栗卫东
(济源市农业综合行政执法支队,河南济源 459000)
副猪嗜血杆菌病是一种由巴氏杆菌科的副猪嗜血杆菌(Haemophilus parasuis,HPS)感染猪引起的以多发性纤维素性心包炎、脑膜炎、关节炎和浆膜炎为病理特征的细菌性传染病[1]。病猪多表现为发烧,呼吸困难,关节肿胀,皮肤及黏膜发绀,部分猪可见共济失调、转圈等神经症状。副猪嗜血杆菌病在世界各地的养猪场均有发生,我国猪群的病死率一般为30%~40%,严重时可达50%[2],断奶仔猪和保育猪多发,给养猪业造成严重经济损失。HPS 通常存在于猪的上呼吸道,为条件致病菌,健康猪并不发病,多在受到应激、感染免疫抑制性猪蓝耳病、猪伪狂犬病、猪瘟等多种疾病影响下,猪机体免疫力降低,继发HPS 病,加重猪的病情。HPS血清型较多,目前已发现15 个血清型,其他20%以上的分离株血清型未能定型[3]。国内流行较多血清型主要有4、5、13、14。同一地区甚至不同猪场流行菌株血清型存在差异,不同的血清型之间缺乏交叉保护率,目前国内使用的二价菌苗(4、5 血清型)无法对其他血清型起到有效免疫效果[4]。防治HPS 临床用药多使用抗生素,然而长期不合理地使用抗生素容易导致菌株耐药性增强,给养猪场治疗该病带来困难。此外,通过药敏试验可以监测HPS 对抗生素的耐药情况,为临床合理用药指明方向。本研究对河南省济源市某规模化养猪场疑似HPS 病猪进行实验室诊断,通过对分离菌株纯化培养、PCR 扩增和血清分型,鉴定分离菌株为4 型HPS,并对该菌株药敏性分析,旨在为副猪嗜血杆菌病防治提供精准的科学参考。
采集河南省济源市某规模化猪场临床疑似HPS 病死猪的肺脏、心脏、关节液、胸腹腔液等组织样品。
1~15 型HPS 标准菌株,1~15 型HPS 标准阴性血清和阳性血清,均来自河南农业大学动物医学院微生物实验室。
巧克力培养基、7%绵羊血琼脂培养基、胰蛋白胨大豆肉汤(TSB)、胰蛋白胨大豆固体培养基(TSA)固体培养基等购自北京索莱宝科技有限公司;细菌微量生化鉴定管、24 种药敏纸片购自青岛海博生物技术有限公司;细菌DNA 基因抽提试剂盒购自南京诺唯赞生物科技有限公司;dNTP Mix、10×Buffer、Taq 酶、DL-2 000 Marker,购自生工生物工程(上海)股份有限公司;多功能梯度PCR 扩增仪由Thermo Fisher 公司生产。
1.4.1 细菌纯化培养与镜检
无菌采集病料接种于7%绵羊血琼脂培养基,置入恒温箱,37℃培养24 h,挑取单个菌落接种于巧克力培养基上,37℃恒温培养24 h,然后挑取单个菌落分别接种于巧克力培养基和TSA 固体培养基上,挑取菌落在TSB 培养基纯化生长,7℃恒温培养24 h 后,制作涂片,革兰氏染色,镜检。
1.4.2 生化鉴定
分离菌株生化试验鉴定,按照细菌微量生化鉴定管说明书操作,37℃培养24 h,观察各生化鉴定管结果。
1.4.3 PCR 鉴定
