孙婧华,刘立峰
(1.大连医科大学 附属第二医院 肿瘤内科, 辽宁 大连 116027;2.大连医科大学 附属第一医院 妇产科,辽宁 大连 116011)
紫外照射、生殖毒素能引起多种DNA损伤。DNA损伤后在复制期引起复制叉不稳定从而导致细胞死亡。复制后修复(postreplication repair, PRR)能不去除损伤模板而恢复DNA复制。该种修复在多种物种中可见,主要包括以下3个过程:损伤DNA合成 (TLS)、重组和模板转换[1]。
芽殖酵母(Saccharomyces cerevisiae)中,Rad6 epistasis家族参与复制后修复过程。其中编码泛素结合酶E2和泛素连接酶E3的Rad6和18在PRR中起关键作用[2]。Stelter[3]指出Rad6/Rad18决定复制后修复PCNA泛素化。目前,人的细胞中已鉴定出一个Rad18同源物(hRad18)[4]和两个Rad6同源物(HHR6A和HHR6B)[5]。hRad18和mRad18在PRR通过PCNA单或多泛素化而维持基因信息稳定[4,6]。小鼠中,mRAD18在胚胎干细胞(mouse embryonic stem cells, mESCs)和成年小鼠睾丸粗线期精母细胞中高表达[6-7],定位于XY体[7-8]。Roest等[9]报道mRad6B敲除雄小鼠在减数分裂后染色体重塑过程受损而不育,认为mRad18对精子发生起重要作用。本文利用Rad18-/-小鼠模型研究Rad18缺失对雄小鼠生殖细胞的影响。
动物:C57BL/6J 野生小鼠(wild-type,WT)和Rad18-/-雄小鼠,来源于日本熊本大学动物实验中心。1、6周龄WT雄小鼠各3只, 2、6、12月龄的WT和Rad18-/-雄小鼠各5只。
抗体和试剂:生殖细胞特异标记物TRA98一抗购自Bioacademia公司;二抗VECTASTAIN试剂盒购自Vector Laboratories公司。Rad18一抗来源于日本熊本大学组织制御实验室;二抗购自Jackson ImmunoResearch公司。TSA plus 生物素体系信号放大NEL700购自Perkin-Elmer公司,DAB显色检测购自Roche公司。
1.2.1 生精小管及附睾中生殖细胞的检测:取2、6、12月龄WT和Rad18-/-雄小鼠各5只,取睾丸和附睾,于Bouin’s 固定液室温固定4 h,经梯度酒精脱水,二甲苯透明,浸蜡,石蜡包埋。切片:厚度为4 μm。采用常用步骤行TRA98免疫组织化学检测。TRA98阳性(棕色)为精原细胞,精母细胞,圆形精细胞,阴性(蓝色)为延长的精细胞和体细胞。
1.2.2 退化睾丸生精小管分类:根据退化管中TRA98标记的不同种类生殖细胞存在情况,将生精小管分为5类。0: 仅存在Sertoli细胞或同时存在拉长的精细胞;I: 存在Sertoli细胞和精细胞(包括圆形和拉长),II: 存在Sertoli细胞、精母细胞和精细胞;III: 存在Sertoli细胞、精原细胞和精母细胞;IV:正常结构。分别计数分布情况并制图。
1.2.3 生殖细胞中Rad18表达的检测:取1、6周龄各3只WT雄小鼠睾丸,于4%多聚甲醛中4 ℃固定过夜。甲基丙烯酸甲酯包埋,切片:厚度为5 μm。采用常用步骤行Rad18免疫组织化学检测。
1.2.4 原位杂交:组织切片同Rad18检测切片,利用mRad18 cDNA 的OFR区上的471碱基cDNA片段制成Rad18反义和正义探针。原位杂交采用Tadokoro的方法[10]。
Rad18-/-小鼠睾丸组织切片HE染色发现Rad18-/-雄小鼠随年龄增加,睾丸组织中生精小管退化。应用生殖细胞特异标记物TRA98检测退化生精小管中生殖细胞表达,结果见图1。与WT小鼠睾丸类似,12月龄Rad18-/-雄小鼠睾丸表面正常生精小管中含有精子生成过程中的生殖系细胞:精原细胞、精母细胞、圆形和拉长的精细胞以及精子。相反,同一睾丸的退化小管中,TRA98阳性生殖系细胞分布异常。
2、6、12月龄WT小鼠睾丸组织中正常生精小管(第IV类)比例无明显变化(图2A),分别为97.00%、97.54%和96.82%;但2、6、12月龄Rad18-/-小鼠睾丸组织中正常生精小管比例明显下降(图2B),分别为99.42%、83.79%和58.54%,两组相比差异有显著性意义(P<0.05);同时,Rad18-/-小鼠睾丸组织中第0、I 和II类异常生精小管比例均随着年龄增长而逐渐增高,2、6、12月龄时,这3类异常结构比例总和为:0.58%、15.08%和39.50%(图2B),而2、6、12月龄WT小鼠中总和分别为0.70%、1.99%和2.76%(图2A),这3类异常结构的共同特点即缺乏含有精原干细胞的精原细胞,12月龄Rad18-/-雄小鼠39.50%的生精小管中缺失早期精原细胞,与WT小鼠的2.76%比较差异有显著性意义(P<0.05);WT和Rad18-/-小鼠中第III类异常小管比例均无显著变化(图2)。
