陈小红,陈广云
(淮安市食品药品检验所,江苏淮安 223001)
牛黄解毒片具有清热解毒的功效,是临床常用的一味中药,用于火热内盛,咽喉肿痛,牙龈肿痛,口舌生疮,目赤肿痛。牛黄解毒片由人工牛黄﹑雄黄﹑石膏﹑大黄﹑黄芩﹑桔梗﹑冰片及甘草八味药材组成,其中人工牛黄具有清热解毒,化痰定惊的功效。人工牛黄由牛胆粉﹑胆酸﹑猪去氧胆酸﹑牛磺酸﹑胆红素﹑胆固醇﹑微量元素等加工制成[1]。胆酸是一种有机酸,对于支气管炎和慢性支气管炎有一定的治疗效果,可以保护患者的胃肠道黏膜,防止黏膜受损还可以降低血脂,治疗高血脂,缓解胆囊炎等作用。猪去氧胆酸是一种有机化合物,是从猪胆汁中提取的一种胆烷酸,具有治疗胆道炎,胆囊炎,胆石症和其它非阻塞性胆汁淤积的功效,还能够促进肠道脂肪分解和脂溶性维生素吸收,同时可以降低血中的胆固醇,治疗﹑预防冠心病和高血压,因此测定牛黄解毒片中胆酸和猪去氧胆酸的含量具有重要意义。
目前对牛黄解毒片中胆酸﹑猪去氧胆酸的研究采用双波长薄层扫描法,此方法操作方便﹑设备简单﹑显色容易,展开速率快,但有时分离效果不理想,结果不准确,重现性较差。《中国药典》2020 年版牛黄解毒片只分析了黄芩苷的含量,并没有考察胆酸﹑猪去氧胆酸的含量。不同厂家﹑不同批次的牛黄解毒片所用人工牛黄的品质有差异,进而造成胆酸及猪去氧胆酸的含量有差异,笔者采用HPLC(高效液相色谱)法,蒸发光散射检测器检测,测定牛黄解毒片中胆酸[2–8]和猪去氧胆酸[9–14]的含量,通过其两者之和来评价牛黄解毒片质量的分类情况。该方法简单,重复性好,结果准确,适用于测定胆酸和猪去氧胆酸的含量,从而达到控制牛黄解毒片的质量,为临床用药提供指导性建议。
高效液相色谱仪:Aglient 1260 型,OpenLAB工作站,安捷伦科技(中国)有限公司。
数控超声波清洗器:KH7200DE 型,昆山市禾创超声仪器有限公司。
超纯水机:ELGA PureLab Classic 型,英国埃尔格公司。
电子天平:(1)XSDU205 型,感量为0.01 mg,(2)XP6 型,感量为0.001 mg,瑞士梅特勒–托利多仪器公司。
胆酸对照品:批号为100078–201415,质量分数为98.9%,中国食品药品检定研究院。
猪去氧胆酸对照品:批号为100087–200610;质量分数为97.3%,中国食品药品检定研究院。
甲醇﹑乙腈:色谱纯,德国默克公司。
甲酸:分析纯,国药集团化学试剂有限公司。
牛黄解毒片样品:批数为60,样品编号为1~60,市售。
色 谱 柱:Welch Ultimate LP–C18柱(250 mm×4.60 mm,5 µm,Welch 公司);流动相:甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(体积比为63∶17∶20);检测器:蒸发光散射检测器;流量:0.8 mL/min;柱温:30℃;进样体积:20 µL。
精密称取胆酸对照品2.586 mg﹑猪去氧胆酸对照品2.505 mg,置于10 mL 容量瓶中,加甲醇溶解并稀释至标线,摇匀,配成胆酸﹑猪去氧胆酸质量浓度分别为0.258 6﹑0.250 5 mg/mL 的对照品混合溶液。
取样品20 片,精密称定,研细,精密称取适量(约相当于人工牛黄16.5 mg),置于25 mL 容量瓶中,加甲醇适量,超声处理30 min(功率为500 W,频率为40 kHz),放冷,用甲醇稀释至标线,摇匀,用微孔滤膜过滤,取续滤液作为样品溶液。
精密吸取对照品溶液5 µL,样品溶液20 µL,按1.2 色谱条件分别进样测定,对照品混合溶液﹑样品溶液色谱图如图1﹑图2 所示。
图1 对照品混合溶液色谱图
图2 样品溶液色谱图
结果表明,对照品混合溶液﹑样品溶液中胆酸﹑猪去氧胆酸分离度均大于2.0,拖尾因子分别为1.02﹑1.03,理论板数按胆酸﹑猪去氧胆酸计均大于6 000,系统适应性试验符合要求。
以编号为6 的牛黄解毒片样品为待测对象,以甲醇﹑乙醇﹑60%甲醇溶液﹑65%乙醇溶液四种溶剂提取胆酸﹑猪去氧胆酸,结果表明,提取溶剂为甲醇时,效果最好,故选用甲醇为提取溶剂。以甲醇为提取溶剂,分别采用回流法﹑超声法提取胆酸﹑猪去氧胆酸,结果表明,两者提取效果相当,但回流法需要时间较长,超声法所用时间较短且操作简便,故选用超声法提取样品。将样品分别置25 mL﹑50 mL 容量瓶中提取,比较不同体积的提取效果,发现并无显著性差异,本着节约试剂﹑节约成本的原则,提取溶剂体积选择25 mL。考察样品提取时间30 min﹑1 h,两者提取色谱峰面积接近,表明30 min 提取完全,故选择超声时间30 min。
