杨璐璐,黎力之,关玮琨,廖晓鹏,张海波*,郭冬生*
(1.宜春学院生命科学与资源环境学院,江西省高等学校硒农业工程技术研究中心,宜春市功能农业与生态环境重点实验室,江西宜春 336000;2.宜春学院继续教育学院,江西宜春 336000)
谷胱甘肽过氧化物酶2(Glutathione Peroxidase 2,GPX2)属于GPX 家族中一种多聚体硒蛋白,活性中心为硒代半胱氨酸(SeCys)残基,其具有保护肠道细胞免受氧化损伤、发挥抗凋亡等作用[1]。核因子-кB(Nuclear Factor-kappa B,NF-кB)与活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)是肠道炎症通路中关键参与者,GPX2 对两者均有调节作用。一方面,GPX2 介入上游核因子-кB 抑制蛋白激酶(Inhibitor of Kappa B Kinase,IKK)活性调节通路,对IKK 复合物及其磷酸化过程产生抑制作用,影响NF-кB 的激活和释放,间接抑制其下游炎性基因环氧合酶(Cyclooxygenase,COX)、脂氧合酶(Lipoxygenase,LOX)和肿瘤坏死因子(Tumor Necrosis Factor,TNF)等表达,防治肠道炎症[2]。另一方面,GPX2 可消除双氧化酶2(Dual Oxidase2,DUOX2)产生过氧化氢(Hydrogen Peroxide,H2O2)对机体的危害作用,还可抑制Wnt 信号、脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)、TNF 等细胞因子表达,阻碍NADPH 氧化酶1(NADPH Oxidase 1,NOX1)介导产生ROS,进而阻止过量ROS 引起的内质网应激及肠道屏障损伤,维持肠上皮细胞正常形态,发挥肠道正常功能[3-4]。研究表明,缺GPX2 小鼠易发生回肠结肠炎,且在结肠炎小鼠肠道中发现GPX2 活性及基因水平显著降低,补充GPX2 可缓解小鼠肠道病症[5]。因此,本文重点综述GPX2 参与肠道炎症相关通路的调节作用,以期为预防动物肠道炎症提供理论依据。
1.1 GPX2 结构 哺乳动物体内GPX 中的GPX1、GPX2、GPX3、GPX4、GPX6 属于硒蛋白[6],催化活性位点皆含SeCys 残基,是硒在动物体内的主要存在形式[7]。GPX 与氢过氧化物接触过程中,谷氨酰胺的酰胺基及色氨酸的亚氨基可加固SeCys 的硒氢基,形成催化三联体结构,增强其对氢过氧化物的攻击性[8]。GPX2 在肠道上皮隐窝-绒毛轴基底部浓度最高,因此也被命名为GI-GPx 或GPx-GI,其结构层次居GPX 家族第一位,属于一种较独立的四聚体[9]。在GPX2 中,寡聚变异体结构将2 个扁平伸长、无规则的结构包围起来,其1 条侧链伸入另一单体中央空腔中,将2 个单体亚基相连,通过α-螺旋与另外2 个单体结合形成四聚体结构,同时功能螺旋中2 条链间盐桥强制固定GPX2 的单体形成同源四聚体结构,特异性催化底物与GPX2 活性中心进行氧化还原反应[8]。GPX2 结构如图1 所示。
图1 GPX2 结构[8]
1.2 GPX2 生物学功能 GPX2 可催化H2O2、叔丁基氢过氧化物、亚油酸过氧化氢等,具有强抗氧化能力[8]。Barrera 等[10]用异硫氰酸盐与硒共同处理小肠上皮吸收性肠细胞,发现GPX2 抗氧化能力增强,抑制了因H2O2诱导的细胞凋亡。研究表明,对UVC 辐照小鼠给予虾青素治疗,其GPX2基因表达水平及抗氧化能力显著增强,缓解氧化应激[11]。GPX2 还可防止肠上皮细胞氧化受损,对肠道炎症造成的动物肠黏膜萎缩、腹泻和食欲不振等有积极治疗作用[12]。GPX1和GPX2双基因敲除小鼠其结肠黏膜严重受损,易发生结肠炎,补充GPX1 对缓解炎症无任何效果,而在补充GPX2 后炎症病程有所缓解,表明GPX2 在治疗肠炎中具有重要功能[13]。Shi 等[14]在治疗由硫酸葡聚糖硫酸钠引起的大鼠结肠炎中发现,提高结肠中GPX2 活性可以抑制白介素(IL)-1α、IL-6 等促炎因子分泌,维护结肠黏膜正常免疫功能。同时,GPX2 可抵抗因过敏原诱发的气道炎症;牛乳中GPX2 可降低乳腺上皮细胞受氧化损伤所引起的牛乳腺炎发病几率[15-16]。此外,GPX2 还具有维护动物正常繁殖性能、抵御肿瘤等生物学功能[17-18]。
