张 圆,孙玉娣,石蓓佳,陆益红*
1 江苏省食品药品监督检验研究院 生物技术药品检验一室,南京 210019;2 中国药科大学 药学院,南京 210009
云芝胞内糖肽是运用现代生物工程技术,从杂色云芝菌(Polystictus versicolor(L).Fr.)经深层培养,由菌体提取获得的糖肽类物质[1]。
核碱(Nucleobase)是指一类含氮碱基,是在DNA 和RNA 中起配对作用的部分,包括嘌呤碱和嘧啶碱。核苷(Nucleoside)是核碱与核糖或脱氧核糖缩合而成,是核酸和核苷酸的主要组成成分,参与RNA和DNA 组成。核苷和核碱的组成对于评价真菌类药材及其提取物具有重要的意义。核苷和核碱类成分是生物细胞的基本组成元素,参与DNA 代谢过程、维持生命活动,具有抗肿瘤、抗病毒、基因治疗等生理作用[2]。研究核苷和核碱组成对云芝胞内糖肽质量控制有着积极作用。本文采用HPLC-UV 法,对云芝胞内糖肽中核苷和核碱组成和含量进行了测定[3]。
仪器:岛津LC20AD-UV 检测器。
对照品:11 种核苷和核碱对照品,见表1。
表1 11 种核苷和核碱对照品信息表
样品:云芝胞内糖肽对照品(批号140692-200301,中国食品药品检定研究院);云芝胞内糖肽原料:A 公司(批号S-30200601),B 公司(批号20200101);C 公司云芝胞内糖肽胶囊(批号190203,含量0.5 g);云芝胞内糖肽胶囊、云芝胞内糖肽片样品共计54 批(含量0.5 g 原料均来自B 公司,制剂处方中无辅料或辅料无干扰)。B 公司提供菌丝体水提醇沉产物(产物1)和培养液滤液醇沉产物(产物2)。A 公司提供的原料中仅含有菌丝体水提醇沉产物。
化学计量学软件:ChemPattern 2020 版,科迈恩(北京)科技有限公司。
2.1 色谱条件色谱柱:月旭AQ-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相A 为水,流动相B 为甲醇,按表2 进行梯度洗脱;检测波长:260 nm;柱温:30 ℃;流速:1 mL·min-1;进样体积:20 μL。
表2 流动相梯度洗脱程序
系统适用性:在对照品溶液(1 μg·mL-1浓度)的色谱图中,理论板数按腺嘌呤峰计算不低于2000,各核苷和核碱色谱峰之间的分离度应>1.5。
2.2 溶液的制备
2.2.1 对照品溶液 精密称取表1 中11 种核苷和核碱对照品适量,加水溶解并稀释成每1ml 中各含1、2、5、10、20、50、100 μg 的系列混合对照品溶液。
2.2.2 供试品溶液 取云芝胞内糖肽胶囊内容物、云芝胞内糖肽片研细,精密称取200 mg,置20 mL量瓶中,加水15 mL,超声振荡30 min,冷却至室温后用水稀释至刻度,5000 r·min-1离心10 min,取上清液,用0.22 μm 滤膜过滤,即得。
2.3 含量测定
精密量取对照品溶液、供试品溶液各20 μL,注入高效液相色谱仪,记录色谱图,以标准曲线法计算出各样品中核苷和核碱的含量。
2.4 方法学验证
2.4.1 线性范围 取11 种混合对照品溶液,用水稀释,配制成含11 种核苷和核碱各1、2、5、10、20、50、100 μg·mL-1的标准曲线溶液,以峰面积(Y)对浓度(X)进行线性回归,得各组成分在1~100 μg·mL-1范围的回归方程和相关系数(r>0.9940)。表明各组分线性关系良好。测定结果见表3;分离图谱见图1。
表3 11 种核苷和核碱的分析方法验证结果(n=6)
图1 混合对照品核苷和核碱的HPLC 色谱图
2.4.2 进样精密度试验 取同一浓度混合对照品溶液,连续进样6 次,计算峰面积相对标准偏差RSD%,计算各峰峰面积的RSD%(n=6)。精密度考察结果显示,各峰峰面积的RSD 均<1.0%,精密度良好。结果见表3。
2.4.3 重复性试验 取同一批样品6 份,按“2.2.2”供试品溶液的制备方法,从“加水15 mL 起”同法处理,测定重复性。各峰峰面积的RSD 均<3.0%。结果见表3。
