转录抑制因子ZHX2功能片段原核表达载体的构建及表达

2011-11-21 01:12赵红蕾孙月芳田晓丰吉林大学畜牧兽医学院吉林长春30062
中国老年学杂志 2011年16期
关键词:原核克隆质粒

赵红蕾 曹 宏 孙月芳 田晓丰 (吉林大学畜牧兽医学院,吉林 长春 30062)

转录抑制因子ZHX2功能片段原核表达载体的构建及表达

赵红蕾 曹 宏1孙月芳1田晓丰1(吉林大学畜牧兽医学院,吉林 长春 130062)

目的 从人正常组织中克隆人转录抑制因子ZHX2功能片段,构建其原核表达载体,并在大肠杆菌中进行表达,纯化获得蛋白,用于下一步探讨ZHX2基因的功能。方法 根据GenBank中ZHX2功能片段已知序列设计引物,从正常人组织中通过RT-PCR方法扩增ZHX2基因功能片段,克隆到原核表达载体pET28a(+)中,转化Ecoli.BL21(DE3),IPTG诱导表达,采用镍柱亲和层析法纯化目的蛋白。结果 测序结果显示克隆的ZHX2基因序列正确,SDS-PAGE鉴定表达产物分子量正确,Western-blot鉴定结果显示表达产物为人ZHX2功能片段特异性蛋白。结论 本研究成功构建了含有ZHX2功能片段的原核融合表达载体,并实现了ZHX2功能片段的表达,获得了纯化的蛋白,为进一步研究ZHX2基因的功能奠定了基础。

ZHX2基因;转录抑制因子;原核表达

ZHX(zinc-fingers and homeoboxes,ZHX)蛋白家族包括ZHX1、ZHX2和ZHX3,在人体组织中广泛存在,在组织中作为转录抑制因子发挥重要的病理生理功能〔1,2〕。ZHX2是ZHX蛋白家族成员之一,是2003年新克隆的转录抑制因子,位于染色体8q24.13,其编码的蛋白含837个氨基酸残基,定位于细胞核内〔3〕。近年来的研究结果显示,ZHX2参与正常肝细胞中肝癌标志物的转录抑制,提示ZHX2的表达缺失可能是肝细胞癌发生的关键因素〔4〕。本研究设计构建人ZHX2基因功能片段的原核表达载体,为进一步确定ZHX2蛋白发挥有效生物学作用的最小功能片段奠定基础,同时也为进一步研究ZHX2基因的功能提供实验材料。

1 材料与方法

1.1 菌株和质粒 大肠杆菌DH5α和BL21(DE3)pLysS由本室保存,pMD-18T载体购自Takara公司,原核表达载体pET28a(+)由本室保存。

1.2 试剂 总RNA提取试剂盒Trizol reagent和逆转录试剂盒Thermoscript TM RT-PCR SYSTEM为GIBCo BRL公司产品;T4 DNA ligase为Promega公司产品;DL 2000 DNA Marker、质粒小量抽提试剂盒、DNA凝胶回收试剂盒、X-gal、IPTG均购自TaKaRa公司;低分子量蛋白 Marker(97.4、66.2、43.0、31.0、20.1、14.4 kU)购自上海生物化学研究所,窄谱预染蛋白质Marker(71、50、35、25、16、8 和 2 kU)购自赛百盛基因技术有限公司;ZHX2单克隆抗体购自 Santa Cruz Biotechnology公司;HRP兔抗小鼠IgG购自北京中山金桥生物技术有限公司;其他试剂均为国产或进口分析纯。

1.3 引物设计 根据GenBank中人ZHX2 cDNA序列(gi:63079684)使用Prim 5软件在ZHX2基因的上下游设计F1和R1两条引物,上游引物F1:5'GAA TTC GTG ACA GAC ACA GCT GAG ATC C 3';下游引物 R1:5'CTC GAG GCC CCT TTG ACA CCG ATA T 3',分别含EcoR I和Sal I酶切位点,理论扩增目的片段为837 bp,引物由宝生物工程(大连)有限公司合成。

1.4 人ZHX2基因功能片段的克隆及测序 用Trizol reagent提取人正常肝组织总RNA,具体操作按文献〔5〕方法进行,沉淀置于室温干燥后加入30 μl水(含RNase inhibitor l μl)溶解,取3~5 μl进行琼脂糖凝胶电泳检查。立即进行逆转录或加入2倍体积的乙醇-80℃保存备用。逆转录和PCR反应严格按照试剂盒操作说明进行。取RNA 1 μg参照Quant script RT Kit试剂盒说明操作,取Quant Reverse Transcrplase 1 μl以及10×RT mix、dNTP 混合液(2.5 mmol/L)、Random(10 μmol/L) 各2 μl,加 DEPC 水定容至20 μl,37℃孵育60 min。所得 cDNA 用DEPC水稀释至50 μl置于-20℃保存备用。PCR扩增按50 μl体系进行,取2 μl逆转录产物为模板,以引物F1/R1对RT产物进行扩增,94℃,2 min预变性;循环参数为:94℃ 30 s,58℃30 s,72℃ 80 s,35个循环;然后72℃延伸7 min。扩增结束后,对PCR产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,切胶。用DNA凝胶回收试剂盒回收目的片段,并与pMD-18T载体连接,转化大肠杆菌DH5α感受态,PCR及酶切鉴定阳性克隆,初步鉴定成功的pMD-18T-ZHX2质粒送大连宝生物公司测序。

