张 劲,明 媚
(鄂东医疗集团中心医院, 湖北黄石 435000)
增生性糖尿病视网膜病变(proliferative diabetic retinopathy,PDR) 是高血糖介导的视网膜病理改变,是糖尿病患者视力损害的主要原因[1]。我国糖尿病患者中PDR 约占2.8%,发生视力损害的DR 占4.0%~6.0%[2]。视网膜新生血管形成是PDR 的主要病理特征,血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是参与视网膜新生血管众多促血管生成因子中与PDR 关系最为密切的细胞因子之一[3]。现代研究显示PDR 是一种慢性低度炎症反应过程[4],长期高血糖状态下的视网膜慢性炎症可导致其微血管系统功能失调[5],导致新血管形成和纤维改变[6]。炎症细胞因子与VEGF 在PDR 发病机制中是否存在关联尚不明确,VEGF 在外周血浆和房水中与眼内表达差异尚不清楚,炎性细胞因子在血浆中研究较多,在房水和眼内表达尚不清楚。鉴于此,本研究拟通过比较PDR 患者玻璃体、房水、血浆中VEGF,白细胞介素6(interleukin-6,IL-6),白细胞介素8(interleukin-8,IL-8)和肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)变化,探讨VEGF与IL-6,IL-8,TNF-α 的相关性,以进一步阐述PDR 发病机制,为临床治疗提供新的思路和方向。
1.1 研究对象 选择2016年5月~2019年6月我院眼科收治的76 例行玻璃体切割治疗的PDR患者(PDR 组),纳入标准:①2017年版《中国2 型糖尿病防治指南》[7];②单侧眼病变,符合2002年国际糖尿病视网膜病变临床分期标准[8];③无糖尿病肾病、糖尿病足等其它糖尿病并发症。排除标准:①1 型糖尿病或并发糖尿病酮症酸中毒,高渗性非酮症性糖尿病昏迷,低血糖昏迷等严重并发症;②既往眼部手术史,眼内注射抗VEGF制剂者;③感染性角膜炎、急性虹膜睫状体炎、前房积脓等眼部感染或全身感染;④并发白内障,黄斑水肿、青光眼等其它眼科疾病者。其中男性51 例,51 眼,女性25 例,25 眼,年龄53~72 岁,平均年龄62.35±4.52 岁,糖尿病病程9~17年,平均13.31±2.26年;PDR 病变程度:Ⅲ期24 例,Ⅳ期38 例,Ⅴ期14 例。同期于我院眼科就诊的42 例行超声乳化白内障吸除术治疗的白内障患者(对照组),均排除其它眼部疾病和全身系统性疾病,男性29 例,29 眼,女性13 例,13 眼,年龄55~75 岁,平均年龄62.91±4.67 岁。两组年龄、性别、患眼数比较差异无统计学意义(P>0.05),本研究获得我院伦理会批准,患者及其家属均知情同意签署同意书。
1.2 仪器与试剂 TDZ4-WS 低速自动平衡离心机购自长沙湘智离心机仪器有限公司,超低温冰箱购自Thermo Fisher 公司。BIOBASE2000 意大利全自动酶免分析仪,试剂盒购自美国Epitope Diagnostics 公司。
1.3 方法 标本采集:PDR 患者均采集血浆、房水和玻璃体标本,对照组均采集血浆和房水标本。采集清晨空腹12h 以上静脉血3ml 注入抗凝试管,4℃ 3 000r/min 离心15min( 离心半径10cm),取血浆-80℃保存,48h 内完成检测。房水采集方法:开睑,常规消毒结膜囊,生理盐水冲洗后无菌纱布拭干,于眼球切口前采用1ml无菌注射器抽取约0.15ml 房水,注入无菌试管中-80℃保存待检。玻璃体标本采集方法:玻璃体切割术中,在切割开口处采用1ml 无菌注射器抽取约0.8ml 玻璃体,注入无菌试管中-80℃保存待检。酶联免疫吸附试验测定VEGF,IL-6,IL-8 和TNF-α 水平。
1.4 统计学分析 SPSS 25.0 进行数据分析,Kolmogorov-Smirnov,levene 法 检 验VEGF,IL-6,IL-8 和TNF-α 等计量资料符合正态分布,具备方差齐性,以(±s)表示,玻璃体、房水、血浆中变量比较采用单因素方差分析,两两比较采用LSD-t检验,PDR 组和对照组比较采用独立样本t检验。性别、患眼分布以率(%)表示,采用χ2检验。Pearson 相关分析PDR 患者玻璃体、房水、血浆VEGF 与L-6,IL-8,TNF-α 的相关性,所有统计均采用双侧检验,检验水准α=0.05。