分别考察甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(体积比为68∶17∶15)﹑甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(体积比为68∶12∶20)﹑甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(体积比为65∶14∶21)﹑甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(体积比为63∶17∶20)四种流动相体系。结果发现,以甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(68∶17∶15)为流动相时,胆酸﹑猪去氧胆酸出峰时间较快,胆酸﹑猪去氧胆酸分离度为1.1;以甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(68∶12∶20)为流动相时,两个色谱峰的拖尾因子分别为1.1﹑1.2;以甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(65∶14∶21)为流动相时,胆酸﹑猪去氧胆酸色谱峰交叉重叠,不能达到基本分离;以甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(63∶17∶20)为流动相时,胆酸﹑猪去氧胆酸色谱峰分离良好,拖尾因子在规定范围内,理论板数均大于6000,且保留时间适中,故选用甲醇–乙腈–0.1%甲酸溶液(63∶17∶20)为流动相。
精密吸取1.3 中对照品溶液2﹑5﹑8﹑10﹑15﹑20µL,注入液相色谱仪,在1.2 色谱条件下测定色谱峰面积,以色谱峰面积的对数Y为纵坐标,胆酸﹑猪去氧胆酸质量的对数(X)为横坐标,绘制工作曲线,计算线性方程和相关系数。用甲醇不断稀释对照品混合溶液,在1.2 色谱条件下测定,以S/N为3 时对照品浓度为检出限。胆酸﹑猪去氧胆酸的线性方程﹑线性范围﹑相关系数及检出限见表1。
表1 胆酸、猪去氧胆酸的线性方程、线性范围、相关系数及检出限
精密称取60 号样品(约相当于人工牛黄16.5 mg)6 份,按1.4 方法制备样品溶液,在1.2 色谱条件下测定,结果见表2。由表2 可知,胆酸﹑猪去氧胆酸质量浓度测定结果的相对标准偏差分别为0.4%﹑0.7%,表明该方法精密度良好。
表2 精密度试验结果
分别于0﹑2﹑4﹑8﹑10﹑12 h测定对照品混合溶液,测定胆酸﹑猪去氧胆酸峰面积,结果见表3。由表3可知,胆酸﹑猪去氧胆酸峰面积的相对标准偏差分别为0.4%﹑0.6%,表明对照品混合溶液在12 h 内稳定。
表3 稳定性试验
精密称取6 号样品细粉(约相当于人工牛黄16.5 mg)6 份,分别置于50 mL 量瓶中,精密加入等量的胆酸﹑猪去氧胆酸对照品,按1.4 方法制备样品溶液,在1.2 色谱条件下测定,进行加标回收试验,结果见表4。
表4 准确度试验
由表4 可知,胆酸﹑猪去氧胆酸平均回收率分别为98.16%﹑97.83%,说明该方法具有较高的准确度。
取60 批牛黄解毒片样品,按1.4 方法制备样品溶液,在1.2 色谱条件下测定,结果见表5。
表5 每片牛黄解毒片中胆酸、猪去氧胆酸的含量测定结果
续表5
由表5 可知,牛黄解毒片中胆酸﹑猪去氧胆酸总量为0.2174 ~0.721 6 mg/片,不同厂家﹑不同批号的牛黄解毒片所含两者总量差异较大,胆酸与猪去氧胆酸的比值也存在一定的差异。
对60 批牛黄解毒片中所含胆酸﹑猪去氧胆酸及两者之和,通过SPSS 22.0 版软件进行系统聚类分析。采用平方Euclidean 距离法,计算不同样品间的相似度,聚类分析结果见图3。
由图3 可知,60 批牛黄解毒片样品整体聚为一类,考虑到其差异性较大,大致分为四类:一类包括编号为1,2,3,4,5,8,12,14,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26,28,41,42,58 的23 批样品;二类包括编号为6,7,9,10,11,13,15 的7 批样品;三类包括编号为29,30,37,38,39,40,46,47,48,49 的10 批样品;四类包括编号为27,31,32,33,34,35,36,43,44,45,50,51,52,53,54,55,56,57,59,60 的20 批样品。
图3 聚类分析树状图
对60 批牛黄解毒片样品中所含胆酸﹑猪去氧胆酸两者比值,通过SPSS 22.0 版软件进行K平均值聚类分析。采用比值平均值法,考察不同厂家﹑不同批次样品间的差异,K平均值聚类分析结果见表6。
表6 最终丛集中心
60 批牛黄解毒片样品大体分为两类:一类胆酸﹑猪去氧胆酸比值均值为0.79,有38 批样品;二类胆酸﹑猪去氧胆酸比值均值为1.11,有22 批样品;表明这两类样品所用人工牛黄存在一定的差异性。
(1)文献中胆酸﹑猪去氧胆酸含量的测定基本采用薄层扫描法,此方法存在一定的缺点,故在参考相应资料[15–16]后采用HPLC–ELSD 法测定其含量,该方法操作简便,准确度高,可有效控制牛黄解毒片的质量。
(2)不同厂家﹑不同批号的牛黄解毒片中含胆酸及猪去氧胆酸总量存在较大差异,可能与其所用人工牛黄品质及生产工艺有相应关系。
(3)人工牛黄中胆酸与猪去氧胆酸的比值是一定的,每个厂家胆酸与猪去氧胆酸的比值不尽相同,可能合成人工牛黄时胆酸与猪去氧胆酸的投料有一定的差异,影响了人工牛黄的质量,进而影响牛黄解毒片的质量。