虽然12月龄Rad18-/-雄小鼠39.5%的生精小管中缺失早期精原细胞,但在附睾中的精子形态与WT相比未见异常,未见TRA98阳性未完成分化的生殖细胞提前释放,见图3。图1C-F中可见形态正常的Sertoli细胞。
图1 12月龄Rad18-/-小鼠睾丸中生殖细胞特异性标记TRA98的表达 ×400Fig 1 Expression of germ line cell-specific marker TRA98 in 12-month-old Rad18-/- testes ×400A:12月龄WT小鼠生精小管;B:12月龄Rad18-/小鼠正常生精小管;C-F:12月龄Rad18-/-小鼠退化生精小管
图2 根据生殖细胞存在情况小鼠生精小管分类及分布Fig 2 Distribution of the seminiferous tubules showing each category of germline cellsA:WT小鼠 B:Rad18-/-小鼠
图3 Rad18-/-小鼠附睾中未见TRA98阳性生殖细胞 ×400Fig 3 The spermatozoa in the epididymis of 12-month-old Rad18-/- mice displayed normal morphology ×400 A:WT小鼠 B:Rad18-/-小鼠
在6周龄WT雄小鼠生精小管中,Rad18蛋白在精母细胞中表达,尤其定位在XY体上。Rad18蛋白在精原细胞细胞核中表达。原位杂交显示Rad18 mRNA在精原细胞和精母细胞都表达。1周龄WT小鼠精原细胞处于未分化精原细胞增殖激活状态,免疫组化结果显示1周龄WT小鼠睾丸中的精原细胞核中表达Rad18蛋白,见图4。
多项研究表明,RAD18不但参与了PRR[11],而且参与了DNA损伤诱导基因的转录调节[12]、DNA损伤信号的传导[13],也参与了DNA单链断裂和断裂的修复[14-17]。Miyase等[18]报道Rad18-/-小鼠细胞中有明显的复制后修复缺陷。Rad18敲除的mESCs对多种遗传毒素试剂敏感,异常重组频率提高,说明RAD18对维持细胞基因组稳定起重要的作用[7]。作者已经建立了Rad18-/-小鼠模型,该小鼠出生、成长正常,但随年龄增加雄小鼠生育力下降,睾丸重量减轻,生精小管退化、生殖细胞丢失,并且研究表明这种退化不是因激素变化而引起。
图4 Rad18蛋白和mRNA在WT小鼠睾丸中的表达Fig 4 The expression of Rad18 in WT mice
本研究应用免疫组织化学方法检测生殖细胞特异标记物TRA98在2、6、12月龄Rad18-/-雄小鼠生精小管生殖细胞中的表达和分布,发现伴随着正常生精小管比例的下降,缺乏精原细胞的退化小管比例增加,12月龄时已达39.50%,与同龄WT小鼠2.76%相比差异有显著意义,与此同时,退化小管中仍可见处于不同分化阶段的生殖细胞:精母细胞、圆形和拉长的精细胞以及精子,并且Sertoli细胞形态正常,附睾中未见异常生殖细胞,提示已分化的生殖细胞可完成精子形成,精原细胞的耗尽导致Rad18-/-雄小鼠生育力下降。
精原细胞中存在精原干细胞,精原干细胞整倍性维持对遗传信息传递起关键作用。研究已表明,多种DNA损伤修复机制参与了干细胞的维持,包括非同源末端连接(NHEJ)和核苷酸切除修复(NER)[19-20]。DNA连接酶IV 介导的NHEJ 完成DNA双链断裂修复。随年龄增加,DNA连接酶IV次形态突变(Lig4Y288C)引起小鼠造血干细胞和骨髓细胞逐渐丢失,严重影响了组织培养和移植中干细胞功能[23]。运动失调性毛细血管扩张症(Atm)突变基因通过激活DNA修复中细胞周期关键蛋白维持基因组稳定。Atm突变小鼠24周出现因造血干细胞缺陷而导致的骨髓缺陷[21]。Takubo等[22]发现Atm-null小鼠睾丸中逐渐失去减数分裂前生殖细胞。因此,DNA修复机制对于维持干细胞整倍性和遗传信息传递起关键作用。
尽管Rad18蛋白在成年睾丸精母细胞中高表达,但是本研究检测到Rad18转录水平在精原细胞而非精母细胞高表达。此外,1周龄WT小鼠睾丸中未分化精原细胞表达Rad18蛋白,说明Rad18在增殖的未分化精原细胞具有活性。在Rad18-/-小鼠睾丸中,由于Rad18功能丧失,DNA损伤加剧,随着年龄增加内源性DNA损伤或基因组重排可能加速精原细胞增殖,导致长期细胞周期阻滞,精原干细胞耗尽。
本研究结果提示,Rad18参与维持DNA复制中基因组DNA整倍性,对精原干细胞维持起重要作用。
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