产α-葡萄糖苷酶抑制剂罗汉果内生菌株的筛选鉴定及发酵条件优化

2021-05-07 09:54周巧丽胡梦琪赵丰丽
中国酿造 2021年4期
关键词:罗汉果糖苷酶内生

周巧丽,付 强,王 琪,胡梦琪,金 岳,赵丰丽,2*

(1.广西师范大学 生命科学学院,广西 桂林 541006;2.珍稀濒危动植物生态与环境保护教育部重点实验室,广西 桂林 541006)

糖尿病已经成为严重危害人类健康的重大公共卫生问题。据国际糖尿病联盟最新数据显示,目前有4.63亿成年人患有糖尿病[1],2019年有420万名20~79岁的成年人死于糖尿病[2]。全球糖尿病的直接健康支出为7 600亿美元,其中中国的糖尿病年度健康支出为1 090亿美元[3]。糖尿病及其并发症对个人、家庭以及国民经济具有重大的影响。因此,有效地预防和治疗糖尿病及其并发症至关重要[4]。

α-葡萄糖苷酶抑制剂(α-glucosidase inhibition,α-GI)通过抑制α-葡萄糖苷酶,可有效地延缓肠道碳水化合物的消化吸收以维持餐后血糖正常,已广泛应用于2型糖尿病的治疗[5]。目前临床上该类药品有阿卡波糖、伏格列波糖和米格列醇等,在国内外均具有可观的市场销量[6],但存在药物种类少、价格高、胃肠道反应大、不良反应发生率高等问题[7-8]。因此,开发安全高效的新型α-GI具有广泛的前景[9-10]。

罗汉果具有降糖作用[11-12],基于共生理论,其内生菌可能也会产生降糖类物质[13]。龙楚媚等[14-15]从罗汉果内生菌中筛选出产α-淀粉酶抑制剂的菌株,罗汉果内生菌作为降糖活性物质筛选来源尚有待探究。本研究从罗汉果内生菌中筛选出产α-葡萄糖苷酶抑制剂的菌株,对其进行形态学观察及分子生物学鉴定,采用单因素试验及正交试验优化菌株发酵条件,并对其活性部位进行追踪,以期为罗汉果内生菌来源的α-GI的开发利用奠定基础。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

1.1.1 菌种

罗汉果内生菌株:广西师范大学发酵工程实验室保藏。

1.1.2 主要试剂

α-葡萄糖苷酶(酶活50 U/mg)、对硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(p-nitrophenyl-α-D-glucopyranoside,PNPG)(纯度99%):上海源叶生物科技有限公司;阿卡波糖:杭州中美华东制药有限公司;葡萄糖、氯化钠、碳酸钠(均为分析纯):西陇化工股份有限公司。

1.1.3 培养基

种子培养基:酵母粉5 g/L,蛋白胨10 g/L,NaCl 5 g/L,蒸馏水1 000 mL,121 ℃灭菌30 min。

发酵培养基:取去皮土豆200 g,切块煮沸30 min,八层纱布过滤,加入20 g葡萄糖,定容至1 L,pH自然,121 ℃灭菌30 min。

马铃薯葡萄糖琼脂(potato dextrose agar,PDA)培养基:同发酵培养基,另加20 g琼脂,pH自然,121 ℃灭菌30 min。

1.2 仪器与设备

YM75型立式压力蒸汽灭菌锅:上海三申医疗器械有限公司;ZD-85型恒温振荡器:国华仪器制造有限公司;HP400S型生化培养箱:武汉瑞华仪器设备有限责任公司;BX63型荧光成像分析系统显微镜:日本Olympus公司;Infinite M200Pro酶标仪:帝肯贸易有限公司。

1.3 方法

1.3.1 菌株活化与发酵培养

取36株保藏的罗汉果内生菌株,分别划线接种于PDA平板培养基上,28 ℃静置培养3 d。挑取单菌落一环接种于装100 mL种子培养基的250 mL三角瓶中,置于28℃、160 r/min摇床培养3 d,按1%接种量转接至发酵培养基中,28 ℃、160 r/min条件下振荡培养7 d,得发酵液用于目的菌株的筛选。

