苗佳颖,陆伟
(复旦大学药学院,上海 201203)
疫苗能为接种后的个体建立较为持久的免疫保护,它彻底消灭了天花和牛瘟,有效控制了非典型性肺炎、禽流感等死亡率高、又无特效治疗药物的传染病,并逐渐成为肿瘤、代谢性疾病等慢性病最具潜力的防治手段。疫苗成本较低,适合大规模接种,为延长人类平均寿命做出了重大贡献[1]。
传统疫苗包括减毒疫苗、灭活疫苗以及亚单位疫苗,这类疫苗维持了病原体的性状和病原体表面蛋白,能有效地诱导中和抗体产生,但存在毒力恢复或灭活不完全的潜在安全问题。随着疫苗研究的不断深入,通过DNA重组技术制成的基因工程疫苗以其易于取材的便捷性和进一步提升的安全性、有效性而受到青睐,然而其相对较弱的免疫原性仍是一个有待解决的问题。近年来,合成工艺更为简单,诱导免疫反应更加持久的核酸疫苗逐渐成为研究热点。DNA 疫苗、RNA疫苗属于此类疫苗,它们直接将编码某种抗原的外源基因导入体内,经细胞摄取、合成抗原后诱导免疫反应的产生。其中,信使RNA(mRNA)疫苗表达机制更为安全和简单,没有类似DNA疫苗整合到宿主基因组的风险,可以在生物体内自然降解,具有十分广泛的应用前景[2]。
mRNA疫苗以线性质粒DNA(pDNA)或聚合酶链式反应(PCR)扩增的DNA为模板,通过体外转录合成,能够实现精确的抗原表达,在体内能建立良好的耐受性并引起强效的免疫反应。mRNA疫苗的生产无需动物基质或细胞培养,更加简单、快速、低成本[3]。mRNA直接在细胞质中进行翻译而不进入细胞核,不会整合进宿主基因组。mRNA本身具有佐剂作用,可增强免疫应答反应。尤其是在新型冠状病毒肺炎(COVID-19)大流行的当今,mRNA疫苗的研制周期比传统疫苗和基因工程疫苗更短,且序列更易修改,可以更好地应对随时可能变异的病毒株。目前,多项关于新型冠状病毒(SARS-CoV-2)的mRNA疫苗正在研发中。然而mRNA疫苗稳定性较差,易被血清中的RNA水解酶降解,或被单核-巨噬细胞系统吞噬而无法到达靶细胞发挥作用。mRNA相对分子质量较大且带有负电荷,难以通过磷脂双分子层结构穿过细胞膜。因此,需要设计合适的递送系统,以保证mRNA疫苗能顺利进入靶细胞,并有效地释放到细胞质中进行翻译[4]。
病毒载体递送mRNA存在固有的免疫原性风险,有效荷载包装能力有限且生产较为困难。相比较之下,非病毒载体能够有效保护负载的mRNA不受外部环境或核酸酶的影响,其通常免疫原性较低,安全性更高,设计合成相对便捷且易于生产,可重复给药,是用于递送mRNA的理想载体。目前,已有110项国内和248项国外的mRNA疫苗专利技术被报道或公开。表1列出了目前已进入临床试验阶段的mRNA疫苗。本文将针对应用于mRNA疫苗的非病毒载体递送系统进行介绍。
表1 临床试验阶段的mRNA疫苗Table 1 mRNA vaccines under clinical trials
磷脂分子的头部亲水、尾部疏水,其成分与细胞膜类似,具有良好的生物相容性和可延展性。含有阳离子或可电离类脂材料的脂质混合物在水中或酸性环境中形成带正电荷的封闭囊泡,可将带负电荷的mRNA分子包裹其中,保护mRNA免受核酸酶降解,且包封率较高。载有mRNA的脂质载体被细胞摄取后,进入细胞中酸性膜包裹的囊泡结构(内体)。此时,带正电荷的脂质与内体膜上带负电荷的磷脂结合,这种结合扰乱了内体膜结构,诱导膜融合和内体破坏,从而导致被包载的mRNA逃逸进入细胞质,进而到核糖体进行翻译[9]。通过对脂质载体进行修饰,还能增强其稳定性,实现靶向递送。