根据Oystein 等[5]、Howell 等[6]研究方法,针对HPS vanY 基因序列设计1 对用于扩增鉴定HPS 引物P1、P2,P1:5'-ACAACCTGCAAGTACTTATCGGGAT-3',P2:5'-TAGCCTCCTGTCTGATATTCCCACG-3',预期大小276 bp。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。分离菌株DNA 模板按照细菌DNA 基因抽提试剂盒说明书操作,无菌接种病料于TSB 培养基,37℃培养24 h,吸取培养菌液装入1.5 mL 离心管,加20 μL ddH2O,沸水浴10 min,-20℃冰浴10 min,12 000 rpm,离心10 min,取上清液作为分离菌株DNA基因组模板。扩增体系体积为25 μL:10×PBS 缓冲液2.5 μL,dNTPs 0.5 μL,DNA 模板1 μL,Taq 酶1 μL,10 μmol/L P1、P2 引物各1 μL,加入ddH2O 至25 μL。扩增程序:94℃5 min;94℃1 min,58℃1 min,72℃45 s,共35 个循环;72℃延伸10 min。取10 μL扩增产物用1.2%琼脂糖凝胶电泳检测,凝胶成像系统下观察结果。
1.5.1 琼脂扩散法分型
根据徐引弟等[7]的研究方法,将分离菌株接种于TSB 培养基,37℃培养36 h,挑取菌落加入装有pH 值为7.2、10 mL 缓冲液的灭菌管,8 000 rpm 离心3 min,弃去上清液,再加入体积为管内沉淀物9 倍的PBS,混匀,120℃高压2 h,取出后8 000 rpm 离心5 min,上清液即为用作琼脂扩散试验的分型抗原。将8.5 g 和1 g琼脂糖放入100 mL PBS 缓冲液,加热溶解,倒入平板,用打孔器在平板中央打1 个直径3 mm 的孔,周围打5个同样孔,孔间距4 mm,分型抗原加入中央孔,周围孔加入1~15 型HPS 标准阴性血清和阳性血清,放入塑料湿盒,37℃36 h,观察结果。
1.5.2 PCR 扩增分型
根据王同兆等[8]的试验方法,针对HPS wciP 基因序列设计1 对用于扩增鉴定4 型HPS 的特异性引物P3、P4,P3:5'-GGTTAAGAGGTAGAGCTAAGAATAGAG G3',P4:5'-CTTTCCACAACAGCTCTAGAAACC-3',预期大小349 bp。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。参照1.4.2 中的反应体系和反应条件,用引物P3 和P4 进行分离菌株PCR 扩增,扩增产物送生工生物工程(上海)股份有限公司测序,用BLAST 软件对测序结果与GenBank 中的参考菌株同源性比对分析。
挑取分离菌株HPS 放入灭菌生理盐水,涡旋振荡混匀,调整浓度至0.5 个麦氏比浊度。用棉拭子将菌悬液均匀涂布于TSA 培养基,自然晾干,药敏纸片平贴培养基上,37℃培养36 h,测量药物的抑菌圈直径大小。按照美国临床实验室标准化协会(CLSI M100—S25,2015 版)标准判耐药结果。
在7%绵羊血培养基上可见边缘整齐、圆形、灰白色菌落;在TSA 培养基上可见光滑湿润、边缘整齐、灰白色的菌落,直径为1~2 mm;在巧克力培养基上可见表面隆起、圆形、光滑整齐、灰白半透明的菌落。镜检结果,菌体为细丝状、球状、短杆状等多种形态。
分离菌株接触酶试验呈阳性,氧化酶、脲酶、吲哚、鸟氨酸脱氢酶均呈阴性,不分解甘露醇,能分解蔗糖、果糖、葡萄糖、麦芽糖、半乳糖和阿拉伯糖。生化特性符合副猪嗜血杆菌,初步鉴定分离菌株为副猪嗜血杆菌。
细菌PCR 扩增获得1 条目的基因条带,长度为276 bp,符合预期大小,结果判定为副猪嗜血杆菌,见图1。