1.5 人ZHX2基因功能片段原核表达载体的构建 以EcoR I和Sal I对pMD-18T-ZHX2质粒和pET28a(+)载体双酶切,回收后连接、转换大肠杆菌BL21(DE3)pLysS感受态细胞,筛选阳性克隆进行PCR和酶切鉴定。鉴定正确质粒命名为pET28a-ZHX2。

1.6 目的蛋白的诱导表达、纯化及鉴定 将含有表达载体pET28a-ZHX2的宿主菌接种含卡那霉素(30 μg/ml)的LB液体培养基,37℃摇震培养至 OD600 0.4~0.6,加入终浓度1 mmol/L的IPTG诱导3~5 h,离心收集菌体,加入原培养液1/10体积的0.1 mol/L PBS重悬菌体,-20℃保存备用。培养液在4℃、5 500 r/min离心20 min,收集细胞沉淀物,沉淀物经超声裂解后用相同体积的PBS(pH7.0)重悬,沉淀和上清通过12 000 r/min离心20 min进行分离。进行SDS-PAGE检测分析,产物经Ni-NTA树脂纯化。把可溶上清液转移到纯化柱上,然后用5倍体积的PBS(pH7.0)溶液冲洗纯化柱。目的蛋白分别用含有10、20、50、100 mmol/L咪唑的 PBS(pH7.0)进行梯度洗脱。洗脱液经透析、浓缩、过滤除菌,Bradford法测定蛋白浓度后-70℃保存。

SDS-PAGE按文献〔5〕方法进行:灌制12%聚丙烯酰胺分离胶和5%的浓缩胶,取收集的上清20 μl和少量上样缓冲液混匀后上样,0.25%考马斯亮蓝R-250染色,凝胶成像系统扫描分析表达产物。Western印迹检测按文献〔6〕所述方法进行,转膜后在含有5%脱脂牛奶封闭液中封闭1 h,之后膜在1∶1 000的ZHX2单克隆抗体中4℃杂交过夜,第二天用PBS洗3次之后用1∶2 000的HRP标记的兔抗小鼠IgG二抗杂交1 h,PBS洗3次,在ECL仪器上用ECL底物发光液显影。

2 结果

2.1 ZHX2的克隆测序结果 ZHX2基因功能片段RT-PCR扩增后得到特异性的目的片段,结果如图1所示,用引物F1/R1进行PCR,得到大小为837 bp的片段,扩增结果与预期相符。经测序,与GenBank序列信息一致。

2.2 ZHX2原核表达载体的构建和鉴定结果 菌落PCR结果表明,插入片段与目的片段大小一致。pET28a-ZHX2重组质粒用EcoR I和Sal I双酶切,1%琼脂糖凝胶电泳,结果表明酶切后的片段大小约3 000 bp和837 bp,说明外源片段已插入。见图1。

2.3 ZHX2蛋白的诱导表达和鉴定结果 pET28a(+)-ZHX2重组质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)pLysS进行目的蛋白的诱导表达,在30℃,0.4 mmol/L IPTG诱导4 h,诱导的表达产物经纯化后,取上清液进行SDS-PAGE电泳,结果显示有融合蛋白表达,分子质量约为31 kD,与预期相符合。Western印迹结果显示,纯化后的表达蛋白与商品化的ZHX2单克隆抗体在32 kD处出现特异性条带。见图1。

图1 ZHX2克隆、pET28a-ZHX2重组质粒及ZHX2蛋白诱导表达和蛋白结果

3 讨论

ZHX 蛋白家族分子结构中均包括两个锌指结构(zinc-finger motifs)和五个同源结构域(homeo domains,HDs)。三种蛋白自身可组成同源二聚体,两种蛋白相互之间也可形成异源二聚体,ZHX2在肝、肾、脾脏等不同组织中都有很广泛的表达〔7〕,近期研究显示ZHX2可能参与多种疾病的发生发展:ZHX2不仅抑制肝癌细胞AFP的表达,而且在肾病综合征中参与肾小球内足细胞的调控〔8〕;另有研究显示,ZHX2表达与多发性骨髓瘤恶性程度及患者愈后呈负相关〔9〕。上述研究提示ZHX2可能是一个重要的抑癌基因。