2.4.4 加样回收率试验 取同一批已知含量的样品6 份,精密称取200 mg 置20 mL 量瓶中,分别加入含各核苷和核碱100 μg·mL-1的对照品溶液1 mL,按“2.2.2”供试品溶液的制备方法,从“加水15 mL 起”同法处理,测定其峰面积,按标准曲线法计算加样回收率%和RSD%。各成分回收率分别在81.4%~98.7%。结果见表3。
2.4.5 稳定性试验 取对照品溶液和供试品溶液,分别于0、4、8、12、16、24 h 进样,各峰峰面积的RSD均<0.5%,对照品溶液和供试品溶液在24 h 内稳定。
2.5 各样品核苷和核碱总量见表4。
表4 核苷和核碱组成和含量结果(%,云芝胞内糖肽含量)
2.6 检品成分说明
2.6.1 在B 公司原料及54 批云芝胞内糖肽胶囊/片中含有较多的尿嘧啶、尿苷、腺嘌呤、鸟苷、腺苷及少量胞嘧啶、尿嘧啶、次黄嘌呤等。B 公司原料(批号20200101)和C 公司云芝胞内糖肽制剂(批号190203)的HPLC 图分别见图2 和图3。
图2 B 公司原料(批号20200101)核苷和核碱的HPLC 色谱图
图3 C 公司云芝胞内糖肽胶囊(批号190203)(原料由B 公司提供)核苷和核碱的HPLC 色谱图
2.6.2 A 公司来源的原料和中检院对照品含有较多的尿苷、鸟苷和腺苷,为优势代谢成分及少量胞嘧啶、尿嘧啶、次黄嘌呤等,中检院对照品核苷和核碱总量约为B 公司来源的原料的两倍,种类和含量均有明显区别,见图4、图5。
图4 云芝胞内糖肽对照品(中检院,140692-200301)核苷和核碱的HPLC 色谱图
图5 A 公司原料(S-30200601)核苷和核碱的HPLC 色谱图
2.6.3 菌丝体(产物1)中的核苷种类与B 公司原料一致(见图6)。B 公司的培养液(产物2)中未检出核苷,与细胞外无生命活动有关(见图7)。
图6 产物1 核苷和核碱的HPLC 色谱图
图7 产物2 核苷和核碱的HPLC 色谱图
2.6.4 多元统计分析技术-主成分分析法区分不同生产工艺样品 采用ChemPattern 2020 版软件[4]的多元统计分析技术-主成分分析法,以9 批B 公司胶囊样本中各核苷和核碱的含量建立共有模式,对样本间的相关性和主成分贡献率进行分析。
各样本多元统计分析获得的主成分分析聚类得分图和载荷图(PCA 图)见图8。2D PCA 图显示:其他厂家共45 批胶囊/片样本游离糖组成与自建的共有模式同群,产物1、中检院对照品、A 公司原料、产物2 与自建的共有模式离群。
图8 核苷和核碱组成测定主成分分析聚类得分图和载荷图(PCA 图)
结合载荷图可知,尿苷、腺苷为样本识别的主要因素;其次为鸟苷、次黄嘌呤。产物2 因不含核苷成分而离群,中检院对照品、A 公司原料因鸟苷、腺苷等含量高而离群,产物1 因次黄嘌呤、尿苷含量较高而离群。
综合聚类得分图和载荷图的结果,不同原料来源的聚类区分,可在核苷和核碱的含量差异、比例差异上得到体现:如A 公司来源的对照品和原料含有较多的鸟苷和腺苷,产物1(菌丝体成分)含有较多的尿苷、次黄嘌呤、腺嘌呤、尿嘧啶、鸟苷和腺苷。产物2(培养基成分)不含核苷成分,如将其与产物1 混合作为原料,可能导致药效的下降。
3.1 考察了不同色谱柱的耐用性,如月旭AQ-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),Luna-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),Waters Xbridge C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),结果各色谱峰分离度均良好。
3.2 对提取溶剂、提取方式、超声时间等进行了考察。结果表明,以水为溶剂,超声提取30 min 时,核苷和核碱提取效率较高,且含量较为稳定。
3.3 对新建立的核苷和核碱检测方法进行了方法学验证,线性关系良好,相关系数均>0.9940,11 种成分的线性均在1~100 μg·mL-1,仪器精密度良好(RSD<2%)、样品回收率在81.4%~98.7%,均能满足云芝胞内糖肽中测定核苷和核碱成分的要求。该方法前处理简单,检测方法灵敏,结果准确。