2.1 PDR 组和对照组血浆房水VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平比较 见表1。PDR 组血浆VEGF,IL-6,IL-8 和TNF-α 水平均高于对照组,差异有统计学意义(均P<0.05)。PDR 组房水中VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平均高于对照组,差异具有统计学意义(均P<0.05)。
表1 PDR 组和对照组房水VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平比较(±s)
表1 PDR 组和对照组房水VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平比较(±s)
项 目血浆tP房水tP PDR 组(n=76) 对照组(n=42)PDR 组(n=76) 对照组(n=42)VEGF(pg/ml)53.51±10.6215.62±3.5122.4180.000332.16±26.3536.23±6.5971.4330.000 IL-6(pg/ml)125.64±15.3429.65±8.5737.4090.000295.25±21.4392.35±15.0854.3290.000 IL-8(pg/ml)102.35±11.3521.35±6.2542.7540.000261.35±25.4985.62±13.2641.6200.000 TNF-α(ng/ml)12.65±3.264.52±0.6515.9590.00021.26±4.2616.35±5.415.4350.000
2.2 PDR 患者自身玻璃体、房水和血浆VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平比较 见表2。PDR 患者自身玻璃体、房水和血浆VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平两两比较差异均有统计学意义(均P<0.05)。PDR 患者玻璃体VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平高于房水和血浆,差异有统计学意义(P<0.05),房水VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平高于血浆,差异有统计学意义(P<0.05)。
表2 PDR 患者自身玻璃体、房水和血浆中VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平比较(n=76,±s)
表2 PDR 患者自身玻璃体、房水和血浆中VEGF,IL-6,IL-8,TNF-α 水平比较(n=76,±s)
项 目玻璃体房水血浆FP VEGF(pg/ml)695.32±43.65332.16±26.3553.51±10.6246.3590.000 IL-6(pg/ml)362.51±25.34295.25±21.43125.64±15.3458.2650.000 IL-8(pg/ml)395.26±34.16261.35±25.49102.35±11.3547.2650.000 TNF-α(ng/ml)32.65±6.5921.26±4.2612.65±3.2639.5620.000
2.3 PDR 患者玻璃体、房水和血浆VEGF 与IL-6,IL-8,TNF-α 的相关性 PDR 患者玻璃体中VEGF水平与IL-6,IL-8,TNF-α呈正相关(r=0.841,0.800,0.787,均P=0.000),见图1。PDR 患者房水中VEGF 水平与IL-6,IL-8,TNF-α 无明显相关性(r=0.461,0.565,0.439,均P=0.000),见图2。PDR 患者血浆中VEGF 水平与IL-6,IL-8,TNF-α无关(r=0.218,0.131,0.210,P=0.058,0.258,0.069),见图3。
图1 PDR 患者玻璃体中VEGF 水平与IL-6,IL-8,TNF-α 散点图
图2 PDR 患者房水中VEGF 水平与IL-6,IL-8,TNF-α 散点图
