticky traps in mark－releaserecapture experiments［J］.Medical and Vererinary Entomology，2010，24：361 －368.

［23］张令要.白纹伊蚊种群监测与控制新技术研究［D］.武汉：华中农业科技大学，2008.

［24］Zhang L Y，Lei C L.Evaluation of sticky ovitraps for the surveillance of Aedes(Stegomyia)albopictus(Skuse)and the screen-ing of oviposition attractants from organic infusions［J］.Ann Trop Med Parasitol，2008，102(5)：399 －407.

［25］李朝品.医学昆虫学［M］.北京：人民军医出版社，2006：108.

［26］Rosangela Leda.Monitoring temporal fluctuations of Culex quinquefasciatus using oviposition traps containing attractant and larvicide in an urban environment in Recife，Brazil［J］.Mem Inst Oswaldo Cruz，2011，106(4)：451 －455.

［27］K Y Cheung，M Y Fok.Dengue vector surveillance and control in Hong Kong in 2008 and 2009［J］.Denjue Bulletion，2009，33：95－102.

［28］贺姬平，罗基古，杨美来，等.广州市新风港区白纹伊蚊幼虫季节消长调查［J］.检验检疫科学，2007，17(4)：40.

［29］周毅彬，赵彤言，冷培恩.伊蚊诱卵器在伊蚊监测中的应用［J］.中国媒介生物学及控制杂志，2008，19(5)：487 －488.

［30］林立丰，卢文成，蔡松武，等.新型登革热媒介监测诱蚊诱卵器的设计及效果研究［J］.中国媒介生物学及控制杂志，2005，16(1)：26 －28.

［31］林立丰，蔡松武，卢文成，等.诱蚊诱卵器与诱卵杯现场监测效果的比较研究［J］.中国媒介生物学及控制杂志，2006，17(6)：450 －453.

［32］蔡松武，刘文华，何紫电，等.环境卫生条件对诱蚊诱卵器监测影响研究［J］.中国媒介生物学及控制杂志，2009，20(5)：436－437.

［33］Caroline，Japhet，Dickson，et al.A simple and efficient tool for trapping gravid Anopheles at breeding sites ［J］.Parasites＆Vectors，2011，4：125.

［34］曹晖.黄浦世博园区蚊虫种群动态观察及不同监测方法的效果探讨［D］.上海：复旦大学，2010.

［35］Eliningaya J Kweka，Aneth M Mahande.Comparative evaluation of four mosquitoes sampling methods in rice irrigation schemes of lower Moshi，northern Tanzania［J］.Malaria Journal，2009，8：149.

［36］徐云庆，赵纯中，史蕾，等.国境口岸医学媒介生物研究进展［J］.中国国境卫生检疫杂志，2009，32(5)：379.