TGF-β1与肝纤维化及肝癌的关系

2012-04-18 10:46张宸豪吉林医药学院病原教研室吉林吉林132013
吉林医药学院学报 2012年5期
关键词:胞内激酶肝细胞

李 瑶,张宸豪,李 妍 (吉林医药学院病原教研室,吉林 吉林 132013)

转化生长因子 β1(TGF-β)是 Tucker在1984年发现的一种与多种肿瘤生长相关的多肽性细胞生长调节因子,其超家族成员至少包括5种异构体(TGF-β1、2、3、4、5),其中与肝脏损伤及疾病发生关系最密切的是TGF-β1。TGF-β1属于分泌性多肽因子,具有调节细胞生长、迁移、分化,胚胎和肿瘤的发生、发展,伤口愈合,骨形成及免疫调节等多种生物学活性[1]。正常肝细胞中不存在TGF-β1或含量极低,在各种因素致肝细胞损伤时,肝细胞变性、坏死和Kupffer细胞浸润,Kupffer细胞合成和分泌大量的 TGF-β1。同时,受损肝细胞、内皮细胞使血小板凝集而释放更多的TGF-β1。研究表明 TGF-β1在肝病理损伤过程中,是导致肝纤维化乃至肝癌的重要的因子之一。本文就TGF-β1在肝纤维化及肝癌中的作用进行综述。

1 TGF-β1结构及生物学功能

1.1 TGF-β1 结构

体内TGF-β1以无活性的前体形式存在,并以前蛋白形式被分泌,活化前的TGF-β1由391个氨基酸组成,包括TGF-β1同源二聚体、潜态相关性多肽(latency associated peptide,LAP)和潜态 TGF-β 结合蛋白(latent TGF-β binding portein,LTBps)。LAP-TGF-β形成复合物后再与LTBp结合成潜在复合物的形式存在。TGF-β1必须从潜在复合物中解离出来才能与受体结合,发挥生物学效应,开始多种生物学信号的传递[2]。成熟、有活性的 TGF-βl由2个各含112个氨基酸单体的同源二聚体多肽通过二硫键相连而成,形成25 kDa大小的成熟蛋白。

1.2 TGF-β1 作用机制

TGF-β1受体分为Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ型,I型受体与TGF-β1亲和力最强。TGFβRI、Ⅱ结构相似,属丝氨酸/苏氨酸(Ser/Thr)蛋白激酶受体[3]。TGFβRⅢ是蛋白多聚糖,相对分子量300 000,不含丝氨酸/苏氨酸激酶结构区域,不直接参与 TGF-β1信号传递。TGF-β1的信号传递依赖Ⅰ、Ⅱ型受体共同完成。TGF-β1先与TGFβRⅡ结合,TGFβRⅡ胞内激酶磷酸化 TGFβRⅠ,共同形成异源四聚体,进而活化。因此,Ⅰ型受体本身与 TGF-β1不结合,负责传递 TGF-β1信息,TGFβRⅡ是 TGF-β1 信号通路中最为关键的环节[4]。

Smads蛋白是目前所知的最重要的TGFβ1受体胞内激酶的底物[5]。分为三类,第一类受体调节性Smads,是TGFβRⅠ胞内激酶的特异性底物,与信号通路的特异性有关,介导TGF-β1和活动素的信号;第二类共同介质性Smads,是肿瘤抑制基因DPC4的产物,发挥 TGF-β1作为细胞增殖抑制因子的作用[6];第三类抑制性 Smads,抑制其他两类 Smads蛋白。

当TGFβRⅡ胞内激酶磷酸化 TGFβRⅠ后,活化的TGF-βⅠ型受体通过 Smads锚着蛋白等募集Smads或直接结合丝裂原激活的蛋白激酶(mitogenactivated protein kinases,MAPK)等信号分子,并使之磷酸化,使信号在胞内逐级转递直至转移至细胞核内,调控目的基因表达。

1.3 TGF-β1的生物学功能

TGF-β1突出作用是促进胶原与基质的形成。TGF-β1对间叶组织来源的细胞具有促进细胞生长的作用,对上皮组织、神经外胚层来源的细胞则具有抑制其生长的作用[7]。TGF-β1能通过抑制肝细胞DNA合成而诱导肝细胞凋亡,通过抑制间质细胞分泌肝细胞生长因子(HGF),间接抑制肝细胞分裂和增殖。Gong等[8]发现,在 G1 期的早期,TGF-β1 可诱导人结肠癌FET细胞中p21蛋白表达增加,从而抑制DNA合成及Cyclin A-CDK2和Cyclin E-CDK2复合体的活性,抑制细胞增殖,阻止肿瘤形成和发展。Zhang Shaoling和 Sophie Hüe发现在肿瘤疾病中TGF-β1高表达导致NKG2D-MICA/B信号系统异常,使NKG2D依赖性细胞毒素受到抑制,有助于宿主对寄生虫的免疫逃避[9]。