1.3.2α-葡萄糖苷酶抑制剂产生菌的筛选

采用对硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷(PNPG)法进行筛选,参照LIMA R A T等[16-17]的方法具体如下:在96孔酶标板上,样品组(发酵原液)依次加入50 μL样液和100 μL的α-葡萄糖苷酶溶液(0.125 U/mL),37℃保温10 min,加入50μL的PNPG(5 mmol/L)混匀,37 ℃反应20 min,最后加入50 μL 0.2 mol/L的Na2CO3溶液中止反应,酶标仪(检测波长405 nm)测其吸光度值。1 μg/mL的阿卡波糖溶液作阳性对照组,样品空白组中用相同体积的磷酸缓冲液代替酶液,其余与样品组相同。对照组中不加发酵液,用磷酸缓冲液补齐。对照空白组中不加酶液,其余与对照组相同,用磷酸缓冲液补齐。样品对α-葡萄糖苷酶抑制率的计算公式如下:

式中:A样品为样品组的吸光度值;A样品空白为样品空白组的吸光度值;A对照为对照组的吸光度值;A对照空白为对照空白组的吸光度值。

1.3.3 菌株鉴定

形态观察:采用平板划线分离法将所筛目的菌株接种到PDA培养基上,置37 ℃培养箱内培养1 d,观察菌落形态,初步确认为细菌后进行革兰氏染色和芽孢染色[18]观察。

分子生物学鉴定:由武汉华大基因科技有限公司对菌株进行16S核糖体RNA基因(16S ribosomal DNA,16S rDNA)测序,使用基于局部比对算法的搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)将测序结果与美国国立生物技术信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)的GenBank数据库已知序列进行比对,并利用MEGA7.0软件中的邻接法(neighbor-joining,NJ)构建系统发育树。

1.3.4 目的菌株摇瓶发酵条件优化

单因素试验:设置基本发酵条件为pH自然,按1%的接种量将目的菌株的种子液接入装液量为100 mL/250 mL的发酵培养基中,于28 ℃、160 r/min条件下振荡培养3 d。以此为基础,调整各因素水平,研究不同pH值、装液量、发酵时间、发酵温度以及接种量对产酶抑制剂的影响,其因素与水平见表1。

表1 单因素试验的因素与水平Table 1 Factors and levels of single factor tests

正交试验:根据单因素试验结果,选取对试验结果影响大的因素进行正交试验设计。

1.3.5 目的菌株活性部位的追踪

取目的菌株发酵液于4 ℃、10 000 r/min 离心10 min,得上清液(胞外物)和沉淀,沉淀进一步用磷酸缓冲液(0.1 mol/L,pH 6.8)冲洗3次,超声波破碎细胞,破碎液于4 ℃、10 000 r/min 离心10 min,得上清液即为菌体胞内物[19],分别测定胞内物和胞外物对α-葡萄糖苷酶的抑制率,初步得到活性部位。

将所得目的菌株的1 L胞外物浓缩至500 mL,依次使用石油醚、三氯甲烷、乙酸乙酯和正丁醇4种有机溶剂分别等体积萃取3次,萃取液合并后减压浓缩得到各相浸膏。将浸膏配制成1 mg/mL的待测液,采用PNPG法检测各萃取相对α-葡萄糖苷酶的抑制活性[20],以质量浓度为1 μg/mL的阿卡波糖溶液作为阳性对照组。

2 结果与分析

2.1 产α-GI内生菌株的筛选

采用PNPG法对产α-GI的内生菌株进行筛选,结果见表2。由表2可知,得到8株内生菌其发酵原液的抑制率在20%以上,其余菌株的抑制率均在20%以下,结果省略。在8株菌株中,菌株PD-14的发酵原液对α-葡萄糖苷酶的抑制率最高达到60.70%,虽比阳性对照阿卡波糖(98.67%)的低,但仍显示出较高的活性。因此,选择菌株PD-14进行进一步鉴定。

表2 α-葡萄糖苷酶产生菌筛选结果Table 2 Screening results of α-glucosidase inhibitor-producing strains

2.2 菌株PD-14的鉴定

2.2.1 形态观察

由图1A可知,菌株PD-14在PDA培养基上生长良好,37 ℃培养15 h就可以形成明显的菌落,菌落呈圆形、不透明、湿润、表面光滑凸起。由图1B可知,经革兰氏染色、芽孢染色、镜检,菌株PD-14为革兰氏阳性菌,细胞呈杆状。由图1C可知,菌株PD-14有芽孢且位于菌体中间,芽孢呈椭圆形。根据菌株形态学观察结果,初步鉴定该菌株属于芽孢杆菌(Bacillus)。

图1 菌株PD-14的菌落形态(A)、革兰氏染色(B)及芽孢染色图(C)Fig.1 Colony morphology (A),gram staining (B) and spore staining (C)of strain PD-14

