LncRNA ROR 和TGF-β1 在乳腺癌患者中的表达及临床意义

2022-03-23 02:58张玉娟叶惠荣袁惠玲王永霞
中国医药导报 2022年5期
关键词:受试者标志物乳腺癌

张玉娟 叶惠荣 袁惠玲 王永霞

广东省东莞市人民医院乳腺科,广东东莞 523000

不同分子标记的乳腺癌亚型对治疗的反应和预后均存在较大差异,如何早期诊断和预测预后是乳腺癌研究的热点问题[1-2]。长链非编码RNA(long noncoding RNA,LncRNA)是长度大于200 个核苷酸的RNA 分子,具有结合靶基因启动子区调控基因转录、介导染色质重构及结合mRNA 抑制翻译过程等生物学作用[3-5]。LncRNA 参与包括癌变在内的多种疾病状态,在肺癌、肝癌、胃癌、乳腺癌等恶性肿瘤中异常表达,与恶性肿瘤发生发展密切相关[6-8]。长链非编码RNA ROR(long noncoding RNA ROR,LncRNA ROR)是新近发现的LncRNA 分子,具有调节多能干细胞自我更新和分化的功能,子宫内膜癌、肝癌等多种肿瘤中发现LncRNA ROR 表达异常[9]。基础研究显示,LncRNA ROR/转化生长因子-β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)途径激活促进裸鼠乳腺癌细胞增殖和侵袭[10]。研究显示,膀胱癌等肿瘤LncRNA ROR和TGF-β1 水平与血清表达均呈明显正相关,血清LncRNA ROR 和TGF-β1 的价值逐渐引起临床医师重视,但血清LncRNA ROR 和TGF-β1 水平与乳腺癌病理特征及预后因素的相关性鲜见报道[11]。本研究通过分析乳腺癌和健康女性血清LncRNA ROR与TGF-β1水平,分析两种标志物与乳腺癌病理特征的关系。

1 资料与方法

1.1 一般资料

选择2018 年1 月至2019 年6 月在广东省东莞市人民医院(以下简称“我院”)经病理学确诊的73 例乳腺癌患者作为研究组(A 组),其中中高分化47 例,低分化26 例;Ⅰ期24 例,Ⅱ期23 例,Ⅲ期26 例;淋巴结转移37 例,无淋巴结转移36 例;表型:人表皮生长因子受体-2(human epidermal growth factor receptor-2,HER-2)阳性14 例,三阴性18 例,Luminal 41 例。纳入标准:①经病理或组织学检查确诊为乳腺癌;②年龄≥20 岁,初次确诊为乳腺癌,血清LncRNA ROR 和TGF-β1 检查前未接受放疗、化疗、免疫治疗等抗肿瘤治疗;③患者对本研究知情并签署知情同意书。排除标准:①合并严重心肝肾等功能不全;②合并其他部位原发性恶性肿瘤;③合并自身免疫性或急慢性传染病;④妊娠或哺乳期妇女;⑤精神疾病或严重认知功能障碍。随机抽取同期在我院就诊的经病理证实的37 例乳腺良性病变(包括乳腺腺病21 例,乳腺纤维腺瘤8 例,乳腺导管内乳头状瘤8 例)为对照1 组(B 组),随机抽取同期健康体检的37 名健康受试者作为对照2 组(C 组)。A、B、C 组受试者一般资料比较,差异无统计学意义(P >0.05),具有可比性。见表1。

表1 三组一般资料比较

1.2 研究方法

受试者入组后抽取空腹静脉血,采用实时荧光定量逆转录聚合酶链反应(real time fluorescence quantitative reverse transcription polymerase chain reaction,qRT-PCR)法检测血清LncRNA ROR 水平,首先采用Triol 法(试剂盒购自Biosharp 公司,货号:20180911)提取血浆中总RNA,鉴别浓度和纯度后,以1 μg RNA为模板反转录为互补DNA(complementary deoxyribonu cleic acid,cDNA),严格按照TaKaRa 反转录试剂盒(购自红荣微再上海生物工程技术有限公司,货号:20180821)说明实施。qRT-PCR 反应体系为cDNA 0.2 μl,2×SYBR 5 μl,ROXⅡ0.2 μl,正反向引物各0.5 μl,RNA-free 水3.6 μl,总反应体系体积10 μl。反应条件为95℃预变性5 min、95℃变性30 s、62℃退火30 s、70℃延伸30 s,共40 个循环。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)为内参,采用2-ΔΔCt法对检测结果进行定量分析。ROR 的正向引物序列:5’-CTCCAGCTATGCAGACCACTC-3’,反向引物:5’-GTGACGCCTGACCTGTTGAC-3’;GAPDH 的正向引物序列:5’-AATGGACAACTGGTCGTGGAC-3’,反向引物:5’-CCCTCCAGGGGATCTGTTTG-3’。采用酶联免疫吸附试验检测血清TGF-β1 水平,采用电化学发光法测定受试者肿瘤标志物水平,肿瘤标志物包括糖类抗原153(carbohy drate antigen 153,CA153)和癌胚抗原(carcinoembry onic antigen,CEA),试剂盒购自武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司,货号:20181016(TGF-β1)、20180721(CA153)和20181204(CEA),严格按照说明书操作,正常参考值范围:CEA≤5 ng/L,CA153 ≤25 U/ml。