阳离子脂质体是应用最早的脂质载体。1,2-二油酰基-3-三甲基铵-丙烷(DOTAP)和二油酰磷脂酰乙醇胺(DOPE)是脂质体中常含有的成分。由于阳离子脂质体存在一定的毒性且循环半衰期较短,可能会与带负电荷的胞内或胞外成分非特异性结合,通常要对其进行一定的修饰,以提高mRNA-脂质体复合物的稳定性,减轻毒性并延长作用时间。
Zhang等[10]利用具有跨膜结构和免疫佐剂功能的胆固醇修饰阳离子肽DP7,并对DOTAP脂质体进行修饰,构建了mRNA递送系统DOTAP/DP7-C。该系统能提高向树突状细胞(DC)递送编码个体化新抗原的mRNA的效率,并能增强DC的活性,具有载体和免疫佐剂的双重功能。在动物实验中,DOTAP/DP7-C/LL2新抗原编码mRNA复合物经皮下注射能明显抑制小鼠荷LL2原位肿瘤和皮下肿瘤生长,并刺激抗原特异性淋巴细胞反应的产生。Liu等[11]用甘露糖修饰的脂质/磷酸钙(LCP)纳米粒将编码肿瘤相关抗原MUC1的mRNA递送至淋巴结DC,在三阴性乳腺癌(TNBC)原位模型中评估了携带mRNA的纳米粒免疫后的治疗效果。LCP包含磷酸钙核心和由DOTAP、胆固醇、二硬脂酰磷脂酰乙醇胺-聚乙二醇2000(DSPE-PEG2000)与DSPE-PEG-甘露糖组成的不对称脂质双层,mRNA分子被浓缩并包裹在磷酸钙核心中。亚细胞分布表明,LCP可以有效地转染淋巴结DC,并将负载的mRNA释放到细胞质中,有利于所递送的编码MUC1的mRNA表达。体内研究表明,该疫苗递送系统可以诱导出针对4T1 TNBC细胞的强烈的抗原特异性细胞毒性T淋巴细胞(CTL)反应。
通过结构设计和优化,还能改善阳离子脂质体在DC中的抗原表达或实现靶向定位。Wang等[12]以不同相对分子质量PEG(PEG100、PEG1000和PEG2000)为连接物,合成甘露糖-胆固醇结合物(MPn-CHs),用薄膜分散法制备成DC靶向脂质体(MPn-LPs),并通过简单的自组装制备成携带mRNA的MPn-LPX。摄取研究表明,MP1000-LPX可以通过过度表达DC表面甘露糖受体(CD206)来增强mRNA的表达,它具有体积小、近球形、在血清中稳定性好、细胞毒性小等特点,有望成为mRNA疫苗的DC靶向递送系统。
阳离子纳米乳(CNE)将纳米乳液与阳离子脂质结合使用,具有保护和高效递送核酸的能力。Brito等[13]制成了一种阳离子脂质DOTAP和乳剂佐剂MF59乳化而成的阳离子纳米乳,由含有缓冲液和吐温80的水相与含有山梨醇酐三油酸酯(Span 85)、DOTAP和角鲨烯的油相混合而成。该CNE递送的自扩增mRNA通过招募免疫细胞增强了局部免疫,在肌肉中实现与病毒载体相似的蛋白表达位置与表达量,在多种动物模型中具有良好的耐受性和免疫原性。Bogers等[14]用CNE向恒河猴递送编码C族包膜糖蛋白的自扩增RNA人类免疫缺陷病毒(HIV)疫苗,首次在非人类灵长类动物中证明了用CNE配制的自扩增RNA HIV疫苗是安全的,且具有免疫原性,可引起体液和细胞免疫反应。