黄 革 陈宏勃 方 卓 (吉林大学第二医院放射线科,吉林 长春 130041)
IL-2联合热疗对SSMC7721细胞周期进程及凋亡的影响
黄 革 陈宏勃 方 卓 (吉林大学第二医院放射线科,吉林 长春 130041)
目的 观察白细胞介素-2(IL-2)联合热疗诱导人肝癌细胞株(SSMC7721细胞)的增殖抑制作用。方法 应用MTT比色法检测不同条件下对SSMC7721细胞的增殖抑制率,流式细胞仪检测细胞周期进程的变化,荧光显微镜检测细胞凋亡率。结果 单纯热疗组,单纯IL-2组及IL-2联合热疗组对SSMC7721细胞的抑制率分别为18.4%、23.7%和46.7%,与对照组相比差别具有显著性意义。流式细胞仪结果显示G0/G1期细胞增多,S期细胞减少,G2/M期细胞相对增多,细胞凋亡率升高,组间比较差异显著。结论 IL-2联合热疗能显著提高SSMC7721细胞增殖抑制率,诱导SSMC7721细胞G1期向S期细胞转化进程,诱导SSMC7721细胞凋亡。
SMC7721细胞;IL-2;热疗;细胞周期;凋亡
热疗与放疗、化疗显著的协同作用已为人们所公认,热疗与生物治疗联合应用近年来也倍受关注〔1〕。本研究应用人肝癌细胞株SSMC7721细胞为靶点,观察白细胞介素-2(IL-2)联合热疗对其作用机制,旨在为人肝细胞癌治疗提供依据。
1.1 材料
1.1.1 细胞及试剂 SSMC7721细胞株由吉林省肿瘤研究所惠赠,噻唑蓝(MTT)试剂、RPMI1640培养基购于美国Sigma公司,IL-2、胎牛血清购于长春生物制品研究所。
1.2 方法
1.2.1 MTT比色法 取对数生长期的SSMC7721细胞,调细胞数为2×105/ml,接种于96孔塑料培养板内每孔100μl,当细胞生长达到80%汇合时分组,单纯热疗组43℃ ±0.2℃持续加热40 min,然后移入37℃、5%CO2培养箱内静止培养。单纯IL-2组根据预实验结果,IL-2最适量为1 000 U/ml。联合组在单纯IL-2组基础上再加热43℃ ±0.2℃ 40 min,然后移入37℃ CO2培养箱内静止培养24 h,于结束前6 h加入MTT试剂20μl/孔,终浓度为500 mg/L,继续培养6 h后,吸弃上清加入二甲基亚砜150μl/孔,震荡10 min,使MTT还原产物完全溶解,于酶标仪570 nm处测量各孔吸光度A值,按下列公式计算SSMC7721细胞增殖抑制率。
SSMC7721细胞抑制率=(1-实验孔细胞A值÷对照孔细胞A值)×100%
1.2.2 流式细胞术 细胞培养及分组同1.2.1,不同之处是将96孔塑料培养板改为25 ml培养瓶进行,培养结束后细胞经0.25%胰蛋白酶消化收集细胞,磷酸盐缓冲液(PBS)洗2次,70%冷乙醇固定,上机前过40目网,调细胞数为1×106/ml,碘化丙啶(PI)染色,流式细胞仪检测,细胞周期结果以Modiffi2.0软件分析。
1.2.3 荧光染色 细胞培养及分组同1.2.1,培养结束后将荧光染液直接滴入96孔培养板内,荧光染液浓度为吖啶橙(AO)100 μg/ml、溴化乙啶(BB)100 μl等量混合,每孔50 μl,然后在荧光显微镜下观察并拍照。
1.3 统计学分析 采用SPSS11.0统计软件,细胞抑制率t检验,细胞周期组间比较采用F检验。
2.1 MTT结果 不同条件对SSMC7721细胞增殖均有影响,与对照组相比差异显著,且联合组效果更显著。见表1。
2.2 流式细胞术结果 不同条件对SSMC7721细胞周期各时相均有影响,G1期细胞增多,S期细胞减少,G2/M期细胞相对增多,组间比较差异显著。见表2。
表1 不同条件对SSMC7721细胞增殖抑制率的影响(±s)
表1 不同条件对SSMC7721细胞增殖抑制率的影响(±s)
组别 A值 抑制率(%) P值对照组1.52±0.12 - -热疗组 1.24±0.14 18.4% <0.01 IL-2组 1.16±0.16 23.7% <0.01联合组0.82±0.20 46.7% <0.01
表2 不同条件对SSMC7721细胞周期进程影响(±s,%)
表2 不同条件对SSMC7721细胞周期进程影响(±s,%)
与对照组G0/G1比较:1)P<0.05,2)P<0.01
组别 G0/G1 S G2/M 凋亡率对照组 31.5±2.1 65.4±3.12) 2.7±1.92)0.8热疗组 43.7±3.91) 39.1±4.72) 17.2±2.42) 12.8 IL-2组 52.4±4.21) 27.2±3.32) 20.1±1.72) 13.6联合组 63.6±3.82) 13.6±2.52) 22.8±3.52)21.4
