兔VX2肝癌模型的建立的综述

朱妍

引言

恶性肿瘤严重威胁着人类的生命健康，而是否存在转移是决定患者存活期和肿瘤治疗成败的主要因素。肝脏是恶性肿瘤最常见的转移部位，据1905年～1973年的尸检统计，因恶性肿瘤而死亡的病人中，有24%～36%的病人发现肝转移。Weiss等指出，其中结肠、直肠癌患者至少有20%将死于肝转移[1]。因此，早期发现肝癌对肿瘤诊治至关重要，可争取手术机会，明显延长患者生命。为了进一步探讨肝脏肿瘤的影像学特征，需要建立一个类似人肝癌的动物模型，以期对其进行深入的基础研究和临床研究，可以预见这样的动物模型对探讨肿瘤复发转移机制、病理演变过程、早期诊断、治疗等方面的研究均具有重要价值。

而这方面的实验研究则要求采用较大的动物模型才更为合适。目前在较大动物建立的肝癌模型的报道尚少，兔肝VX2癌是少数建立在较大动物的肝癌复发转移模型，是目前用于影像研究最为理想的肝癌实验模型之一。近年来已有学者将其用于介入、高强度聚焦超声、微波治疗、新型肝脏特异性和血池型CT、MRI造影剂等的实验研究，是目前用于影像研究最为理想的肝癌实验模型之一。通过建立兔VX2肝癌模型，利用影像设备监测兔VX2肝癌的生长、转移情况，旨在进一步完善兔VX2肝癌模型及其影像学检查方法，并将兔VX2肝癌各阶段的MRI影像学表现与病理切片进行比较研究，促进人早期肝癌的诊断与治疗[2-3]。

1 VX2瘤株简介

在1930年后期，Kidd利用Shope病毒在兔子体内诱发乳头瘤，随后转化成鳞状细胞癌，建立了可以植入兔子的许多部位和器官的兔VX2瘤种，从而成功地建立了兔子VX2肿瘤动物模型。实验所用瘤株来源于Shope病毒致乳头瘤恶变形成的上皮细胞恶性肿瘤，经过72次传代后正式建株，并可接种到兔肝脏、肾脏、肌肉、肺脏等部位，制成原位肿瘤动物模型[4-5]。

实验一般采取兔VX2肿瘤模型的主要原因是:该肿瘤性质稳定，增殖迅速，短期内即可发生广泛坏死，并形成肝、肺转移，故VX2肿瘤瘤株在大型动物模型的研究上具有很高的应用价值[6-7]。

2 动物模型的特点

兔肿瘤模型具有制作简便易行，价格相对低廉，实验周期短、成功率高、重复性好、模型性质稳定等特点。兔肝脏的左叶体积明显大于右叶，左肝动脉较粗大，大多数从腹腔动脉直接发出，而右肝动脉较细。同时为了方便操作，避免栓塞材料等进入胆囊动脉引起不必要的并发症。因此，研究VX2肝癌模型最好将悬液种植于肝左叶。虽其组织形态、生物学特性与原发性肝癌有所不同，而兔长期生存率不高，且兔VX2肝癌模型在短期内即出现明显的液化坏死等均不利于长期研究，但可用作有关肝癌治疗学及肝癌影像学等的相关临床前期研究[8]。

3 VX2瘤株的制备

首先，将VX2冰冻肿瘤细胞按一般细胞培养技术进行复苏后800r/min离心5min，弃去上清液，加入PBS液再离心5min，再弃上清液后加入PBS液并用玻璃棒搅匀。取悬液置于培养皿中培养传代，台盼蓝染色，将培养液调制成1×107/ml活细胞密度。取0.5ml接种于兔后腿外侧肌肉内，2周后可扪及后腿外侧肌肉内一实质性包块，说明荷瘤兔制作成功。传代一般在2～4周左右进行，4周后瘤体多液化坏死，影响接种质量。在无菌条件下将兔全麻后手术剥离荷瘤兔后腿肌肉内肿块，切开瘤体后取瘤细胞生长活跃的灰白色鱼肉样组织置于盛有生理盐水(青霉素40万U)的烧瓶中，剔除坏死组织及纤维组织，以便制成肿瘤悬液。用1ml注射器抽取1ml备用。当采用肿瘤组织块直接接种法时则将从荷瘤兔体内取出的生长活跃的肿瘤组织用手术剪剪碎至1～2mm3的小块以便后续种植之用[9-12]。