Samsa等[15]使用CNE递送系统配制了2种委内瑞拉马脑炎病毒(VEEV)自扩增RNA疫苗,分别是携带TC-83的RNA基因组的Vee SAM减毒活疫苗LAV-CNE和递送缺少衣壳基因的TC-83基因组的不可逆减毒Vee SAM疫苗IAV-CNE。实验结果证明,用LAV-CNE免疫的小鼠可产生与TC-83相似的免疫反应,可以100%保护气溶胶VEEV攻击。IAVCNE也具有免疫原性,对VEEV攻击具有明显的保护作用,为开发以CNE为载体递送VEEV等病毒的自扩增RNA疫苗提供了概念验证。Luisi等[16]使用CNE制备的自放大mRNA递送平台开发寨卡病毒(ZIKV)候选疫苗,所制备的疫苗在小鼠和非人类灵长类动物中均能诱导出针对ZIKV的中和抗体反应,其中一种候选疫苗对非人类灵长类动物的ZIKV感染提供了完全保护。
脂质纳米粒(LNPs)通常由可电离脂质、PEG脂质、辅助脂质和胆固醇几个部分组成,其结构如图1所示。带负电荷的mRNA与酸性pH下带正电荷的可电离脂质结合,位于整个LNPs结构的核心。PEG脂质位于LNPs结构的表面,能够延长LNPs的循环半衰期,增强粒子的稳定性。辅助脂质能够支持脂质双层结构并促进粒子与细胞的结合。胆固醇则通常填充于脂质间隙,起到稳定LNPs结构的作用。包载mRNA的LNPs进入人体的生理环境后,可电离脂质变成接近中性。当LNPs被内吞进入靶细胞内体后,由于内体环境呈酸性,可电离脂质重新带有正电荷,可以与带负电荷的内体膜融合,促进纳米粒的内体逃逸,将粒子释放到细胞质中[17]。最后,可电离脂质在近中性的胞浆中释放mRNA,以利于其进一步到核糖体进行翻译(见图2)。LNPs与其他载体相比具有许多优势:合成可控、组成成分容易调整以提高递送效率和降低毒性,可以加入佐剂或免疫细胞靶向配体等免疫增强剂以调节免疫反应[18]。
图1 脂质纳米粒包载mRNA结构示意图Figure 1 Schematic illustration of the structure of mRNA encapsulated LNP
图2 脂质纳米粒递送mRNA入胞及转染过程示意图Figure 2 Schematic illustration of the endocytic pathway of mRNA delivered by LNP and the transfection process
Pardi等[19]将萤火虫荧光素酶mRNA结合到组成为可电离脂质/磷脂酰胆碱/胆固醇/PEG脂质物质的量比为 50∶10∶38.5∶1.5(mol/mol)的 LNPs中,其中mRNA与总脂质质量比为小于0.05(wt/wt),得到直径为小于80 nm的mRNA-LNPs复合物。将制备成的 mRNA-LNPs以 0.005 ~ 0.250 mg · kg-1的剂量通过6种不同途径注射到小鼠中,体内成像检测到了高水平的蛋白质翻译,证明了mRNA-LNPs复合物可以在体内不同时间内产生大量蛋白质。Liang等[20]用可电离脂质/饱和磷脂/胆固醇/PEG脂质/6,9,12-十八碳三稀酸(GLA)物质的量比为50∶9.83∶38.5∶1.5∶0.17(mol/mol)的LNPs包裹了2种修饰的非复制型流感H10血凝素(HA) mRNA疫苗,肌肉或皮内注射恒河猴后,诱导了保护性的HA抑制滴度和H10特异性的CD4+T细胞反应,证明了LNPs递送的mRNA疫苗可以产生强有力的特异性免疫应答。