1.3 观察指标

观察三组受试者血清LncRNA ROR 和TGF-β1水平和LncRNA ROR与TGF-β1 诊断乳腺癌的临床价值;观察A 组年龄(≤50 岁、>50 岁)、病理学分级(中、高分化,低分化)、临床分期(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期)、淋巴结转移(是、否)、表型(HER-2、三阴性、Luminal)等不同预后因素患者LncRNA ROR 和TGF-β1 水平的差别。

1.4 统计学方法

采用SPSS 23.0 软件对所得数据进行统计学分析,计量资料采用均数±标准差()表示,比较采用t检验;多组间比较采用单因素方差分析,进一步两两比较采用LSD-t 法,计数资料采用例数或百分率表示,比较采用χ2检验。相关性分析采用Spearman 相关分析,采用受试者工作特征曲线(receiver operator characteristic curve,ROC 曲线)计算LncRNA-ROR 和TGF-β1 预测乳腺癌的价值,曲线下面积(area under the curve,AUC)比较采用Z 检验。以P <0.05 为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 三组受试者LncRNA ROR 和TGF-β1 水平比较

A 组LncRNA ROR 和TGF-β1 水平高于B 组和C 组,差异有统计学意义(P <0.05);B 组和C 组LncRNA ROR 和TGF-β1 水平比较,差异无统计学意义(P >0.05)。见表2。

表2 三组受试者LncRNA ROR 和TGF-β1 水平比较()

表2 三组受试者LncRNA ROR 和TGF-β1 水平比较()

注与B 组比较,aP <0.05;与C 组比较,bP <0.05。LncRNA ROR:长链非编码RNA ROR;TGF-β1:转化生长因子-β1

2.2 LncRNA ROR与TGF-β1 的相关性

Spearman 相关性分析显示,LncRNA ROR与TGFβ1 呈正相关(r=0.897,P <0.05)。

2.3 三组受试者肿瘤标志物水平比较

A 组CA153、CEA 水平高于B 组和C 组,差异有统计学意义(P <0.05);B 组CA153 和CEA 水平高于C 组,差异有统计学意义(P <0.05)。见表3。

表3 受试者肿瘤标志物水平比较()

表3 受试者肿瘤标志物水平比较()

注与B 组比较,aP <0.05;与C 组比较,bP <0.05。CA153:糖类抗原153;CEA:癌胚抗原

2.4 不同指标预测乳腺癌的临床价值比较

LncRNA ROR 和TGF-β1 预测乳腺癌的AUC 比较,差异无统计学意义(Z=0.536,P=0.592),LncRNA ROR 预测乳腺癌的AUC 高于CA153 和CEA,差异有统计学意义(Z=3.158、3.152,P=0.002、0.000);TGF-β1预测乳腺癌的AUC 高于CA153 和CEA,差异有统计学意义(Z=2.372、2.594,P=0.018、0.010)。见表4、图1A。以表4 中截断值作为判定阳性依据,LncRNA ROR:阳性>1.45,阴性:≤1.45;TGF-β1 阳性:>17.84 μg/ml,阴性:≤17.84 μg/ml。LncRNAROR 和TGF-β1 均阳性预测乳腺癌的特异性为98.65%,高于二者单一预测的特异性值;LncRNA ROR 阳性或TGF-β1 阳性预测乳腺癌的灵敏度为100%,高于二者单一预测的灵敏度值。见表4、图1B。

图1 不同指标预测乳腺癌的ROC 曲线

表4 不同指标预测乳腺癌的临床价值比较

2.5 乳腺癌患者不同临床特征LncRNA ROR 和TGFβ1 表达水平比较

不同年龄、分化程度、表型乳腺癌患者血清LncRNA ROR 和TGF-β1 水平比较,差异无统计学意义(P >0.05);不同临床肿瘤分期乳腺癌患者LncRNA ROR 和TGF-β1 水平比较,差异有统计学意义(P <0.05);淋巴结转移乳腺癌患者血清LncRNA ROR 和TGF-β1水平均高于无淋巴结转移患者,差异有统计学意义(P <0.05)。见表5。

表5 乳腺癌患者不同临床特征LncRNA ROR和TGF-β1 表达水平比较()

表5 乳腺癌患者不同临床特征LncRNA ROR和TGF-β1 表达水平比较()

