迟 林,李昊淼,许晓风
(首都医科大学附属北京同仁医院,北京100730)
近年来糖尿病(DM)炎症发病学说逐渐形成,认为DM是一种自然免疫和炎症性疾病,是代谢综合征的重要组成。炎症的发生与机体的免疫状态密切相关,已有文献表明2型DM(T2DM)的发病与免疫功能紊乱有关,本研究采用流式细胞测定技术检测T2DM患者外周血T淋巴细胞亚群、NK细胞及Treg细胞的变化,探讨其临床意义。
1.1 临床资料 2010年3~9月在我院就诊的T2DM患者120例,其中男74例、女56例,年龄35~81岁,均符合1997年美国糖尿病学会诊断标准。经眼科及内科检查,将患者分为有血管病变组68例,男39例、女29例,年龄43~81岁;无血管病变组52例,男30例、女22例,年龄37~68岁;对照组40例为我院健康体检者,男20例、女20例,年龄20~65岁。
1.2 仪器与试剂 美国Beckman Coulter FC500流式细胞仪,CD45-FITC/CD4-RD1/CD8-ECD/CD3-PC5,CD16+56-PE/CD3-FITC,同型对照 IgG1mouse FITC/IgG1mouse PE,CD4-PC5,CD25-PE,同型对照IgG2a mouse PE,IgG1mouse PC5,Lysing Solution,PBS均为美国Beckman Coulter公司生产。
1.3 实验方法 所有观察对象空腹取静脉血2 ml于EDTA-K2真空抗凝采血管内,混匀,室温保存。取不同荧光标记抗体各20 μl加入100 μl抗凝外周血中,避光孵育 20min,加入 Lysing Solution 500 μl,避光孵育10min,加入PBS 500 μl避光孵育10min,1 500 r/min离心5min,洗涤2次,加入PBS 1 000 μl,上机检测,记录阳性细胞百分率。
1.4 统计学方法 全部数据经SPSS11.0统计软件处理,数据采以±s表示,两样本均数比较采用t检验,以P≤0.05为有统计学差异。
表1 T2DM患者与正常对照组外周血淋巴细胞亚群检测结果(%,±s)
表1 T2DM患者与正常对照组外周血淋巴细胞亚群检测结果(%,±s)
注:与对照组比较,*P <0.05
组别 n CD3+ CD4+/CD3+ CD8+/CD3+ CD4+/CD8+ CD16++CD56+/CD3-CD4+CD25+无血管病变组 52 58.44 ±7.81* 36.56 ±4.56 26.33 ±4.98* 1.31 ±0.44* 19.02 ±6.63* 9.39 ±2.12*伴血管病变组 68 57.65 ±7.35* 36.02 ±4.32 25.47 ±4.26* 1.29 ±0.52* 18.76 ±5.98* 8.99 ±2.03*对照组 40 65.93 ±6.76 37.17 ±5.81 23.66 ±3.66 1.43 ±0.42 22.46 ±6.75 10.43 ±2.07
NK细胞被誉为天然免疫核心细胞,人类NK细胞的特征性表面标志是CD56和CD16分子,不表达CD3分子。NK细胞无需预先致敏直接杀伤靶细胞,有清除病毒感染的生物学活性,活化的NK细胞产生多种细胞因子和趋化因子,如分泌INF、IL-2及TNF等,参与天然免疫和获得性免疫。NK细胞活性降低,直接杀伤靶细胞功能下降,同时,产生的细胞因子减少,减弱了细胞免疫的正调节作用,抑制T细胞的增殖、分化及成熟,使得机体免疫功能降低,对炎症的监视及清除功能减弱。
调节性T细胞是一群具有负调节机体免疫反应的淋巴细胞,起着维持自身耐受和避免免疫过度损伤机体的作用。细胞被认为是天然产生的细胞群,它起源于胸腺,存在于正常机体内。体外实验发现细胞具有低反应性与免疫抑制两大功能[4],这些抑制功能的发挥是接触式抑制,不是细胞因子依赖性的抑制。它对IL-2、特异性抗原及 APC的刺激呈低反应性,活化的细胞可抑制的T细胞表达IL-2,抑制其的活化与增殖;细胞活化后CTLA-4分子表达增加,影响T细胞介导的免疫调节[5]。IL-2是T细胞生长因子,当IL-2水平降低时,Treg细胞的免疫抑制作用减弱[6],T细胞增殖受抑制,细胞免疫功能减弱。Salomon等首次证实NOD鼠Treg细胞数目减少和功能缺陷是其进展为DM 的重要因素[7]。
总之,T2DM患者存在细胞免疫功能紊乱。由于免疫功能下降,合并各种感染的机会增加,致残率及病死率增加,DM患者的免疫调节应予重视,加强细胞免疫功能的监测对病情判断、疗效观察有重要意义。
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