GPX2 主要借助2 条途径预防肠道炎症发生:其一,通过降低IKK 复合物活性及扰乱其磷酸化过程,干预NF-кB 的合成释放,进而影响其下游炎症通路;其二,通过减少NOX1 及DUOX2 表达,阻止ROS 过量产生,避免上皮细胞凋亡[19-20]。
2.1 GPX2 介导NF-кB 信号转导通路调节动物肠道炎症 NF-кB 作为炎症等疾病发生的重要标志物,参与炎症反应、免疫调节和肿瘤调控等生理进程,其活化与释放均与IKK 复合物密切相关[19]。IKK 复合物是由IKK1 与IKK2 的催化亚基及NF-κB 必需调节蛋白/IKK调节蛋白共同组成[19]。研究发现,在NF-кB 的上游通路中,GPX2基因表达后可抑制IKK 复合物激活,间接阻止NF-кB 抑制蛋白磷酸化,使NF-кB 活性降低[21];而在NF-кB 的下游通路中,GPX2 也可通过抑制炎症脂质介质COX、LOX和诱导型一氧化氮合酶(Inducible Nitric Oxide Synthase,iNOS)等基因表达,缓解肠道炎症[21]。促炎介质COX、LOX和iNOS等作为NF-кB信号通路中的炎性基因,可导致免疫失调、组织损伤及炎症反应等发生[19]。COX2 过表达可刺激具有促炎效应的下游生物活性物前列腺素E2(Prostaglandin E2,PGE2)产生,引发机体炎症、疼痛和发热等[22]。同样,LOX 可催化膜脂过氧化作用,加快细胞膜流动性,破坏肠上皮屏障;iNOS 则诱导一氧化氮(Nitric Oxide,NO)产生,造成组织损伤引发炎症[23-25]。综上所述,在NF-кB 诱导的炎症通路中,一方面,GPX2 可通过降低IKK 复合物活性,阻断NF-кB 的上游通路;另一方面,在下游通路中,GPX2 抑制炎性介质基因COX、LOX和iNOS等表达,防止促炎因子PGE2、过氧化物和NO对肠道的破坏(图2)。由此可见,GPX2 在保护肠道免受炎性有害物质入侵、维护肠上皮完整性、保障动物机体正常生理功能中具有重要作用。
2.2 GPX2 介导ROS 相关通路调节动物肠道炎症 肠上皮细胞属于肠道屏障重要组成结构,ROS 是细胞中较活跃的一类含氧活性物质,可维持细胞正常生长,而过量的ROS 则会诱发DNA 突变、蛋白质变性和组织损伤等氧化应激反应[25]。ROS 一是通过核黄素激酶(Riboflavin Kinase,RFK)介导的肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体受体和NOX1 相结合途径生成;另外,通过DUOX2 诱导也可以生成ROS。NOX1 复合物主要产生超氧化物,而DUOX2 主要产生H2O2[20,26]。
图2 GPX2 介导NF-кB 信号转导通路调节动物肠道炎症
NOX1 途径在结肠上皮高度表达,是动物体内ROS 重要来源之一[20]。研究发现,TNF 促使NOX1基因表达,一方面,TNF 激活TNF 受体1(Tumor Necrosis Factor Receptors1,TNFR1)后,在RFK 的共同作用下,将TNFR1 死亡域结构与NOX1 中p22 phox 亚基连接,进而促使NOX1基因表达;另一方面,TNF 可结合Ras 相关的C3 肉毒素底物1(Ras-related C3 Botulinum Toxin Substrate 1,Rac1)构成复合物,提高NOX1 活性[20]。小鼠肠道缺乏GPX2,NOX1表达量显著升高,造成早发性回肠结肠炎[20]。轩青霞等[27]在慢性结肠炎动物模型中发现,肠道病变组织中NOX1基因表达显著高于对照组。由此推测,GPX2 可能通过TNF 的2 种途径(TNFR1 和TNF-Rac1 复合物)抑制NOX1基因表达,但具体途径还需要更多试验证实。另外,在TNF、γ干扰素(IFN-γ)和LPS 等刺激下,NOX1高表达,激活下游PI3K/AKT、Wnt/β-catenin 和Notch1 信号[28]。在此过程中,一是可以调控连环蛋白靶点(如细胞周期D1),加速细胞增殖活化及增加前体隐窝细胞数量;二是可以激活Notch1 通路的下游转录靶点,加速肠黏膜前体细胞向肠上皮成熟细胞分化进程,使隐窝细胞持续增殖,破坏肠上皮稳态,引发肠道炎症[28]。Li 等[29]研究发现GPX2 沉默时,β-catenin及Wnt2 水平下降,上皮间质细胞转化过程被抑制,延缓肠上皮损伤。ROS 另一重要来源是DUOX2 途径,DUOX2 主要定植于结肠上皮细胞内质网中,由二元氧化酶成熟因子2 激活,直接产生H2O2[30]。