SDF-1/RUNX1融合蛋白介导的间充质干细胞对造血干细胞增殖和趋化作用的研究*

2012-01-03 05:27罗红春张红宾汪嘉莉
重庆医学 2012年30期
关键词:血源性趋化归巢

罗红春,张红宾,秦 波,汪嘉莉,刘 倩

(重庆医科大学附属第一医院:1.感染科;2.血液科 400016;3.重庆市渝北区人民医院消化内科 401120)

骨髓移植是治疗血液病、实体瘤、免疫系统疾病、急性放射病等疾病的有效方法之一,但移植后的造血重建问题一直是临床工作的难点。研究发现基质细胞衍生因子-1(SDF-1)/CXCR4生物轴对造血干细胞(hematopoietic stem cells,HSCs)的归巢和植入起到了重要的作用。另外,RUNX1基因作为一种造血细胞分化早期的关键调控因子,对HSCs自我更新与分化间的平衡起着调节作用[1-2]。目前,本课题组已经成功构建pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP腺病毒载体。在本实验中,作者将转染pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP腺病毒载体入间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs),并检测SDF-1/RUNX1融合蛋白介导的MSCs对HSCs增殖和趋化能力的影响。

1 材料与方法

1.1材料 人脐带标本和脐带血标本,由本院妇产科志愿者产妇提供(均系采自健康男性新生儿胎盘的脐血,其孕母排除病毒性肝炎、艾滋病、梅毒等感染)。

1.2试剂 采用Mesencult培养液(Stem Cell公司);DMED培养基(上海佳和科技生物有限公司);Ficoll淋巴细胞分离液(天津生物技术研究所);胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司);CD29、CD13、CD44、CD34、CD31抗体(BD公司);RUNX1 ELISA试剂盒(北京华夏远洋科技有限公司);SDF-1 ELISA试剂盒(厦门慧嘉生物科技有限公司)。

1.3脐带源性MSCs的体外培养及生物学鉴定 标本于采集后6 h内,进行间充质干细胞的分离:将脐带剪碎成约1 mm3的小块后用D-Hanks液冲洗,先后经0.1%胶原酶Ⅱ、0.25%胰酶各消化30 min,收集悬浮细胞,接种于含10%胎牛血清、100 U/mL青霉素、100 μg/mL链霉素的Mesencult′培养液,置于37 ℃、5 % CO2、饱和湿度培养箱培养,4~5 d后全量换液,弃去非贴壁细胞,此后每3~4 d半量换液,观察细胞至80%融合时,用0.25%胰酶和1 mmol/L EDTA消化,按1∶3传代。贴壁细胞常规消化后,以CD29、CD13、CD44、CD34、CD31抗体孵育。流式细胞术测定细胞纯度。

1.4人脐血源性CD34+干细胞的体外培养及生物学鉴定 无菌条件下取足月妊娠、正常分娩的新鲜脐血(内加抗凝剂),标本于采集后6 h内分离。按1∶1体积比加入D-Hanks液稀释,以Ficoll淋巴细胞分离液密度梯度离心,1 500 r/min离心15 min。吸取血浆层和分离液层之间的白色云雾状有核细胞层,以低糖DMED培养液洗涤备用。应用MACS免疫磁珠激活分选系统分离CD34+细胞,过分选柱2次以提高纯度,以流式细胞术测定CD34+细胞纯度。

1.5重组腺病毒pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP对人脐带源性MSCs转染效率的测定 分别用感染指数(moi)为25、50、100、200的重组腺病毒感染NIH3T3细胞。NIH3T3细胞接种于24孔板,密度为2×106个/毫升,以DMED培养液作为阴性对照。1 h后吸弃病毒液,加入培养液。此后每12 h在荧光显微镜下观察细胞GFP的表达情况。为后续试验选择最佳的moi。MSCs培养至第3代时,调整密度为2×105个/毫升,加入24孔板中,培养24 h后,选择最佳moi的重组腺病毒感染入MSCs。荧光显微镜下观察感染后1、3、7、14 d的感染效率。ELISA方法检测重组腺病毒pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP感染MSCs后 SDF-1和RUNX1的表达。

1.6检测含重组腺病毒pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP的人脐带源性MSCs对人脐血源性CD34+干细胞的扩增作用 调整CD34+干细胞的密度为2×104个/毫升。制备MSCs细胞滋养层;CD34+细胞种植于有滋养层的 24孔板中培养,隔日半量换液1次。按照实验目的分3组,A1组:CD34+干细胞;B1组:CD34+干细胞和MSCs;C1组:CD34+干细胞和基因修饰后的MSCs。每组均设3个复孔。培养第1、3、7、14天检测CD34+干细胞的扩增倍数。

1.8统计学处理 运用SPSS17.0软件进行数据处理,组间比较采用单因素方差分析。

2 结 果

2.1人脐带源性MSCs的培养及鉴定 人脐带源性MSCs长势良好,呈辐射状或涡旋状排列。流式细胞仪检测培养第3代的MSCs的表面标记物CD29的阳性率为99.83%,CD13的阳性率为98.12%,CD44的阳性率为98.89%;不表达CD34、CD31。