用于肿瘤免疫治疗的mRNA疫苗递送研究是肿瘤治疗领域的一个热点。Oberli等[21]报道了一种用于递送mRNA疫苗的LNPs制剂,以诱导细胞毒性CD8+T细胞反应。使用该疫苗对DC、巨噬细胞和中性粒细胞进行了转染,并在侵袭性B16F10黑色素瘤模型中测试了该疫苗的有效性。含有编码肿瘤相关抗原gp100和trp2的mRNA的LNP单次免疫后,能够活化CD8+T细胞,诱导获得性免疫杀死黑色素瘤细胞,延长了荷瘤小鼠的总体生存时间,并且该疫苗加入佐剂脂多糖(LPS)可进一步增强免疫应答。
Miao等[22]开发了一个可电离类脂材料的组合库,用以确定能促进体内mRNA传递并提供有效和特异性免疫激活的mRNA递送载体。通过三维多组分反应系统检测发现,表现最好的脂类均具有共同的结构:不饱和脂尾、二氢咪唑接头和环胺头基。这些制剂并非通过激活Toll样受体,而是通过激活细胞内干扰素基因刺激物(STING)途径诱导抗原呈递细胞成熟,从而导致系统细胞因子的有限表达和增强抗肿瘤效果。其中,首选的制剂诱导了强大的免疫反应,并能够抑制黑色素瘤和人乳头状瘤病毒E7肿瘤模型中的肿瘤生长和延长荷瘤小鼠生存期。
此外,LNPs也被广泛应用于递送针对流感病毒、狂犬病病毒、HIV、巨细胞病毒(CMV)等的mRNA疫苗[23]。Lutz等[18]通过实验证明,单次肌肉注射由LNPs递送的编码狂犬病病毒或流感病毒抗原的mRNA疫苗,可以诱导保护性抗体滴度,在长达1年的观察期间,免疫反应可得到增强并保持稳定。Pardi等[24]用LNPs包裹编码2013年ZIKV爆发菌株的前膜和包膜糖蛋白的核苷修饰的mRNA,进行单次低剂量皮内免疫后,在小鼠和非人灵长类动物中引发了有效和持久的中和抗体反应。其中,LNPs的脂质组成为可电离脂质/磷脂酰胆碱/胆固醇/PEG脂质,其物质的量比为50∶10∶38.5∶1.5(mol/mol),mRNA与总脂的质量比为0.05(wt/wt)。注射剂量为30 μg时,可在免疫后2周或5个月保护小鼠免受ZIKV攻击,50 μg的单次免疫则可在5周内保护非人类灵长类动物,表明了核苷修饰的mRNA-LNPs能诱导快速持久的保护性免疫反应。
SARS-CoV-2的出现使应用mRNA疫苗预防传染病成为了研究焦点,LNPs-mRNA在其中得到迅速发展和广泛的应用。2种获得了美国食品和药品管理局(FDA)紧急使用授权的新型冠状病毒肺炎mRNA疫苗均采用LNPs作为载体。其中,辉瑞生物技术公司的BNT162b2,其LNPs载体成分包含胆固醇、2-PEG2000-N,N-二十四烷基乙酰胺、[(4-羟基丁基)氮杂二烷基]双(己烷-6,1-二基)双(2-己基癸酸酯)、二硬脂酰磷脂酰胆碱(DSPC)。Moderna公司的mRNA-1273,其LNPs载体成分包含胆固醇、鞘磷脂-102(SM-102)、二肉豆蔻酰甘油-PEG2000和DSPC。这2种疫苗在Ⅲ期临床试验中的有效率分别高达95%和94.5%,体现了以LNPs为载体的mRNA疫苗的高效性和在预防感染性疾病中的巨大潜力[25]。