2.2.2 分子生物学鉴定

由武汉华大基因科技有限公司测得菌株PD-14的16SrDNA基因序列碱基长度为1 465 bp。根据16SrDNA序列,构建系统发育树,结果如图2所示。由图2可知,菌株PD-14与Bacillus velezensis同属一个分支,与已知菌株Bacillus velezensisLZLJ01的同源性达到100%。结合菌株PD-14的形态观察结果和分子生物学鉴定结果,确定菌株PD-14为贝莱斯芽孢杆菌(Bacillus velezensis)。

图2 菌株PD-14基于16S rDNA基因序列的系统发育树Fig.2 Phylogenetic tree of strain PD-14 based on 16S rDNA gene sequences

2.3 发酵条件优化单因素试验

由表3可知,随着pH值、装液量、发酵温度、接种量的升高,抑制率均先升后降,分别在初始pH值为7,装液量为125 mL/250 mL,发酵温度为30 ℃,接种量为5%时,发酵液对α-葡萄糖苷酶的抑制率最高。随着发酵时间的增加α-葡萄糖苷酶抑制率逐渐增高,到第3天后趋于平稳,因此选择最优发酵时间为3 d。在上述各因素最佳发酵条件下,α-葡萄糖苷酶抑制率在61.00%~87.85%。

表3 菌株PD-14发酵条件优化的单因素试验结果Table 3 Results of single factor tests for strain PD-14 fermentation conditions optimization

2.4 菌株PD-14发酵条件优化正交试验

以单因素试验为依据,固定初始pH值为7,选取装液量(A)、发酵时间(B)、发酵温度(C)和接种量(D)4个影响因素,以各因素对α-葡萄糖苷酶的抑制率为评价指标,采用L9(34)正交设计研究不同因素对菌株产α-GI的影响,正交试验设计及结果分析如表4所示,方差分析见表5。

表4 菌株PD-14发酵条件优化的正交试验结果与分析Table 4 Results and analysis of orthogonal tests for strain PD-14 fermentation conditions optimization

表5 正交试验结果方差分析Table 5 Variance analysis of orthogonal tests results

由表4可知,4个因素对菌株PD-14产α-GI的影响不同,根据极差大小,各因素影响强弱排序为A>B>C>D,即装液量>发酵时间>发酵温度>接种量,其产α-GI最佳发酵条件组合为A1B3C2D3,即装液量100 mL/250 mL、发酵时间4 d、发酵温度30 ℃、接种量7%。在此优化条件下进行3次平行验证试验,α-葡萄糖苷酶的抑制率为91.05%,与阳性对照1 μg/mL阿卡波糖溶液的抑制率98.67%接近。由表5可知,因素A(装液量)对结果影响达到极显著水平(P<0.01),而发酵时间、温度和接种量对结果影响不显著(P>0.05)。

2.5 目的菌株活性部位追踪结果

按照1.3.5方法追踪活性部位,测定菌株PD-14胞内胞外物以及发酵液各萃取相对α-葡萄糖苷酶的抑制率的影响。结果表明,菌株PD-14的胞内物对α-葡萄糖苷酶的抑制率较低,而胞外上清液的抑制率达到60.70%,说明α-GI主要集中在胞外即发酵液中。菌株PD-14发酵液中抑制α-葡萄糖苷酶的有效相为正丁醇相和水相,抑制率分别为77.60%和76.70%(质量浓度为1 mg/mL),阳性对照组的抑制率为95.01%(质量浓度为1 μg/mL)。

3 结论

从罗汉果内生菌中筛选出一株高产α-GI的菌株PD-14,经形态学和分子生物学鉴定为贝莱斯芽孢杆菌(Bacillus velezensis)。通过单因素试验和正交试验优化得到该菌株产α-GI的最佳发酵条件为初始pH值为7,装液量100 mL/250 mL,发酵时间4 d,发酵温度30 ℃,接种量7%。此优化条件下,其发酵液对α-葡萄糖苷酶的抑制率达到91.05%,是优化前的1.5倍。发酵液经萃取后,正丁醇相和水相对α-葡萄糖苷酶的抑制率较高,分别为77.61%和76.70%。

猜你喜欢
罗汉果糖苷酶内生
浅谈罗汉果
植物内生菌在植物病害中的生物防治
内生微生物和其在作物管理中的潜在应用
“党建+”激活乡村发展内生动力
HPLC-MS法同时测定罗汉果不同部位中4种皂苷
授人以渔 激活脱贫内生动力
知母中4种成分及对α-葡萄糖苷酶的抑制作用
木蝴蝶提取物对α-葡萄糖苷酶的抑制作用
罗汉果鲜吃也不错
六种花提取物抑制α-葡萄糖苷酶活性研究