2.2人脐血源性CD34+干细胞的纯化及鉴定 经2次过分选柱,每个标本收集CD34+细胞数范围为(2.6~5)×106,0.4%台盼蓝染色计数活细胞率均大于96%。流式细胞仪检测2次分选后CD34+细胞纯度在98.30%以上。

2.3重组腺病毒pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP感染人脐带源性MSCs的效率 当重组腺病毒感染的moi为50 pfu/细胞时,转染效率最高,可达90%以上。以moi为50 pfu/细胞的重组腺病毒感染MSCs后1、3、7、14 d的转染效率分别为(28.42±8.15)%、(80.58±9.05)%、(68.77±6.27)%、(21.34±7.29)%,见封2图1。ELISA方法检测出重组腺病毒感染MSCs后3 d SDF-1和RUNX1的表达最高。感染后7 d,SDF-1和RUNX1的表达仍然较高(表1)。感染后14 d时,还有少量SDF-1和RUNX1表达。

表1 重组腺病毒感染人脐带源性MSCs后SDF-1和RUNX1的表达

2.4感染重组腺病毒的人脐带源性MSCs对人脐血源性CD34+干细胞的扩增作用 按照1.6中的分组,培养第1天,3组中CD34+干细胞的扩增倍数比较差异无统计学意义(P>0.05)。培养第3、7、14天,B1组、C1组较A1组CD34+干细胞显著扩增(P<0.05)。培养第7、14天,B1组中CD34+干细胞的扩增倍数显著高于C1组(P<0.05),见表2。

表2 感染重组腺病毒的人脐带源性MSCs对人脐血源性CD34+干细胞的扩增倍数

2.5感染重组腺病毒的人脐带源性MSCs对人脐血源性CD34+干细胞的趋化作用 按照1.7中的分组,共培养24 h后,Transwell检测CD34+干细胞的迁移指数分别是:A2组(302±8),B2组(435±20),C2组(612±18)。B2和C2组的迁移指数明显高于A2组(P<0.05),并且C2组的迁移指数明显高于B2组,差异有统计学意义(P<0.05)。

3 讨 论

干细胞移植后的造血重建过程是一个多阶段、多因素的过程,其中造血微环境(Niche)的修复,影响着归巢造血干细胞HSCs的自我更新、增殖和分化,对于机体重建造血功能具有重要意义[3-6]。但移植后HSCs归巢率低且自我增殖能力有限,成为制约骨髓重建的瓶颈问题。

MSCs作为造血微环境主要细胞成分的前体细胞,在造血调控中发挥重要作用。MSCs分化产生的多种骨髓基质细胞,表达多种基质分子,通过细胞-细胞间接触和分泌多种促造血细胞因子支持造血,MSCs还诱导归巢受体、分泌基质细胞衍生因子促使HSCs归巢到骨髓[7-8],对HSCs保持干细胞特性和造血干细胞归巢具有重要的支持和趋化作用[9-10]。有报道MSCs与HSCs联合移植可促进HSCs的植活率,缩短无髓期,减少死亡率。因此,有必要在移植中充分考虑MSCs的因素[11-12]。

研究发现SDF-1/CXCR4生物轴对HSCs的归巢和植入起到了重要的调节作用[12]。内皮细胞、成骨细胞和其他基质细胞均表达SDF-1,而HSCs表达CXCR4。内皮细胞表达的SDF-1通过E-和P-选择素介导HSCs的跨内皮迁移。作者在前期试验中发现,体内刺激因子较多,可导致HSCs过度分化,使HSCs自我更新能力下降。所以,应更多地关注干细胞干性的保持问题。RUNX1基因作为一种造血细胞分化早期的关键调控因子,即为一个较佳的选择。

作者成功分离培养出人脐带源性MSCs和人脐血源性CD34+干细胞,且具有较高的纯度。利用前期构建的pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP腺病毒转染入脐带源性MSCs,经检测转染后第3天,转染效率可高达(80.58±9.05)%。第7天时,转染效率仍可达(68.77±6.27)%,虽有所下降,二者比较差异无统计学意义(P>0.05)。同样,作者用ELISA检测出重组腺病毒感染人脐带源性MSCs后SDF-1和RUNX1的表达也是第3天最高,第7天时仍有较高表达。

在CD34+干细胞的扩增试验中,感染了重组腺病毒pAD-SDF-1-(GlySer)3-RUNX1-IRES-GFP的MSCs可促进CD34+干细胞的增殖,但其扩增程度远不及未感染重组腺病毒的MSCs。由此说明,该重组腺病毒既有利于扩增CD34+干细胞,且又不至于让CD34+干细胞过度的增殖分化。在Transwell趋化试验中,感染了重组腺病毒的MSCs和未感染重组腺病毒的MSCs均可显著促进CD34+干细胞的迁移,且前者的趋化作用高于后者(P<0.05)。由此说明,该重组腺病毒转染MSCs后,有明显的诱导CD34+干细胞归巢的作用。

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