2 TGF-β1与肝纤维化及肝癌

2.1 GF-β1 与肝纤维化

肝纤化是慢性肝病共有的病理改变,是肝硬化的必经阶段。TGF-β1在肝纤维化形成中的作用主要表现在:1)促进ECM的沉积抑制ECM的降解[10];2)抑制肝细胞再生;3)激活HSC转化为肌成纤维细胞,诱导纤维母细胞增殖[11];4)调节各种细胞连接蛋白受体的表达及其与ECM的结合;5)促进纤维母细胞、肌成纤维细胞、肝细胞合成分泌ECM,促进肌成纤维细胞和肝细胞自分泌大量的TGF-β1构成局部正反馈循环。

De Bleser[12]在大鼠正常肝脏和纤维化肝脏中分离出实质细胞及窦内皮细胞、Kupffer细胞和星状细胞,并检测各种细胞对TGF-β1的表达情况。结果发现,来自正常肝脏的实质细胞和内皮细胞不表达TGF-β1,Kupffer细胞对 TGF-β1 的表达是 HSC 的 9倍。而在纤维化的肝脏,窦内皮细胞和HSC对TGF-β1的表达明显升高,肝细胞亦开始表达TGF-β1。说明慢性炎症或肝纤维化时,间质细胞对TGF-β1表达增加,且肝实质细胞对 TGF-β1的表达被启动[13]。Tsushima H等发现慢性肝病患者、血吸虫病肝纤维化患者及肝硬化患者血清TGF-β1水平均明显高于正常,且与肝组织纤维化病理分期呈正相关,并与肝组织纤维化发展的阶段性、肝纤维化程度以及肝细胞受损的严重程度相一致。TGF-β1又可与肝细胞膜上相关受体结合,促进肝细胞凋亡,进而促进了肝纤维化的进程[14]。另外,多数ECM由纤溶酶分解,但纤溶酶也可激活无活性TGF-β1。TGF-β1调节窦内皮细胞合成分泌纤溶酶原激活因子抑制剂,正常生理状态下,各因子间相互协调,处于相对平衡,保持ECM分解与降解的平衡。但在肝纤维化时,间质细胞合成分泌TGF-β1增加,促使纤溶酶原激活因子抑制剂合成增加,导致血浆纤溶酶含量下降,从而抑制了ECM的降解。现已有资料可证实,在肝脏损伤的急性期ECM合成增加,无肝纤维化形成,此阶段合成与降解两者之间处于平衡状态。当病程进入慢性化阶段,降解速度减慢ECM在肝内大量沉积,形成肝纤维化。TGF-β1还可通过抑制HSC合成胶原蛋白酶,促进HSC对基质金属蛋白酶抑制剂(TIMP)的表达,从而抑制间质金属蛋白酶(MMP)的活性,最终抑制ECM的降解。由此打破了ECM合成与降解的平衡,使ECM沉积增多,加速肝纤维化的发展[15]。

2.2 TGF-β1 与肝细胞癌

在肝癌的发生及发展过程中,TGF-β1是肝癌发生的重要细胞因子。TGF-β1本是控制肝细胞生长和增殖的重要细胞因子,但现在发现TGF-β1在肝细胞癌患者中呈高表达,且与肿瘤分化程度明显相关,TGF-β1的表达水平随肿瘤细胞分化程度的降低而增强,提示 TGF-β1可作为肝细胞癌早期诊断的指标[16]。肝组织中 TGF-β1 mRNA表达水平在慢性肝病组、肝硬变组和肝癌组均显著高于正常对照组。TGF-β1在肝癌的发生、发展及转移过程中起着双向调节作用。肿瘤早期,TGF-β1通过抑制cmy-c基因表达及促进P53蛋白去磷酸化等机制,阻滞细胞周期从G1期进入到S期并诱导细胞凋亡,进而抑制肿瘤细胞的生长[17]。而在肿瘤中、晚期,TGF-β1 却起到了促进肿瘤生长和转移的作用,TGF-β1在肝细胞癌(HCC)中过表达却不能抑制HCC细胞增殖,可能与其受体缺陷有关。

3 展望

TGF-β1与肝细胞损伤、肝纤维化、肝硬化及肝肿瘤的发生都密切相关。同时,TGF-β1表达水平也与其他疾病密切相关,如妊娠期高血压疾病、肾小球疾病、肾脏疤痕的形成、慢性肾脏疾病、肾纤维化肾小球硬化、肾间质纤维化。TGF-β1基因多态性还与椎间盘疾病相关。在慢性病毒性肝炎、葡萄胎、先兆子痫等滋养层细胞相关妊娠疾病、急性心肌梗死病、中枢神经系统疾病、垂体腺瘤纤维化、涎腺疾病和纤维化疾病中TGF-β1也都发挥重要的调节作用。因此,研究TGF-β1在肝损伤中的作用对疾病的治疗、预后有着更重要的意义。

[1]Sugawara K,Kizaki K,Herath C B,et al.Transforming growth factor beta family expression at the bovine feto-maternal interface[J].Reprod Biol Endocrinol,2010,8(1):120-131.