4 兔VX2肝癌模型的建立

目前兔VX2肝癌模型的建立主要有3种方法:瘤细胞悬液经肝包膜注入法、超声穿刺接种，肿瘤组织块直接接种法。

4.1 肿瘤组织块直接接种法

将兔子全麻后无菌条件下逐层开腹，暴露肝脏，以眼科镊于肝左中央叶较厚处刺破肝组织并形成口小(3～5mm)底大(5～8mm)的“烧瓶”样窦道,将2～3块剪碎的瘤株植入其中,并以明胶海绵碎块埋塞窦口。确认止血后回纳肝脏，逐层关腹。术中还应注意:(1)瘤株制备时要将坏死组织及纤维组织剔除干净，以免影响成功率。(2)注意无菌操作，避免感染所致接种失败。(3)塞入瘤株碎块后，应以明胶海绵填塞窦口，一来可避免瘤块溢出造成腹腔种植；二则可使瘤株尽可能种植在肝左叶深部，可使瘤灶靠近较大血管支易于获得血供[13]。

4.2 超声穿刺接种

常规肋下B超或CT扫查待接种兔肝脏，明确兔肝位置并确定待接种部位，选定穿刺点、角度、深度。常规消毒铺巾，尖刀挑开穿刺点皮肤(术后瘢痕点可作为B超或CT监测移植瘤的部位)，用带尖头穿刺针芯穿刺针沿设定的穿刺角度、方向穿入预定肝位置，助手固定好穿刺针，术者拔出针芯，眼科镊夹1块瘤块放入针鞘内，平头穿刺针芯将瘤块推入肝内，重复1～2次。在直视下来回在针鞘内推动平头穿刺针芯，证实瘤块接种于肝脏。如未成功，可再重复上述操作。术后连续3天青霉素40万U+庆大霉素4万U肌注。采用直接穿刺法复制出的VX2兔肝癌模型具有方法简单、成功率高、模型性质稳定的特点。同常规开腹接种法相比具有以下优点:不需开腹，无开腹接种法常伴的出血多、损伤大、术中兔麻醉过浅不易操作，麻醉过深易致意外死亡；术后手术瘢痕影响超声监测等缺点。同悬液注射法相比:形成的肿瘤为孤立结节型而非弥漫性肿瘤，便于进行肝癌的影像学研究，无腹腔种植，并且可根据研究需要调整模型肿瘤在肝的位置。不过，由于兔肝小移动性较大且分叶多，故在选兔时一般选择体型较大的兔，为提高穿刺接种成功率，要求尖头穿刺针芯锐利，平头穿刺针芯直径与外套针内径吻合，长度略长于外套针；穿刺时需一定的技巧:先用尖刀挑开拟穿刺处皮肤，再进针。进针要求快、防止瘤块接种于肝叶之间的空隙中[14]。

4.3 瘤细胞悬液经肝包膜注入法

实验兔术前12小时内禁食不禁饮。用麻醉药经耳缘静脉麻醉后，将实验兔仰卧，四肢固定，上腹部常规剃毛，按外科无菌程序消毒术区皮肤，铺无菌巾，于剑突下稍偏左约1cm作一4～5cm切口，切开皮肤，分离肌肉、筋膜，打开腹腔，暴露肝脏。挑开肝包膜，将1mlVX2肿瘤细胞悬液用16号针头注人肝实质内，压迫止血。注意注射时速度应缓慢，避免推注压力过大，悬液外渗引起腹腔内种植。另外尽量使肿瘤种植在肝叶深部，可使瘤灶靠近较大血管支易于获得血供。拔针后立即用直径约1.0cm的生理盐水棉球轻压针眼表面至彻底止血，4～6s后将肝脏回纳入腹腔，逐层缝合腹壁伤口。待种植兔复苏后，于动物实验室隔离饲养。术后连续3天青霉素40万U+庆大霉素4万U肌注[15-17]。

5 兔VX2肝癌模型的应用

兔VX2肿瘤是迄今为止唯一能够在较大动物建立的肝转移性肿瘤模型，该模型多用于肝脏肿瘤的影像学和治疗学研究。实验动物在短期内均能长出孤立的肝脏肿瘤，复制出的肝脏肿瘤在对分析兔肝VX2肿瘤的病理过程及发生转移的机理也有重要意义，对指导临床选择肿瘤治疗方案也有指导意义。文献显示7天时肿瘤尚处于肿瘤血管生成前期，此时进行抗肿瘤血管生成治疗效果特佳；14天时肿瘤体积较小，此阶段为供瘤血管形成期，肝功能变化不大，无肝外转移，可作为早期肝癌模型；接种后21天，相对于动物肝脏体积肿瘤己较大，瘤中心出现变性坏死出血，此阶段为供瘤血管稳定期，肝功能己有明显变化，但转移尚不多见，可作为进展期肝癌的研究模型；接种后28～35天肿瘤进一步增大，中心变性坏死增多，且多数已出现远处转移，可作为较晚期肝癌的动物模型，此阶段为供瘤血管退化期，血管增生相对减慢，瘤体大部分坏死[18-19]。故进行肿瘤传代以14～21天为宜，以免肿瘤坏死和转移影响实验结果。

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