ZHX2和ZHX1具有较高的同源性,在编码序列和氨基酸序列上的同源性分别为45.5%和41.9%。ZHX2主要定位在核内,有两个核定位信号,位于第317位氨基酸和第446位氨基酸之间。ZHX2蛋白间可形成同源二聚体,也可以与同家族成员ZHX1或ZHX3形成异源二聚体,二聚体结合区位于HDI(第195位氨基酸和第358位氨基酸之间)。ZHX家族成员结构相似,分子量大小相近。因此,抗原设计时应尽量避开共同或相似结构域。Yamada〔4〕报道,ZHX2蛋白263AA~497AA之间有一个脯氨酸富集区,是不同于ZHX1和ZHX3的一个特殊结构域,通过BLAST对比分析ZHX家族氨基酸序列发现,ZHX2在263AA~497AA区域内较其他成员同源性低。王金金等〔10〕对人的ZHX2基因进行了真核表达,通过对表达结果的对比分析,将ZHX2的最小抑制区域缩小到242AA~501AA区域内。本研究根据上述研究结果,针对其设计的抗原片段更易产出特异性强的抗体,原核细胞中表达蛋白纯化后免疫动物获得血清,Western印迹结果显示制备的抗体具有良好的特异性。

ZHX2蛋白全长837个氨基酸,含有多个功能域,但并非所有功能域都具有抑制功能。Kawata等〔3〕构建了ZHX2系列缺失表达载体,经共转染实验和报告基因分析结果发现,ZHX2抑制cdc25基因启动子的最小抑制区域在氨基酸序列263~446范围内,这个区域包含了整个HD1区和脯氨酸富含区,但该功能域是否同样是ZHX2抑制AFP、参与HCC及多种疾病发生的最小功能域,迄今尚不清楚。本研究根据ZHX2的编码序列,成功构建了人ZHX2基因功能片段的原核表达载体pET28a-ZHX2,并转化大肠杆菌BL21(DE3),在IPTG诱导下实现了目的蛋白的可溶性表达,Western印迹结果表明,本实验获得的表达蛋白为ZHX2基因特异性蛋白,为基因工程生产和改造ZHX2创造了条件,也为进一步阐明ZHX2基因的结构与功能及其在疾病发生中的作用奠定了基础。

1 Aussara Panyaa,Nunghathai Sawasdeeb,Chatchawan Srisawat.Expression of zinc finger and homeobox 2 in erythroleukaemic cells and gamma-globin expression〔J〕.Sci Asia,2010;36:342-5.

2 Shen H,Luan F,Liu H,et al.ZHX2 is a repressor of Alpha to protein expression in human hepatoma cell lines〔J〕.J Cell Mol Med,2008;12(6B):2772-80.

3 Kawata H,Yamada K,Shou ZF,et al.Zinc-fingers and homeoboxes(ZHX)2,a novel member of the ZHX family functions as a transcriptional repressor〔J〕.Biochem J,2003;373(Pt3):747-57.

4 Yamada K,Ogata-Kawata H,Matsuura K,et al.ZHX2 and ZHX3 repress cancer markers in normal hepatocytes〔J〕.Front Biosci,2009;14(1):3724-32.

5 萨姆布鲁克J,弗里奇EF,曼尼阿蒂斯T,著.金冬雁,黎孟枫,侯云德,译.分子克隆实验指南〔M〕.北京:科学出版社,2002:362-92.

6 潘 颖,毛丽君,孙艳霞,等.RhoC-miRNA真核表达载体的构建及其在卵巢癌细胞系中稳定表达〔J〕.中国老年学杂志,2009;29(3):277-9.

7 Perincheri S,Dingle RW,Peterson ML,et al.Hereditary persistence of alpha-protein and H19 expression in liver of BALB/cJ mice is due to a retrovirus insertion in the ZHX2 gene〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,2005;102(2):396-401.

8 Liu C,Clement LC,Kanwar YS,et al.ZHX proteins regulate podocyte gene expression during the development of nephritic syndrome〔J〕.Biol Chem,2007;281(51):39681-92.

9 Armelliui A,Sarasquete ME,Curca-Suuz R,et al.Low expression of ZHX2,but not RCBTB2 or RAN,is associated with poor outcome in multiple myeloma〔J〕.Br J Haematol,2008;141(2):212-5.

10 王金金,史 伟,祁建妮,等.转录抑制因子ZHX2功能片段的克隆及表达〔J〕.山东大学学报(医学版),2009;47(5):1-4.

R996

A

1005-9202(2011)16-3115-03

1 吉林大学第二医院普外科中心

田晓丰(1976-),男,博士后,主治医师,主要从事肝胆胰外科临床及基础研究。

赵红蕾(1987-),女,硕士,主要从事分子免疫学研究。

〔2011-02-15收稿 2011-05-07修回〕

(编辑 徐 杰)

猜你喜欢
原核克隆质粒
克隆狼
血清4型Ⅰ群禽腺病毒 Hexon、FierⅠ、FiberⅡ基因的原核表达
mcr-1阳性类噬菌体质粒与F33∶A-∶B-质粒共整合形成的融合质粒的生物学特性分析
多变鱼腥藻ATCC 29413基因的一步插入失活
浙江:诞生首批体细胞克隆猪
开发新方法追踪植物病害的全球传播(2020.6.7 iPlants)
水稻OsAAA1蛋白的原核表达载体构建及其可溶性表达研究
结核分枝杆菌CFP10、ESAT6蛋白的原核表达、纯化及ELISPOT检测方法的建立与应用
时差成像技术在常规体外受精周期中单原核胚胎的原核形成和卵裂模式及对其发育潜能的应用
属于“我们”