图1 各组SSMC7721细胞凋亡情况
2.3 荧光染色结果 如图1所示,不同条件对SSMC7721细胞结构均有促凋亡作用。
肝癌是最常见的人类致命性恶性肿瘤,由于发病隐匿,确诊时能够手术切除者仅占10%~20%。因此,以非手术为主的综合治疗已成为肝细胞癌的主要治疗手段〔2〕。热疗因其毒副作用反应低,配合放疗、化疗及生物治疗具有显著的协同作用。
本研究应用IL-2联合热疗体外观察其对SSMC7721细胞增殖抑制作用,MTT结果显示,热疗组,IL-2组及联合组对SSMC7721细胞增殖抑制率为18.4%、23.7%、46.7%,与对照组相比差异具有显著性意义。但联合效果明显,两者合用具有协同作用。因为MTT试剂可被哺乳动物活细胞线粒体中的脱氢酶还原成蓝色的甲臜颗粒,且甲臜生成的量与活细胞数目及细胞活化状态呈线性关系。所以,该实验被广泛用于抗肿瘤药物的筛选和细胞毒性实验研究,具有一定的客观性。
流式细胞仪结果显示,热疗组、IL-2组及联合组对SSMC7721细胞周期各时相均有影响,组间比较差异显著,文献〔3〕报道S期细胞对热敏感,受热后损伤严重,可形成多核细胞,分裂后死亡,因而导致S期细胞减少。IL-2主要由CD4+和CD8+T淋巴细胞产生,是免疫应答的重要细胞因子,具有多种生物学功能;可通过热休克蛋白调节肿瘤细胞基因的转录和翻译〔4〕,影响细胞DNA的合成,阻滞细胞周期G1期向S期转化过程,从而使G1期细胞增多,不能进入S期。造成S期细胞减少,根据流式细胞仪结果初步认为IL-2与热疗联合应用既能抑制细胞周期G1期的进程,又能抑制S期细胞,从而使G2期/M期细胞相对增多,而G2期/M期细胞增多是细胞损伤的普遍反应〔6〕。这一点从细胞凋亡率反映更为明显。
此外,本研究应用荧光技术对不同条件下的细胞进行复合染色,BB为菲啶类染料,可嵌入多核苷酸结构,活细胞膜可排斥BB穿透,而凋亡或死亡细胞易穿透,故凋亡细胞被染成黄色,死亡细胞则呈均匀红色;AO可穿透活细胞膜,细胞被染成绿色,通过荧光显微镜极易区别。
综上所述,热疗诱使肿瘤细胞产生大量热休克蛋白,具有直接的细胞毒作用,改变细胞膜的通透性和流动性,从而导致细胞内环境发生变化〔6〕,有利于抗肿瘤药物的吸收。所以,热疗与化疗、放疗及生物治疗联合应用具有显著的协同作用。
1 高 慧,杨耀琴.热疗与生物治疗的联合抗肿瘤效应〔J〕.国际肿瘤学杂志,2009;36(3):193-5.
2 宋长城,吕 祥,李 柏,等.抗肝细胞癌血管生成研究进展〔J〕.国际肿瘤学杂志,2007;34(2):128-31.
3 Lim CU,Zhang Y,Fox MH,et al.Cell cycle dependentapoptosis and cell cycle blocks induced by hyperthermia in HL-60 cells〔J〕.Int JHyperthermia,2006;22(1):77-91.
4 Kawauchi K,Ihjima K,Yamada O.IL-2 increases human telomerase reverse transcriptase activity transcriptionally and posttranslationally through phosphatidylinositol 3-kinase/Akt,heart shock protein 90,and mammalian target of rapamycin in transformed NK cells〔J〕.J Immunol,2005;174(9):5261-9.
5 Eillnger-Ziegelbauer H,Karasuyama H,Yamada E,et al.Ste20-like kinase(SLK),a regulatory kinase for polo-like kinase(PLK)during the G2/M transition in somatic cells〔J〕.Genes Cells,2000;5(6):491-8.
6 张 威,耿传营,唐劲天.热疗激发肿瘤免疫作用研究进展〔J〕.国际肿瘤学杂志,2008;35(3):166-9.
R739.3
A
1005-9202(2011)12-2237-02
方 卓(1956-),男,副主任药师,主要从事抗肿瘤药物研究。
黄 革(1967-),男,主管技师,主要从事肿瘤诊断治疗研究。
〔2011-03-30收稿 2011-04-02修回〕
(编辑 袁左鸣/徐 杰)