与阳离子脂质体类似,带有正电荷的阳离子聚合物也可以与mRNA疫苗通过电荷相互作用形成复合物。相较于生产过程需要自组装、挤压和络合的阳离子脂质体,阳离子聚合物仅需要与mRNA疫苗进行混合,生产工艺较为简单,具有结构可控,功能多样的优点,且稳定性更好[25]。聚乙烯亚胺(PEI) 是早期广泛用于mRNA疫苗递送的聚合物,常对其进行结构优化以提高转染效率。聚酰胺胺(PAMAM)、聚丙烯亚胺(PPI)等树枝状大分子也被用于mRNA疫苗递送。然而,聚合物递送系统的生物相容性、细胞毒性和生物降解性问题需要进一步解决,以提高其安全性、有效性和体内稳定性。通过对这些阳离子聚合物进行修饰并靶向特定细胞,可以减轻细胞毒性,改善体内外释放性能。一些研究也采用聚乳酸(PLA)、聚β-氨基酯(PBAE)、聚乳酸-羟基乙酸(PLGA)等聚酯,或壳聚糖和葡聚糖等天然聚合物衍生物,以获得更好的生物降解性[26-27]。
Karpenko等[28]以聚葡萄糖素-亚精胺结合物(PGS)作为载体,递送编码SARS-CoV-2刺突蛋白受体结合域的mRNA(mRNA-RBD),免疫小鼠后产生了具有中和活性的特异性抗体。Chahal等[29]开发了一种树枝状大分子纳米颗粒疫苗载体用于递送含有编码抗原蛋白的mRNA,该疫苗可由多个表达抗原的复制子组成,能够激发CD8+T细胞和抗体反应,对包括H1N1流感病毒、弓形虫和埃博拉病毒在内的致命性病原体产生保护性免疫。Li等[30]将环糊精(CD)与PEI600或PEI2k偶联,制备了不同CD/PEI比的CD-PEI聚合物(CP)。通过评估淋巴结迁移和免疫应答,分析了CP600、CP2k和PEI25k作为鼻腔内mRNA疫苗载体的递送效果,发现CP2k/mRNA体外转染效率较高,向淋巴结迁移和刺激DC在体内成熟的能力比PEI25k/mRNA更强,并能产生较强的体液免疫和细胞免疫应答,且其局部和全身毒性低于PEI25k/mRNA,证明了CD-PEI2k/mRNA纳米复合物具有向淋巴结高效输送疫苗的潜力。
脂质/聚合物杂化纳米粒(LPHNs)是由脂质壳和聚合物内芯组成的纳米结构,对mRNA的转染效率高达80%。装载mRNA疫苗的LPHNs可以通过细胞屏障,并实现有效的内体释放和高效的蛋白质翻译,具有稳定、持久、可生物降解等优点[31]。Ayad等[32]用DSPC/DOTAP类脂膜(15 mol/85 mol)包裹聚乳酸(PLA)纳米粒,用以递送mRNA疫苗,在体外转染HeLa和DC2.4细胞的实验中获得了比单纯脂质体更高的转染效率,说明在脂质膜内包裹固体聚合物颗粒核心可以使载体与mRNA的结合更牢固,使它们在递送过程中不容易丢失mRNA。
Yasar等[33]制备并优化了PLGA包覆阳离子脂质1,2-双十八烯氧基-3-甲基铵丙烷的纳米粒子(LPN),通过实时细胞摄取和报告基因表达的实时细胞成像,评价了与mRNA复合的该脂质-聚合物杂化系统转染DC的效率。与一种早期开发的基于聚合物的递送系统壳聚糖-PLGA纳米粒进行比较,当2种纳米粒的细胞摄取和毒性相当时,LPN携带的mRNA蛋白质表达效率(约80%)显著高于壳聚糖-PLGA纳米粒(仅为约5%)。Siewert等[34]将不同比例的阳离子脂质DOTAP和鱼精蛋白组装起来,制备成杂化纳米粒作为mRNA的载体。其中,鱼精蛋白含有大量的阳离子L-精氨酸,能结合mRNA并保护其免受核酸酶降解,DOTAP是用于mRNA细胞转染的脂质。与单独使用脂质/mRNA和聚合物/mRNA颗粒相比,使用不同的组装路线、采用不同的DOTAP/鱼精蛋白比例的杂化系统具有更高的转染率。