H2O2过量会进一步诱发内质网应激,激活其下游肌醇需求酶1(Inositol-requiring Enzyme-1,Ire1)、蛋白激酶R 样内质网激酶(Protein Kinase R-like ER Kinase,Perk)和活化转录因子6(Activating Transcription Factor 6,Atf6)3 条蛋白信号通路与正确结合蛋白葡萄糖调节蛋白78 解离,而与错误折叠蛋白结合,造成肠上皮细胞内质网功能紊乱,炎性因子IL-8 水平升高,引发早期结肠炎[30]。研究发现,使DUOX2 活性降低可减轻因GPX2基因缺失引起的肠道炎症[26]。
综上所述,GPX2 可通过抑制NOX1 刺激因子TNF、IFN-γ和LPS 等表达,降低NOX1 活性,阻止ROS 产生;同时,GPX2 可直接抑制H2O2过量产生,阻止内质网应激出现,也可影响Wnt/β-catenin 通路,阻断细胞持续增殖进程,维护肠上皮稳态(图3)。因此,在预防因ROS 诱发的动物肠道炎症过程中,其一,可以从其关键来源NOX1 入手,提高GPX2 含量使NOX1失活,使ROS 生成量下降;其二,可以利用GPX2 消除过多H2O2,使内质网免受氧化应激,保证其下游蛋白Ire1、Perk 和Atf6 正常功能;其三,干扰ROS 下游传导Wnt/β-catenin 信号,可以防止前体细胞成熟化,抑制肠上皮细胞无限增殖,以达到维护动物肠道健康,保证营养物质摄入,促进动物正常生长发育。
图3 GPX2 介导ROS 相关通路调节动物肠道炎症
目前可借助添加硒、益生菌、中草药(如仙鹤草)等多种营养调控手段提高GPX2 表达,促进动物生长发育。Lee 等[31]对断奶仔猪补充纳米硒后,发现其肝脏中GPX2 等硒蛋白表达增加,仔猪肝脏内抗氧化谱及免疫能力提高,日增重及日采食量显著上升。硒缺乏的雏鸡饲喂富硒酵母饲料后,十二指肠肠黏膜中硒含量增加,GPX2 含量及抗氧化能力提高,IL-4 和IL-6 水平显著降低,减少自由基对肠道的氧化损伤,降低肠炎发生率[32]。Zhang 等[33]给断奶仔猪饲喂添加罗伊氏乳杆菌饲粮,发现仔猪体内GPX2 含量升高,抗氧化能力增强,机体氧化应激反应减弱,肠道活动和采食量恢复正常。在仔猪日粮中添加中草药仙鹤草可使其日采食量和日增重增加,抗菌抗氧化能力增强,机体中GPX2 浓度增加,NF-кB 通路被抑制,炎性因子表达减少[34]。对绵羊饲喂不同硒源日粮后发现,肠道血液和组织中硒含量增加,GPX 活性升高,吞噬细胞活性随之增强,提升肠道抗氧化能力[35]。由此可见,通过营养调控可促进GPX2在动物肝脏、肠道等多种器官中发挥抗氧化功能,改善动物生长。此外,在研究由球虫病引起的乳犊牛肠道炎症时发现,对照组乳牛出现严重腹泻,肠绒毛高度降低,隐窝细胞凋亡,GPX2 含量呈代偿性上升,表明GPX2具有缓解肠道炎症的潜力[36]。因此推测,GPX2 通过参与防治组织氧化损伤、降低炎性因子分泌、改善肠道形态等过程,在防控动物慢性肠道炎症、维持肠道健康中起主导作用。综上所述,GPX2 增加对提高动物生产性能(如日增重、采食量)、增强免疫应答、降低肠道疾病发生率等均具有重要意义。
GPX2 具有提高机体抗氧化能力、降低炎性细胞因子分泌和防治肠组织受损等作用。在以NF-кB 和ROS 为诱因的肠道炎症中,GPX 参与上游合成通路抑制NF-кB 和ROS 产生:①降低IKK 复合物活性,抑制其对IкB 蛋白磷酸化过程,切断NF-кB 释放进程;②阻止TNF、LPS 和IFN-γ等因子激活NOX1,抑制DUOX2 生成,阻断过量ROS 产生。这2 条通路间接抑制外来炎性因子基因表达,制止ROS 对上皮细胞发出凋亡信号,阻止下游PI3K/AKT、Wnt/β-catenin、Notch1 信号和内质网异常蛋白表达过程,保障肠上皮屏障正常生长,防止肠上皮细胞内质网氧化应激出现,阻止肠道炎症发生。目前,GPX2 在维护动物肠道健康方面的研究逐渐增多,其在动物炎症治疗方面的潜力越发明显。但GPX2 在肠道炎症中具体作用机制研究尚浅,如何提高动物体内GPX2 浓度、GPX2 在不同肠段中是否具有不同作用、GPX2 是否参与更多的炎症因子通路等问题尚未明确,还需进一步深入探究。虽然目前GPX2 在动物肠道健康及生长中的应用很少,随着GPX2 的深入研究及作用机制更加明晰,其将成为动物肠病治疗的有效路径之一。