图3 PDR 患者血浆中VEGF 水平与IL-6,IL-8,TNF-α 散点图
PDR 是糖尿病常见的不可逆的致盲性疾病,视网膜微血管病变是其主要病理特征,视网膜病变经历了早期毛细血管内皮功能破坏、基底膜增厚、微血管瘤形成、血视网膜屏障破坏到晚期的视网膜缺血水肿、纤维增生以及新生血管形成[9]。新生血管排列紊乱、血管壁不完整脆性大、易渗漏导致视网膜水肿、新生血管形成是PDR 视力丧失的主要原因[10]。视网膜新生血管的形成是一个多因素参与的复杂过程,其发生机制尚不十分明确,近年来研究发现炎性反应参与视网膜毛细血管损伤、炎症因子与PDR 发生发展存在一定相关性,炎性细胞因子可能为PDR 诊断、病情评估、治疗提供关键线索[11-12]。
VEGF 是最强的促内皮细胞增殖和血管生成因子,正常人视网膜色素上皮细胞低度表达VEGF,VEGF 对维持视网膜血管系统稳定性和正常功能具有重要作用。在高血糖刺激下VEGF 可通过与其它细胞因子相互作用、破坏血-视网膜屏障、促使新生血管形成等多种途径参与视网膜病变[13]。本研究PDR 组玻璃体、房水、血浆中VEGF 水平明显高于对照组,在血浆、房水和玻璃体中VEGF 水平呈增高趋势,与何香莲[14]报道结果一致,说明PDR 患者存在血-视网膜屏障破坏,血浆VEGF 不能作为PDR 眼内新生血管形成的监测指标。VEGF 在血浆、房水、玻璃体水平差异原因为玻璃体是PDR 视网膜病理事件的主要部位,玻璃体中VEGF 由视网膜色素上皮细胞在缺血缺氧刺激下直接分泌,VEGF 通过与受体结合破坏血-视网膜屏障,释放入玻璃体。玻璃体中VEGF 通过房水扩散进入房水,导致房水VEGF 增高。血浆中VEGF 增高可能与高血糖刺激下机体广泛组织缺氧导致VEGF 产生增多有关。
本研究观察PDR 组玻璃体、血浆和房水中IL-6,IL-8,TNF-α 水平均高于对照组,说明炎性细胞因子参与PDR 发病过程。IL-6 是前炎性细胞因子,高血糖刺激下IL-6 水平明显升高,通过诱导T细胞、PDR 免疫调节过程[15]。临床报道同样显示糖尿病视网膜病变患者IL-6 表达普遍偏高,而PDR患者IL-6 表达与非PDR 患者相比更高[16]。IL-8 参与糖尿病视网膜毛细血管损伤,PDR 患者血清IL-8水平明显升高,PDR 患者玻璃体IL-8 水平高于视网膜前膜、黄斑裂孔、葡萄膜炎患者[17]。TNF-α 可诱导视网膜色素上皮细胞和血管内皮细胞连接,破坏血-视网膜屏障,促使视网膜从非增殖状态向新生血管转变、加重视力损害[18]。本研究相关性分析PDR 患者玻璃体中IL-6,IL-8,TNF-α 水平均与VEGF 水平呈正相关性,提示IL-6,IL-8 和TNF-α可能在PDR 视网膜新生血管形成方面发挥促进作用。IL-6 在缺血刺激下由视网膜、血管内皮细胞分泌,并促使其它炎性因子如IL-8 生成,IL-6 也可直接诱导VEGF 产生,通过VEGF 促使新生血管形成。VEGF 表达降低时可诱发IL-6 表达,进而加重炎性反应,形成恶性循环,加剧PDR 病情[2]。IL-8 能刺激成纤维细胞、单核细胞产生VEGF,且可不依赖VEGF 促进脉络膜新生血管形成[19]。TNF-α 表达增加可引起视网膜通透性增高,刺激血管内皮细胞分泌VEGF,诱导血管外基质和内皮细胞增殖,形成新生血管[20]。可见炎性细胞因子与VEGF 在PDR 发病、发展过程中起到重要作用,视网膜局部炎性反应刺激VEGF 产生,促使视网膜新生血管形成是PDR 的主要发病机制之一。本研究相关性分析显示房水中、血浆中IL-6,IL-8 和TNF-α 水平与VEGF 水平无关,说明患眼局部炎性反应和视网膜新生血管形成是PDR 的主要病理事件发生场所,检测血浆和房水中IL-6,IL-8,TNF-α 和VEGF 水平尚不能有效反映PDR 病变情况。
综上,VEGF,IL-6,IL-8 和TNF-α 均参与PDR视网膜新生血管形成过程,IL-6,IL-8 和TNF-α 可能诱导视网膜细胞VEGF 表达,发挥刺激视网膜新生血管生成作用。VEGF,IL-6,IL-8 和TNF-α 相互作用促进新生血管形成可能主要局限于眼部,仅检测外周血浆和房水不能有效评估PDR 病情。鉴于IL-6,IL-8 和TNF-α 在PDR 病情发展中的作用,抑制IL-6,IL-8 和TNF-α 水平可能有助于抑制VEGF 表达,为PDR 治疗提供新靶点和方向。