通过荧光素酶活性测定法和小鼠体内生物发光显像法对制剂的结构特征和生物活性进行研究,表明该制剂具有较高的生物活性。Le Moignic等[35]用α-D-三吡喃甘露糖苷(triMN)修饰脂质-聚合物-RNA复合物(LPR),将其在小鼠皮内注射2 d后,triMN-LPR诱导了强烈的局部炎症反应,随后在注射部位周围的引流淋巴结中募集和激活了DC。编码E7抗原的mRNA triMN-LPR免疫小鼠后,可检测到大量的E7特异性T细胞,证明了triMN-LPR能引起有效的刺激性免疫反应。
用于核酸递送的多肽因包含赖氨酸和精氨酸残基而带正电荷,称为阳离子细胞穿膜肽(CPPs),能与带负电荷的mRNA通过静电作用结合形成纳米复合物,并有效被细胞摄取。该纳米复合物被细胞摄取的可能机制为CPPs促进细胞表面带负电荷的糖胺聚糖的聚集,并触发微吞胞作用。CPPs具有较低的电荷密度和优异的穿越细胞膜能力,已被广泛用于递送药物、蛋白质、pDNA和siRNA,在递送mRNA方面也有许多探索性研究被报道。但目前只有少数多肽有效,需要开发新的有效化合物以扩大肽递送系统的材料库[36-37]。
Bell等[38]报道了截断鱼精蛋白与名为Xentry的短CPP融合后,可以将编码报告基因的mRNAs转染到人类细胞中。Udhayakumar等[37]利用一种含有两亲性RALA基序的细胞穿透肽将抗原编码mRNA递送至免疫细胞。RALA一端带正电的精氨酸残基,另一端带中性亮氨酸残基,可以将mRNA浓缩成纳米复合物,并显示酸性pH依赖的膜破坏特性。RALA-mRNA纳米复合物可使mRNA从内体逃逸,进而在DC胞浆内表达,并可以促进体内抗原特异性T细胞增殖。RALA介导的mRNA疫苗免疫原性高且易于生产,其效力优于由阳离子脂质体DOTAP和融合脂质DOPE组成的mRNA制剂。缺乏RALA基序的富含精氨酸的多肽与mRNA复合能力减弱,不具备体外转染DC和体内引起T细胞免疫的能力。Coolen等[39]用两亲性阳离子肽(RALA、LAH4或 LAH4-L1)与mRNA形成复合物,并将该复合物吸附到聚乳酸纳米颗粒(PLA-NPs)上,形成的PLA-NP/阳离子肽/mRNA 纳米复合物可以通过吞噬作用和网格蛋白依赖性内吞作用被DC摄取,并在体外诱导DC中目的蛋白的高表达。
除上述载体外,也有一些新型材料被用于mRNA疫苗递送研究,如无机纳米材料、水凝胶、病毒样颗粒等。与传统材料相比,这些新型材料在提升mRNA疫苗翻译的效率和强度、体内靶向定位、长效缓释等方面具有更大的优势。Zhang等[40]开发了一种基于介孔二氧化硅纳米粒的mRNA(MSN-mRNA)皮下给药系统。该系统由裸mRNA和咪唑-羟吲哚RNA激活蛋白激酶(PKR)抑制剂C16的皮下储库组成,在体外和体内具有很强的促进mRNA翻译的能力。皮下注射MSN-mRNA可显著提高裸露mRNA在体内的翻译和表达动力学。将编码卵清蛋白和粒细胞巨噬细胞集落刺激因子的裸露mRNA和C16@MSNs组成的MSN-mRNA疫苗配方应用于小鼠T淋巴瘤E.G7-OVA模型,可以产生很强的抑瘤作用。Yin等[41]报道了一种由氧化石墨烯(GO)和PEI组成的可注射水凝胶,用于包载编码模式抗原卵清蛋白的mRNA(mOVA)和佐剂(R848)。该水凝胶不仅可以包裹和保护mRNA不被降解,还具有淋巴结靶向能力。