[2]Lee W R,Park J H,Kim K H,et al.Protective effects of melittin on transforming growth factor-β1 injury to hepatocytes via anti-apoptotic mechanism[J].Toxicol Appl Pharmacol,2011,256(2):209-215.

[3]Kapoun A M,Gaspar N J,Wang Y,et al.Transforming growth factor-beta receptor type 1(TGFbetaRI)kinase activity but not p38 activation is required for TGFbetaRI-induced myofibroblast differentiation and profibrotic gene expression[J].Mol Pharmacol,2006,70(2):518-531.

[4]Galat A.Common structural traits for cystine knot domain of the TGFβ superfamily ofproteinsand three-fingered ectodomain of their cellular receptors[J].Cell Mol Life Sci,2011,68(20):3437-3451.

[5]Lan H Y,Chung A C.Transforming growth factor-β and Smads[J].Contrib Nephrol,2011,170:75-82.

[6]Do T V,Kubba L A,Du H,et al.Transforming growth factor-beta1,transforming growth factor-beta2,and transforming growth factor-beta3 enhance ovarian cancer metastatic potential by inducing a Smad3-dependent epithelial-to-mesenchymal transition[J].Mol Cancer Res,2008,6(5):695-705.

[7]Pan X,Dai Y,Li X,et al.Inhibition of arsenic-induced rat liver injury by grape seed exact through suppression of NADPH oxidase and TGF-β/Smad activation[J].Toxicol Appl Pharmacol,2011,254(3):323-331.

[8]Gong J,Ammanamanchi S,Ko T C,et al.Transforming growth factor beta 1 increases the stability of p21/WAF1/CIP1 protein and inhibits CDK2 kinase activity in human colon carcinoma FET cells[J].Cancer Res,2003,63(12):3340-3346.

[9]Zhang Shaoling,Hüe S,Sène D,et al.Expression of major histocompatibility complex class I chain-related molecule A,NKG2D,and transforming growth factor-beta in the liver of humans with alveolar echinococcosis:new actors in the tolerance to parasites?[J].J Infect Dis,2008,197(9):1341-1349.

[10]Li J H,Huang X R,Zhu H J,et al.Role of TGF-beta signaling in extracellular matrix production under high glucose conditions[J].Kidney In,2003,63(6):2010-2019.

[11]Kawelke N,Vasel M,Sens C,et al.Fibronectin protects from excessive liver fibrosis by modulating the availability of and responsiveness of stellate cells to active TGF-β[J].PLoS One,2011,6(11):e28181.

[12]De Bleser P J,Niki T,Rogies V.Transforming growth factor beta gene expression in normal and fibrotic rat liver[J].J Hepatol,1997,26(4):886-893.

[13]Yang J,Zheng J,Wu L,et al.NDRG2 Ameliorates Hepatic Fibrosis by Inhibiting the TGF-β1/Smad Pathway and Altering the MMP2/TIMP2 Ratio in Rats[J].PLoS One,2011,6(11):e27710.

[14]Bourd-Boittin K,Bonnier D,Leyme A,et al.Protease profiling of liver fibrosis reveals the ADAM metallopeptidase with thrombospondin type 1 motif,1 as a central activator of transforming growth factor beta[J].Hepatology,2011,54(6):2173-2184.

[15]Verrecchia F,Mauviel A.Transforming growth factor-beta and fibrosis[J].World J Gastroenterol,2007,13(22):3056-3062.

[16]Ozaki I,Hamajima H,Matsuhashi S,et al.Regulation of TGF-β1-induced pro-apoptotic signaling by growth factor receptors and extracellular matrix receptor integrins in the liver[J].Front Physiol,2011,2:78.

[17]Morris S M,Baek J Y,Koszarek A,et al.TGF-β signaling promotes hepatocarcinogenesis induced by p53 loss[J].Hepatology,2011,55(1):121-131.

猜你喜欢
胞内激酶肝细胞
外泌体miRNA在肝细胞癌中的研究进展
蚓激酶对UUO大鼠肾组织NOX4、FAK、Src的影响
蚓激酶的药理作用研究进展
HIV/AIDS患者继发鸟-胞内分枝杆菌复合群感染诊疗进展
尿感方清除受感染膀胱上皮细胞胞内尿道致病性大肠杆菌的作用
姬松茸胞内多糖和胞外多糖的抗氧化活性研究
肝细胞程序性坏死的研究进展
黏着斑激酶和踝蛋白在黏着斑合成代谢中的作用
肝细胞癌诊断中CT灌注成像的应用探析
SIAh2与Sprouty2在肝细胞癌中的表达及临床意义