图1 分离菌PCR 鉴定结果
2.4.1 琼脂扩散法分型结果
中央孔内的分型抗原和4 型HPS 标准阳性血清之间有沉淀线出现,而其他型血清无沉淀线,证实分离菌株为4 型HPS。
2.4.2 PCR 血清型鉴定结果
用4 型HPS 特异性引物P3、P4 对分离菌的DNA进行PCR 扩增,获得1 条目的条带,长度为349 bp。对扩增结果进行测序,并应用BLAST 生物软件,与GenBank 中4 型HPS 参考菌株SW124(登录号:KC795356)基因序列同源性比对,同源性为100%,证实该分离菌株为4 型HPS。见图2。
图2 分离菌PCR 分型鉴定结果
由表1 可知,分离的4 型副猪嗜血杆菌菌株对头孢曲松、头孢噻肟、氨苄西林、阿莫西林敏感;对环丙沙星、阿米卡星、链霉素、多西环素、卡那霉素、庆大霉素等产生耐药性。
表1 副猪嗜血杆菌耐药性分析结果
猪的副猪嗜血杆菌广泛存在于我国各地养猪场中,成为重要的细菌性疫病,其防控仍具有挑战性。HPS 是一种非溶血性、多形态、无芽孢、不运动的革兰氏阴性菌,兼性厌氧和依赖V 因子(烟酰胺腺嘌呤二核苷酸,NAD)生长[9]。由于其生长繁殖对环境条件要求高,在采集病料和分离纯化培养中应注意采集部位、抗生素使用、培养基选择等因素对该细菌生长的影响。有报道,HPS 主要侵染上呼吸道和肺部,且长时间使用抗生素的猪难以分离出病原菌,因此,病料采集重点在鼻腔、呼吸道和肺部,并结合猪的临床表现采集相应的组织器官,以提高检出率[10]。传统的细菌分离培养比较繁琐,耗时较长,且准确率不高,采用分子生物技术PCR 可以提高检测效率和准确性,并能对细菌进行进一步血清分型[11]。本试验采用传统细菌分离培养和生化试验的同时,利用PCR 扩增技术对病原菌进行检测和血清分型,找到本次疫情的致病菌HPS 的主要血清型,为下一步有效防控提供了明确方向。
在HPS 标准血清型中,1、5、10、12、13 和14 被认为是强毒性毒株,2、4、15 和8 被认为是弱毒性毒株,血清型3、6、7、9 和11 被认为是无毒性毒株。血清型4 和5 在我国最流行,其次是血清型7、12、13 和14[12]。HPS 血清型的存在具有地区差异性,不同地区甚至不同猪场由于用药习惯、饲养管理等不同,其血清型也不同[13]。其流行特点与不同血清型菌株毒力、猪群免疫、抗生素使用、应激和疫苗接种程序等有直接关系[14,15]。本研究分离菌株为4 型HPS,属于弱毒性菌株,也是我国流行菌株,本次样本来源于一个猪场,对于济源市其他养猪场中存在的HPS 血清型是否为4-HPS,需要进一步检测。抗生素依然是有效防控和治疗该病的首选药物,但由于耐药性成为阻碍抗生素发挥治疗效果的棘手难题,使得开展耐药性监测成为必要。通过药敏试验能够为临床用药提供参考,避免盲目滥用,导致细菌耐药性扩大。
本次药敏结果显示,在10 种抗生素种,分离的副猪嗜血杆菌菌株对头孢曲松、头孢噻肟、氨苄西林、阿莫西林敏感,其他表现为耐药。因此,临床防治要选择敏感药物,并交叉轮换用药,提高治疗效果。
综上所述,副猪嗜血杆菌在猪场中都有存在,而有的猪场猪群会发病,有的猪群则不发病。且发现HPS 的致病机制尚不清楚,且存在多种血清型,各血清型之间缺乏免疫保护,发病菌血清型与疫苗血清型不同,造成疫苗免疫失败。因此,针对本场疫情,应通过实验室诊断找到具体的血清型,或者应用自家苗预防副猪嗜血杆菌感染。