这种可转化水凝胶能显著增加抗原特异性CD8+T细胞的数量,从而抑制肿瘤生长。同时,该制剂可以在血清中产生抗原特异性抗体,从而预防肿瘤转移的发生。凝胶中的mOVA在体内注射30 d后仍可检测到,一次注射即可有效抑制肿瘤生长,说明该水凝胶是一种长期缓释的mRNA疫苗递送系统。Li等[42]用MS2噬菌体衣壳包装mRNA疫苗,制备成了重组噬菌体MS2病毒样颗粒(VLP),用于前列腺癌(PCA)的免疫治疗。VLP中包装的mRNA在被巨噬细胞吞噬12 h后即可翻译成蛋白质,能够克服自身耐受性,激活DC,诱导较强的体液和细胞免疫应答,尤其是CTL反应,可以在不上调CD4+调节性T细胞的情况下平衡Ⅰ型辅助性T细胞/Ⅱ型辅助性T细胞(Th1/Th2)应答,可完全保护小鼠免受PCA的侵袭,具有强大的肿瘤抑制作用。
虽然已有许多研究报道用于mRNA疫苗递送的脂质、聚合物、肽类等载体,但这些材料仍然存在一些问题和挑战。如一些阳离子脂质体或聚合物与mRNA的结合过于紧密,导致mRNA释放困难。LNPs中脂质的不饱和度、各组分的比例等需要更加精确的设计以提升递送效率。PEI等聚合物大分子的结构复杂,聚合度较难控制,组成高分子链单元的相对分子质量和排列变异性大,不同合成批次之间差异较大。一些聚合物在体内具有较大毒性。递送载体的稳定性和包封率也需要进一步提升。另一方面,人和动物模型的免疫系统存在差异,尽管有些材料在动物研究中能引起有效的免疫反应,但这些材料能否在人体内获得与动物体内相同的免疫效果,是否会出现新的毒副作用仍有待考察。
mRNA疫苗递送要求以更全面的研究思路设计和开发新型递送载体材料和递送系统。要对载体介导的递送过程进行详细研究,掌握规律,设计和优化以增强内体逃逸,提高转染效率为目的的新载体,促进保护性免疫反应。掌握疫苗靶向递送机制和规律,设计和优化载体表面修饰方法,提高mRNA的靶向递送效率,增强免疫效力,减轻毒副作用。根据有效荷载的不同对mRNA和递送材料的组装进行优化,以高度可控且可重复性的方式对组分进行装载。对比不同的递送技术平台,为设计满足不同mRNA疫苗免疫需求的最佳递送载体以及预测体内免疫应答提供有价值的指导。最后,需要在人体试验中综合评价给药途径、载药剂量、给药频率等以确定免疫反应的最佳参数,并在保证疫苗效力的同时优化载体的安全性[36]。
mRNA疫苗是一种治疗和预防传染病、防治癌症的新型疫苗。mRNA疫苗需要在载体的帮助下有效地发挥作用。mRNA疫苗递送系统需要达到以下几个要求:包埋效率高且能保护mRNA不被水解酶降解;能将疫苗递送至靶细胞,并高效地释放mRNA至细胞质进行翻译;毒性小,不使机体产生严重炎症反应或毒副作用。以脂质纳米粒为代表的非病毒载体递送系统,可以有效负载mRNA并转染细胞,表达特异性抗体,激活机体免疫反应,在应对COVID-19感染中显示出良好的临床效果。同时,通过紧急授权使用后的临床结果也证实了以脂质纳米粒作为载体递送mRNA疫苗具有较高的安全性。但mRNA疫苗极其不稳定,在室温下很快降解失效,需要超低温保存,储存条件苛刻。因此,mRNA疫苗的长期储存和长距离运输的问题仍有待解决。总之,研制能够靶向定位、稳定性强、毒性小、易于储存的新型非病毒载体,是未来mRNA疫苗递送研究的目标,同时也具有很好的临床转化的应用价值。