注 LncRNA ROR:长链非编码RNA ROR;TGF-β1:转化生长因子-β1;HER-2:人表皮生长因子受体-2

3 讨论

多项研究[12-14]显示,LncRNA 通过与转录因子、染色质修饰因子或核不均一核糖核蛋白结合调节基因表达,部分LncRNA 介导的功能破坏失调在肿瘤发生发展中发挥关键作用,LncRNA 在肿瘤患者诊断和预后评估方面具有潜在应用价值。LncRNA ROR 长2591 nts,又称为LincRNA-ST8SIA3,位于18q21.31,是p53 对DNA 损伤反应的强负性调节因子,其过度表达可导致miRNA与相应基因之间的负调控,与上皮细胞-间充质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)、肿瘤生长、转移、侵袭和化疗耐药相关[15]。

近年来的研究[16-21]显示,LncRNA ROR与胃癌、胆囊癌、非小细胞肺癌、肝细胞癌、胰腺导管腺癌等多种癌症发生相关,上述肿瘤组织和LncRNA ROR 表达高于正常组织,LncRNA ROR 表达升高的程度与肿瘤细胞侵袭、迁移和增殖呈正相关,但其影响肿瘤细胞生长、增殖、侵袭等生物学行为的机制尚未完全阐明。对乳腺癌来说,细胞侵袭和转移是导致预后较差、病死率高的重要原因,而EMT 是这个过程的重要环节[22]。LncRNA ROR 是EMT 的重要阳性调节因子,体外研究显示,LncRNA ROR 上调促进乳腺癌细胞的迁移和侵袭,体内研究则可促进免疫缺陷小鼠的肿瘤转移[23]。TGF-β1 是诱导EMT 的重要诱导因子,可通过特异性识别下游细胞信使因子Smad2/3,使其磷酸化并与Smad4 形成寡聚体,并在细胞核内与基因启动子结合,促使靶基因转录[24]。研究显示,TGF-β1 可通过诱导EMT 促进包括乳腺癌在内的多种肿瘤转移,在多种肿瘤组织中呈高表达[25]。Hou 等[26]研究显示,LncRNA ROR 过度表达可通过影响TGF-β1 信号通路活性促进乳腺癌细胞增殖、侵袭及裸鼠肿瘤生长。本研究结果显示,在乳腺癌患血清中表现为LncRNA ROR 和TGF-β1 异常高表达,与Hou 等[26]研究中LncRNA ROR 和TGF-β1 的研究结果一致。本研究结果显示LncRNA ROR 和TGF-β1 预测乳腺癌的AUC 高于CA153 和CEA,提示LncRNA ROR 和TGF-β1 可能是乳腺癌潜在的生物标志物,鉴于本研究病例数有限,LncRNA ROR 和TGF-β1 和传统肿瘤标志物CA153和CEA 预测乳腺癌的临床价值差异尚需要进一步纳入更多病例进行论证。二者联合检测的结果显示,LncRNA ROR 和TGF-β1 均阳性作为预测因子,可提高特异性,有助于减少假阳性率,LncRNA ROR 和TGF-β1 之一阳性作为预测因子,可提高灵敏度,有助于减少假阴性率,结果提示,LncRNA ROR 和TGF-β1可能是乳腺癌潜在的生物标志物,二者不同联合方式有助于乳腺癌的确诊和排除。

临床研究[27]显示,TGF-β1与乳腺癌患者肿瘤分期相关,临床分期Ⅲ期和淋巴结转移的乳腺癌组织中TGF-β1 水平显著升高。本研究结果同样显示,不同临床肿瘤分期增加和是否淋巴结转移的乳腺癌患者之间LncRNA ROR 和TGF-β1 比较,差异有统计学意义(P <0.05),这与既往研究[27]中TGF-β1 促进乳腺癌发展及淋巴结转移的研究一致。本研究结果显示,患者血清LncRNA ROR 和TGF-β1 表达与患者年龄、肿瘤分化程度等无关,与既往研究一致。HER2 是一种185 kD 的糖蛋白,20%~30%初诊浸润性乳腺癌显示HER2 阳性[28-29]。Merry 等[30]曾用HER2阳性乳腺癌细胞体外培养研究LncRNA与HER2 阳性乳腺癌之间的关系,该研究发现仅三种LncRNA(linc-STARD6-2、linc-GJA1-2 和linc-SLC39A10-10)表达与HER2 表达相关,不包括LncRNA ROR。Luo 等[31]曾对乳腺癌不同表现LncRNA 功能多态性进行研究,结果显示,LncRNA 功能多态性与雌激素受体、HER-2表达不存在相关性。本研究未观察到LncRNA ROR 和TGF-β1与乳腺癌表现型的相关性,与既往研究一致。

综上所述,本研究结果显示,血清LncRNA ROR和TGF-β1 可能是乳腺癌潜在的生物标志物,患者血清LncRNA ROR 和TGF-β1 表达与临床肿瘤分期和淋巴结转移相关,对预后判定具有一定参考价值。

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